高溫處理的尼羅羅非魚性腺分化過程及性別決定相關基因時空表達模式研究
發(fā)布時間:2021-10-17 10:24
魚類屬于低等脊椎動物,其性別決定機制包括基因型性別決定(GSD)、環(huán)境依賴型性別決定(ESD)和基因-環(huán)境依賴型性別決定(GSD+ESD)。環(huán)境因素包括溫度、光照、p H值、含氧量、種群密度、外源性類固醇類激素等,研究發(fā)現,溫度是魚類性別決定中影響作用較大且最關鍵的一類環(huán)境因素,被稱為溫度依賴型性別決定(TSD)。有些魚類的性別決定受遺傳和溫度的雙重控制,且具有性染色體,被稱為遺傳性別決定和溫度依賴型性別決定的混合型(GSD+TSD),如尼羅羅非魚(Oreochromis niloticus)就是一種GSD+TSD魚類。尼羅羅非魚雄魚生長速度比雌魚快30%多,發(fā)展高雄或全雄尼羅羅非魚的養(yǎng)殖可有效提高經濟效益。在尼羅羅非魚性別分化關鍵期進行高溫處理,可使雄魚比例顯著提高,即一部分遺傳型雌魚性逆轉為生理型雄魚。本研究以尼羅羅非魚為研究對象,以正常養(yǎng)殖溫度(28℃)和高溫處理溫度(36℃)進行養(yǎng)殖,通過分析各組生殖細胞類型和出現時序的差異、性別分化相關基因表達水平以及表達位置的差異,揭示高溫處理的雌魚與正常雌、雄魚性腺發(fā)育過程的異同點。研究結果如下:1、本研究通過HE染色和Vasa免疫組化對...
【文章來源】:山東農業(yè)大學山東省
【文章頁數】:48 頁
【學位級別】:碩士
【部分圖文】:
全雌家系高溫處理示意圖
高溫處理的尼羅羅非魚性腺分化過程及性別決定相關基因時空表達模式研究3 結果與分析3.1 尼羅羅非魚基因組 DNA 的提取采用試劑盒法提取的尼羅羅非魚基因組 DNA,樣品包含 XX 和 XY 個體,將提的部分基因組 DNA 進行 1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,電泳后在凝膠成像儀的紫外燈下察,如圖 2 所示,所提取的基因組 DNA 條帶清晰,片段完整,之后經分光光度計測濃度,發(fā)現所提取的所有基因組 DNA 濃度均在 200-300 μg/mL 之間,并且 OD260/OD2的比值均在 1.8 與 2.0 之間,完全符合 PCR 反應的模板要求,可進行下一步試驗。M
圖 2 尼羅羅非魚基因組 DNA 電泳圖Fig.2 Genomic DNAelectrophoresis map of Nile tilapia注:M: DL5000 DNAMarkerNote: M: DL5000 DNAMarker3.2 通過性別連鎖分子標記鑒別雌、雄魚采用性別特異分子標記引物通過 PCR 反應檢測各組雌雄羅非魚的遺傳性別,經過 1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,如圖 3 結果顯示,雌性尼羅羅非魚只有一條長1151bp 的條帶,雄性尼羅羅非魚包含兩條條帶,長度分別為 1151bp,711bp。M
【參考文獻】:
期刊論文
[1]大黃魚gsdf和amh基因的克隆及表達分析[J]. 林愛強,謝仰杰,徐雙斌,葉坤,龔詩琦,王志勇. 南方水產科學. 2017(06)
[2]魚類性腺發(fā)育及產卵類型研究進展[J]. 徐鋼春,鮑明明,杜富寬,徐跑. 長江大學學報(自科版). 2017(06)
[3]尼羅羅非魚仔魚個體發(fā)育及性腺分化的發(fā)育[J]. 陳興漢,劉曉春,蒙子寧,張勇,林浩然,葉衛(wèi). 熱帶生物學報. 2012(03)
[4]魚類性別決定的影響因素[J]. 田佳,陳蕓,王藝磊,張雅芝. 生命科學. 2010(10)
[5]vasa基因研究進展[J]. 陳玉冬,鄒志華,王藝磊,張子平. 動物學雜志. 2010(04)
[6]魚類生殖細胞[J]. 徐紅艷,李名友,桂建芳,洪云漢. 中國科學:生命科學. 2010(02)
[7]泥鰍的性腺分化及溫度對性腺分化的影響[J]. 陳玉紅,林丹軍,尤永隆. 中國水產科學. 2007(01)
[8]魚類精巢發(fā)育的研究進展[J]. 王成武,王樹迎,宋卉,張懷菊. 山東畜牧獸醫(yī). 2004(02)
[9]長江江豚精巢發(fā)育和組織學特征的研究[J]. 姜新發(fā). 水生生物學報. 1998(04)
[10]尼羅羅非魚性腺發(fā)育的研究[J]. 王令玲,仇潛如,吳;. 淡水漁業(yè). 1986(02)
碩士論文
[1]羅非魚gsdf在性腺的表達及其在性別決定中的功能[D]. 楊惠惠.西南大學 2014
[2]溫度對鯽魚性別決定的影響及分子機制探討[D]. 岳敏娟.福建師范大學 2009
本文編號:3441602
【文章來源】:山東農業(yè)大學山東省
【文章頁數】:48 頁
【學位級別】:碩士
【部分圖文】:
全雌家系高溫處理示意圖
高溫處理的尼羅羅非魚性腺分化過程及性別決定相關基因時空表達模式研究3 結果與分析3.1 尼羅羅非魚基因組 DNA 的提取采用試劑盒法提取的尼羅羅非魚基因組 DNA,樣品包含 XX 和 XY 個體,將提的部分基因組 DNA 進行 1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,電泳后在凝膠成像儀的紫外燈下察,如圖 2 所示,所提取的基因組 DNA 條帶清晰,片段完整,之后經分光光度計測濃度,發(fā)現所提取的所有基因組 DNA 濃度均在 200-300 μg/mL 之間,并且 OD260/OD2的比值均在 1.8 與 2.0 之間,完全符合 PCR 反應的模板要求,可進行下一步試驗。M
圖 2 尼羅羅非魚基因組 DNA 電泳圖Fig.2 Genomic DNAelectrophoresis map of Nile tilapia注:M: DL5000 DNAMarkerNote: M: DL5000 DNAMarker3.2 通過性別連鎖分子標記鑒別雌、雄魚采用性別特異分子標記引物通過 PCR 反應檢測各組雌雄羅非魚的遺傳性別,經過 1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,如圖 3 結果顯示,雌性尼羅羅非魚只有一條長1151bp 的條帶,雄性尼羅羅非魚包含兩條條帶,長度分別為 1151bp,711bp。M
【參考文獻】:
期刊論文
[1]大黃魚gsdf和amh基因的克隆及表達分析[J]. 林愛強,謝仰杰,徐雙斌,葉坤,龔詩琦,王志勇. 南方水產科學. 2017(06)
[2]魚類性腺發(fā)育及產卵類型研究進展[J]. 徐鋼春,鮑明明,杜富寬,徐跑. 長江大學學報(自科版). 2017(06)
[3]尼羅羅非魚仔魚個體發(fā)育及性腺分化的發(fā)育[J]. 陳興漢,劉曉春,蒙子寧,張勇,林浩然,葉衛(wèi). 熱帶生物學報. 2012(03)
[4]魚類性別決定的影響因素[J]. 田佳,陳蕓,王藝磊,張雅芝. 生命科學. 2010(10)
[5]vasa基因研究進展[J]. 陳玉冬,鄒志華,王藝磊,張子平. 動物學雜志. 2010(04)
[6]魚類生殖細胞[J]. 徐紅艷,李名友,桂建芳,洪云漢. 中國科學:生命科學. 2010(02)
[7]泥鰍的性腺分化及溫度對性腺分化的影響[J]. 陳玉紅,林丹軍,尤永隆. 中國水產科學. 2007(01)
[8]魚類精巢發(fā)育的研究進展[J]. 王成武,王樹迎,宋卉,張懷菊. 山東畜牧獸醫(yī). 2004(02)
[9]長江江豚精巢發(fā)育和組織學特征的研究[J]. 姜新發(fā). 水生生物學報. 1998(04)
[10]尼羅羅非魚性腺發(fā)育的研究[J]. 王令玲,仇潛如,吳;. 淡水漁業(yè). 1986(02)
碩士論文
[1]羅非魚gsdf在性腺的表達及其在性別決定中的功能[D]. 楊惠惠.西南大學 2014
[2]溫度對鯽魚性別決定的影響及分子機制探討[D]. 岳敏娟.福建師范大學 2009
本文編號:3441602
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