UC-MSCs條件培養(yǎng)基對HepG2影響的miRNAs差異表達譜分析及miR-3065-5p功能的初步探討
本文關(guān)鍵詞:UC-MSCs條件培養(yǎng)基對HepG2影響的miRNAs差異表達譜分析及miR-3065-5p功能的初步探討,,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。
【摘要】:間充質(zhì)干細胞(Mesenchymal stem cells,MSCs)是一類多潛能成體干細胞,廣泛存在于動物胎兒和成體多種組織器官中,例如:脂肪、軟骨、骨髓、羊水、臍帶和胎盤等。MSCs可以向腫瘤歸巢,參與腫瘤基質(zhì)形成,通過分泌一些細胞因子影響腫瘤細胞的增殖、遷移和腫瘤血管的形成,并且能夠改變腫瘤內(nèi)源性miRNAs的表達水平,進而影響腫瘤細胞的生物學(xué)行為。課題組前期研究發(fā)現(xiàn),一定濃度的UC-MSCs條件培養(yǎng)基能夠抑制肝癌HepG2的增殖。為深入了解其分子機制,我們首先對UC-MSCs條件培養(yǎng)基處理HepG2不同時間(1h、6h、12h、24h)后的4個處理組和對照組HepG2(Oh)樣本進行Small RNAs高通量測序,構(gòu)建了miRNAs差異表達譜。結(jié)果顯示:從對照組到處理組的5組cDNA文庫中,分別獲得1091、1079、1164、1086和1193萬余條干凈序列;與基因組比對發(fā)現(xiàn),每組樣本均達到67%以上的基因組覆蓋率;進一步與miRBase數(shù)據(jù)庫比對發(fā)現(xiàn),5組樣本分別檢測出942,995,1031,976和958種miRNAs成熟體。另外,處理組與對照組比對差異表達miRNAs數(shù)目表明,隨著條件培養(yǎng)基處理時間的延伸,差異表達的miRNAs數(shù)目逐步增多,miRNAs的表達始終處于持續(xù)變化的狀態(tài)。此外,為了驗證測序結(jié)果的可靠性,用qRT-PCR方法對10個差異表達的miRNAs進行了驗證,結(jié)果顯示,miRNAs的表達趨勢與測序結(jié)果基本一致。其次,采用TargetScan軟件預(yù)測了差異表達miRNAs的可能靶基因,并對這些靶基因進行GO功能和KEGG信號通路注釋。結(jié)果顯示:這些差異表達miRNAs的候選靶基因主要集中在細胞轉(zhuǎn)錄調(diào)控、細胞增殖、凋亡和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等生物學(xué)功能中;這些候選靶基因顯著富集于多條信號通路中,例如:MAPK信號通路、Wnt信號通路、鈣離子信號通路、單純皰疹感染和氨基糖代謝等通路;這提示UC-MSCs條件培養(yǎng)基確實會影響HepG2細胞的生理生化相關(guān)信號通路。再次,為更好地闡明UC-MSCs條件培養(yǎng)基抑制HepG2增殖的分子機理,我們將HepG2細胞的Small RNAs數(shù)據(jù)與前期實驗室分析該樣本轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進行關(guān)聯(lián)分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn):上調(diào)miRNAs與下調(diào)mRNAs之間的互作調(diào)控模式有12條;下調(diào)miRNAs與上調(diào)mRNAs之間的互作調(diào)控模式有5條。例如:輸出數(shù)據(jù)中,差異倍數(shù)較大的miR-375負調(diào)控基因ARHGAP21和JUND的表達,表達豐度較高的let-7f-3p和miR-34a-3p協(xié)同抑制因子IL6的表達。最后,篩選出增殖條目下的差異表達miR-3065-5p進行功能驗證,體外實驗證實,過表達miR-3065-5p可以顯著抑制HepG2細胞的增殖和侵襲,說明miR-3065-5p是一個潛在的腫瘤抑制miRNA。此外,miR-3065-5p過表達可降低HepG2細胞中的SATB1的表達,可推測SATB1極有可能是miR-3065-5p的靶基因。
【關(guān)鍵詞】:UC-MSCs條件培養(yǎng)基 HepG2 miRNAs表達譜 功能驗證
【學(xué)位授予單位】:內(nèi)蒙古大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2016
【分類號】:R735.7
【目錄】:
- 摘要4-6
- ABSTRACT6-10
- 符號說明10-11
- 第一章 miRNAs在肝癌發(fā)病中的作用(文獻綜述)11-16
- 1.1 miRNAs的概述11-12
- 1.2 miRNAs在肝癌發(fā)病中的作用12-15
- 1.2.1 miRNAs在肝癌發(fā)病中的基礎(chǔ)研究12-14
- 1.2.2 miRNAs在肝癌發(fā)病中的臨床研究14-15
- 1.3 結(jié)論與展望15-16
- 第二章 HepG2細胞系Small RNAs高通量測序及全局分析16-38
- 2.1 實驗材料16-17
- 2.1.1 細胞材料16
- 2.1.2 主要試劑與藥品16-17
- 2.1.3 主要儀器設(shè)備17
- 2.2 實驗方法17-23
- 2.2.1 細胞培養(yǎng)基配制17
- 2.2.2 HepG2和UC-MSCs培養(yǎng)17-19
- 2.2.2.1 細胞復(fù)蘇17-18
- 2.2.2.2 細胞傳代并鋪板18
- 2.2.2.3 UC-MSCs條件培養(yǎng)基處理HepG2細胞18
- 2.2.2.4 總RNA提取18-19
- 2.2.2.5 RNA純化19
- 2.2.3 HepG2細胞系RNA樣本的質(zhì)量檢測19
- 2.2.4 HepG2細胞系cDNA文庫制備及高通量測序19-20
- 2.2.5 HepG2細胞系Small RNAs測序數(shù)據(jù)輸出及全局分析20-23
- 2.2.5.1 Small RNAs測序數(shù)據(jù)的輸出20
- 2.2.5.2 已知miRNAs鑒定20-21
- 2.2.5.3 miRNAs差異表達分析21
- 2.2.5.4 qRT-PCR驗證21-22
- 2.2.5.5 miRNAs候選靶基因GO功能注釋分析22
- 2.2.5.6 miRNAs候選靶基因KEGG信號通路注釋分析22-23
- 2.2.5.7 肝癌HepG2細胞系miRNAs與mRNAs數(shù)據(jù)關(guān)聯(lián)分析23
- 2.3 結(jié)果與分析23-35
- 2.3.1 HepG2細胞系RNA樣本質(zhì)量檢測結(jié)果23-24
- 2.3.2 HepG2細胞系Small RNAs高通量測序及全局分析24-35
- 2.3.2.1 Small RNAs測序數(shù)據(jù)的輸出統(tǒng)計24
- 2.3.2.2 已知miRNAs鑒定結(jié)果24-25
- 2.3.2.3 miRNAs差異表達分析結(jié)果25-27
- 2.3.2.4 qRT-PCR驗證結(jié)果27-28
- 2.3.2.5 miRNAs候選靶基因GO功能注釋分析結(jié)果28-30
- 2.3.2.6 miRNAs候選靶基因KEGG信號通路注釋分析結(jié)果30-34
- 2.3.2.7 差異表達miRNAs與mRNAs關(guān)聯(lián)分析結(jié)果34-35
- 2.4 討論35-37
- 2.5 結(jié)論37-38
- 第三章 miR-3065-5p對HepG2的生物學(xué)行為的影響38-47
- 3.1 實驗材料38
- 3.1.1 主要試劑與耗材38
- 3.1.2 主要儀器設(shè)備38
- 3.2 實驗方法38-40
- 3.2.1 細胞培養(yǎng)與轉(zhuǎn)染39
- 3.2.2 細胞增殖能力檢測39
- 3.2.3 細胞侵襲能力檢測39-40
- 3.2.4 細胞周期檢測40
- 3.2.5 細胞凋亡檢測40
- 3.2.6 靶基因表達水平檢測40
- 3.3 實驗結(jié)果40-45
- 3.3.1 miRNA agomir轉(zhuǎn)染效果驗證40-41
- 3.3.2 細胞增殖能力檢測結(jié)果41-42
- 3.3.3 細胞侵襲能力檢測結(jié)果42-43
- 3.3.4 細胞周期檢測結(jié)果43
- 3.3.5 細胞凋亡檢測結(jié)果43-44
- 3.3.6 靶基因表達水平檢測結(jié)果44-45
- 3.4 討論45-46
- 3.5 結(jié)論46-47
- 參考文獻47-56
- 附錄56-63
- 攻讀學(xué)位期間取得的研究成果63-64
- 致謝64
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