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樹(shù)突狀細(xì)胞在約氏瘧原蟲感染早期作用的研究

發(fā)布時(shí)間:2019-02-26 11:03
【摘要】: 實(shí)驗(yàn)?zāi)康?瘧疾是由瘧原蟲感染引起的,最為嚴(yán)重的寄生原蟲感染性疾病。全球瘧疾流行區(qū)域正以驚人的速度不斷擴(kuò)展,嚴(yán)重的瘧疾疫情正是造成發(fā)展中國(guó)家兒童高死亡率和成人高發(fā)病率的主要原因。而瘧原蟲抗原變異和耐藥性原蟲的出現(xiàn),又進(jìn)一步阻礙了瘧疾疫苗的研制和抗瘧藥物的開(kāi)發(fā)。因此,進(jìn)一步闡明誘導(dǎo)抗瘧保護(hù)性免疫應(yīng)答的相關(guān)機(jī)制,無(wú)疑將為瘧疾的有效控制提供必須的前提依據(jù)。 嚙齒類瘧原蟲感染小鼠為深入探討抗人瘧保護(hù)性免疫應(yīng)答機(jī)制,提供了一種寶貴的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型。約氏瘧原蟲(Plasmodium yoelii 17XL,P.yoelii 17XL)感染的不同小鼠,會(huì)呈現(xiàn)不同的Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答模式,因而導(dǎo)致其出現(xiàn)自愈和死亡兩種截然相反的感染結(jié)局。因此,瘧疾感染早期Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的有效建立明顯影響著感染進(jìn)程和最終結(jié)局。然而,目前關(guān)于參與調(diào)控宿主抵抗紅內(nèi)期瘧疾感染的Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的相關(guān)機(jī)制尚不明確。 表達(dá)不同模式識(shí)別受體(pattern recognition receptors,PRRs)Toll樣受體(Toll-like receptors,TLRs)的樹(shù)突狀細(xì)胞(Dendritic ceils,DCs),在T細(xì)胞活化和適應(yīng)性免疫應(yīng)答建立過(guò)程中,發(fā)揮著舉足輕重的作用。有研究已經(jīng)證實(shí),DCs可分為髓樣DCs(CD11c~+CD11b~+)和漿樣DCs(CD11c~+CD45R/B220~+)兩種不同亞群,兩者在病原體刺激下通常呈現(xiàn)不同的增殖模式。體外的研究也進(jìn)一步表明,DCs可選擇性吞噬瘧原蟲寄生的紅細(xì)胞(pRBC),加工和提呈瘧原蟲抗原給CD4~+T細(xì)胞進(jìn)而誘導(dǎo)保護(hù)性Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的建立。這一結(jié)果充分提示,作為抗原提呈細(xì)胞(Antigen Present Cell,APC)的DCs在瘧疾感染過(guò)程中可能發(fā)揮重要作用。然而,其它的研究卻顯示,瘧原蟲感染明顯抑制DCs的活化和功能的發(fā)揮。 我們利用成功建立的P.yoelii 17XL感染的BALB/c和DBA/2鼠瘧模型,分析了參與抗瘧免疫應(yīng)答調(diào)控的相關(guān)因素。前期的研究結(jié)果顯示,兩種小鼠由于誘導(dǎo)Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的能力不同,因而呈現(xiàn)易感和抵抗兩種不同的應(yīng)答模式。為探討Pyoelii 17XL感染早期易感和抵抗小鼠Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的差異是否與DCs的調(diào)控作用具有一定的相關(guān)性,本研究動(dòng)態(tài)觀察了感染早期DCs細(xì)胞表面和細(xì)胞內(nèi)TLR的表達(dá)水平、亞群的增殖變化、表面及共刺激分子的表達(dá)水平和細(xì)胞因子的分泌模式,以期闡明DCs在瘧疾感染早期的作用地位及其相關(guān)機(jī)制。 實(shí)驗(yàn)方法 1、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及其模型構(gòu)建 6-8周齡、雌性BALB/c和DBA/2小鼠,經(jīng)腹腔分別感染1×10~6 P.yoelii 17XL寄生的紅細(xì)胞(pRBC),構(gòu)建不同的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型。 2、采用流式細(xì)胞分析技術(shù)檢測(cè)易感和抵抗小鼠感染早期脾臟DCs細(xì)胞內(nèi)TLR9和細(xì)胞表面TLR4的表達(dá)水平 (1)無(wú)菌取出感染前(0d)和感染后第3d、5d小鼠脾臟,常規(guī)方法制備脾細(xì)胞懸液,用0.17 mol/L NH_4Cl裂解紅細(xì)胞。以含10%胎牛血清(FCS)的RPMI 1640調(diào)整脾細(xì)胞終濃度為1×10~7/ml。每份樣品用抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-TLR9-PE單克隆抗體進(jìn)行雙色分析,另設(shè)陰性對(duì)照管。預(yù)先加入FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體的流式細(xì)胞儀專用染色管中加入脾細(xì)胞懸液0.1ml,再加入抗-CD11c-FITC單克隆抗體進(jìn)行表面染色。按試劑說(shuō)明書所示,進(jìn)行固定和透膜后,再分別加入biotinylated anti-TLR9單克隆抗體和PE-conjugated streptavidin。離心去上清后,洗滌兩次,靜置15 min,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。 (2)每份樣品用抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-TLR4-PE單克隆抗體進(jìn)行雙色分析,另設(shè)陰性對(duì)照管。在預(yù)先加入FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體的流式細(xì)胞儀專用染色管中加入脾細(xì)胞懸液0.1ml,再加入抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-TLR4-PE單克隆抗體進(jìn)行表面染色。離心去上清后,洗滌兩次,靜置15 min,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。 3、采用流式細(xì)胞分析技術(shù)檢測(cè)易感和抵抗小鼠感染早期脾臟DCs亞群的數(shù)量及細(xì)胞表面MHCⅡ類分子和共刺激分子CD40、CD80的表達(dá)水平 (1)每份樣品用抗-CD11c-FITC單克隆抗體、抗-CD11b-PE單克隆抗體和抗-CD45R/B220-PerCP單克隆抗體進(jìn)行三色分析,另設(shè)陰性對(duì)照管。預(yù)先加入FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體的流式細(xì)胞儀專用染色管中加入脾細(xì)胞懸液0.1 ml,再加入抗-CD11c-FITC單克隆抗體、抗-CD11b-PE單克隆抗體和抗-CD45R/B220-PerCP單克隆抗體進(jìn)行表面染色。離心去上清后,洗滌兩次,靜置15 min,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。 (2)每份樣品用抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-MHCⅡ-PE單克隆抗體或抗-CD40-PE單克隆抗體或抗-CD80-PE單克隆抗體進(jìn)行雙色分析,另設(shè)陰性對(duì)照管。在預(yù)先加入FcγⅢ/Ⅱ封閉抗體的流式細(xì)胞儀專用染色管中加入脾細(xì)胞懸液0.1 ml,再加入抗-CD11c-FITC單克隆抗體和抗-MHCⅡ-PE單克隆抗體或抗-CD40-PE單克隆抗體或抗-CD80-PE單克隆抗體進(jìn)行表面染色。離心去上清后,洗滌兩次,靜置15 min,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。 4、采用雙抗體夾心ELISA法檢測(cè)感染早期易感和抵抗小鼠DCs培養(yǎng)上清中IL-12p40以及免疫調(diào)節(jié)性細(xì)胞因子IL-10和TGF-β1的含量 (1)脾DCs的純化及培養(yǎng)分別于感染前和感染后第3d和5d常規(guī)無(wú)菌取出小鼠脾臟,用1 mg/ml膠原酶Ⅳ(Sigma Aldrich)37℃作用30 min,以0.17mol/L NH_4Cl裂解紅細(xì)胞。以含10%胎牛血清(FCS)的RPMI 1640調(diào)整脾細(xì)胞終濃度為1×10~7/ml。按照小鼠脾DCs純化試劑盒(BD Pharmingen San Diego,CA)說(shuō)明書所示,從小鼠脾細(xì)胞懸液中陰性選擇純化脾DCs。生物素標(biāo)記的小鼠DCs純化雞尾酒抗體能夠識(shí)別除了DCs以外的所有白細(xì)胞表面表達(dá)的抗原并與之結(jié)合。鏈酶親和素標(biāo)記的磁珠可以與生物素標(biāo)記的雞尾酒抗體特異性結(jié)合。因?yàn)檫@兩種試劑在純化DCs過(guò)程中,并不與DCs直接作用,因而可以避免DCs的異;罨。具體操作如下:20×10~6個(gè)脾細(xì)胞首先與2.4G2 mAb冰上共同孵育15 min,阻斷Fc受體。每1×10~6個(gè)脾細(xì)胞加入5μl生物素標(biāo)記的小鼠DCs純化雞尾酒抗體,冰上孵育15 min,洗滌、離心后,再加入5μl鏈酶親和素標(biāo)記的磁珠,6~12℃冷藏作用30 min。將標(biāo)記細(xì)胞轉(zhuǎn)移至17×100mm圓底實(shí)驗(yàn)管中,并置于細(xì)胞分選器中作用8 min。仔細(xì)吸取上清(即為純化的DCs),并置于無(wú)菌管中。用抗-CD11c-FITC單克隆抗體標(biāo)記純化的DCs,經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測(cè)確定,CD11c~+DCs純度可達(dá)到約70~85%。將脾DCs終濃度調(diào)整為1×10~6/ml,于24孔培養(yǎng)板中,每孔加入500μl,培養(yǎng)48 h后,收集培養(yǎng)上清,-80℃保存,待IL-12p40、IL-10和TGF-β1檢測(cè)。 (2)用雙抗體夾心ELISA法對(duì)小鼠脾DCs培養(yǎng)上清中IL-12p40、IL-10和TGF-β1的含量分別進(jìn)行檢測(cè),酶標(biāo)儀檢測(cè)450nm處OD值。應(yīng)用SoftMax Pro 4.3.1LS軟件分析,繪制標(biāo)準(zhǔn)品標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算細(xì)胞因子含量(pg/ml)。 實(shí)驗(yàn)結(jié)果 1、易感和抵抗小鼠感染早期脾臟DCs細(xì)胞內(nèi)TLR9和細(xì)胞表面TLR4表達(dá)水平的比較 BALB/c和DBA/2小鼠表達(dá)TLR9的CD11c~+ DCs的數(shù)量從感染后第3d開(kāi)始均明顯升高,并于感染后第5d達(dá)到最高水平,但在任一時(shí)間點(diǎn),兩者比較均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。與感染前的對(duì)照組相比,BALB/c和DBA/2小鼠在感染后第3d和第5d表達(dá)TLR4的CD11c~+ DCs的數(shù)量均未見(jiàn)有意義的變化。 2、易感和抵抗小鼠感染早期脾臟DCs亞群數(shù)量的比較 BALB/c和DBA/2小鼠脾臟CD11c~+CD11b~+DCs的數(shù)量從感染后第3d開(kāi)始均明顯升高,并于感染后第5d達(dá)到最高水平。在感染后第3d,BALB/c小鼠脾臟CD11c~+CD11b~+DCs的數(shù)量明顯低于DBA/2小鼠。與此相反,兩種小鼠脾臟CD11c~+CD45R/B220~+DCs的數(shù)量在感染后3~5d,盡管也呈逐漸增高趨勢(shì),但BALB/c小鼠CD11c~+CD45R/B220~+DCs的數(shù)量在感染后第3d和第5d均顯著高于DBA/2小鼠。 3、易感和抵抗小鼠感染早期脾臟DCs細(xì)胞表面MHCⅡ類分子和共刺激分子CD40、CD80表達(dá)水平的比較 BALB/c和DBA/2小鼠表達(dá)MHCⅡ類分子和CD40分子的CD11c~+DCs的數(shù)量從感染后第3d開(kāi)始均明顯升高,并于感染后第5d達(dá)到最高水平。在感染后第3d和第5d,BALB/c小鼠表達(dá)MHCⅡ類分子和CD40分子的CD11c~+DCs的數(shù)量明顯低于DBA/2小鼠。與此同時(shí),DBA/2小鼠表達(dá)CD80分子的CD11c~+DCs的數(shù)量從感染后第3d開(kāi)始迅速升高,并于感染后第5d達(dá)到峰值水平。而BALB/c小鼠表達(dá)CD80分子的CD11c~+DCs的數(shù)量?jī)H在感染后第5d明顯升高,但其水平明顯低于DBA/2小鼠。 4、易感和抵抗小鼠感染早期脾臟DCs培養(yǎng)上清中IL-12p40以及免疫調(diào)節(jié)性細(xì)胞因子IL-10和TGF-β1的含量比較 感染后第3d,DBA/2小鼠DCs培養(yǎng)上清中IL-12p40的水平迅速升高,感染后第5d盡管呈下降趨勢(shì),但仍明顯高于正常水平。相比,BALB/c小鼠DCs培養(yǎng)上清中IL-12p40的水平在感染后第3d和第5d均未見(jiàn)有意義的升高,而且其水平均明顯低于DBA/2小鼠。 兩種小鼠DCs培養(yǎng)上清中IL-10和TGF-β1水平在感染后第3~5d均明顯升高,但BALB/c小鼠DCs培養(yǎng)上清中IL-10和TGF-β1水平明顯高于DBA/2小鼠。 結(jié)論 1、P.yoelii 17XL感染早期,TLR9是介導(dǎo)小鼠DCs活化的重要模式識(shí)別受體。 2、P.yoelii 17XL感染早期,易感BALB/c小鼠和抵抗DBA/2小鼠DCs亞群的分化模式存在顯著差異。 3、P.yoelii 17XL感染早期,易感BALB/c小鼠和抵抗DBA/2小鼠成熟表型的特征性分子MHCⅡ類分子、CD40和CD80分子在表達(dá)水平和時(shí)相上均存在顯著差異。 4、P.yoelii 17XL感染早期,DCs可通過(guò)分泌IL-12啟動(dòng)感染早期Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的建立。 5、P.yoelii 17XL感染早期,DCs可通過(guò)分泌免疫調(diào)節(jié)性細(xì)胞因子IL-10和TGF-β調(diào)節(jié)Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答的水平和效應(yīng)強(qiáng)度。 6、P.yoelii 17XL感染早期,DCs是決定Th1細(xì)胞免疫應(yīng)答有效建立的關(guān)鍵免疫效應(yīng)細(xì)胞之一。
[Abstract]:......
【學(xué)位授予單位】:中國(guó)醫(yī)科大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【學(xué)位授予年份】:2009
【分類號(hào)】:R392

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本文編號(hào):2430712

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