流感減毒活疫苗誘發(fā)黏膜IgA抗體間接ELISA檢測方法的優(yōu)化及其實驗室內(nèi)控品的制備
發(fā)布時間:2022-11-01 22:07
目的優(yōu)化流感減毒活疫苗誘發(fā)黏膜IgA抗體的ELISA檢測方法,并制備IgA抗體實驗室內(nèi)控品。方法采用ELISA檢測法對流感病毒抗原(全病毒及其相應HA抗原)及包被濃度(0. 5、1、2、4μg/mL)、封閉液(1%BSA、10%FBS、5%脫脂奶粉)及封閉時間(1、1. 5、2 h)、樣本稀釋液(含1%BSA的PBST、含2%脫脂奶粉的PBST、樣本保存液)及樣本作用時間(45、60、75 min)、酶標抗體稀釋度(1∶1 000、1∶2 000、1∶4 000、1∶8 000)進行優(yōu)化。采用優(yōu)化的方法制備針對H1N1、H3N2和B型3個型別流感病毒的IgA抗體檢測用實驗內(nèi)控品,并用該方法對接種三價流感減毒活疫苗的20名志愿者的鼻咽拭子樣本進行檢測。結(jié)果最適間接ELISA法檢測條件為:以全病毒作為包被抗原,包被濃度為1μg/mL;以含1%牛血清白蛋白為封閉液封閉2 h;樣本稀釋液為2%脫脂奶粉的PBST,作用時間為60 min;酶標抗體稀釋度為1∶1 000。采用優(yōu)化方法制備的H1N1、H3N2、B型IgA抗體陽性實驗室內(nèi)控品幾何平均滴度分別為23、45、35,可接受范圍分別為16~3...
【文章頁數(shù)】:5 頁
【文章目錄】:
1 材料與方法
1.1 病毒
1.2 樣本
1.3 主要試劑
1.4 方法的建立
1.5 反應條件的優(yōu)化
1.5.1 包被抗原的確定
1.5.2 包被抗原濃度的確定
1.5.3 封閉液的確定
1.5.4 封閉時間的確定
1.5.5 樣本稀釋液的確定
1.5.6 樣本孵育時間的確定
1.5.7 酶標二抗稀釋度的確定
1.6 實驗室內(nèi)控品的制備
1.7 方法的初步應用
1.8統(tǒng)計學分析
2 結(jié)果
2.1 最適反應條件
2.1.1 最適包被抗原
2.1.2 最適抗原包被濃度
2.1.3 最適封閉液
2.1.4 最適封閉時間
2.1.5 最適樣本稀釋液
2.1.6 最適樣品孵育時間
2.1.7 最適酶標二抗稀釋度
2.2 實驗室內(nèi)控品標定結(jié)果
2.3 方法的初步應用
3 討論
本文編號:3700185
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1 材料與方法
1.1 病毒
1.2 樣本
1.3 主要試劑
1.4 方法的建立
1.5 反應條件的優(yōu)化
1.5.1 包被抗原的確定
1.5.2 包被抗原濃度的確定
1.5.3 封閉液的確定
1.5.4 封閉時間的確定
1.5.5 樣本稀釋液的確定
1.5.6 樣本孵育時間的確定
1.5.7 酶標二抗稀釋度的確定
1.6 實驗室內(nèi)控品的制備
1.7 方法的初步應用
1.8統(tǒng)計學分析
2 結(jié)果
2.1 最適反應條件
2.1.1 最適包被抗原
2.1.2 最適抗原包被濃度
2.1.3 最適封閉液
2.1.4 最適封閉時間
2.1.5 最適樣本稀釋液
2.1.6 最適樣品孵育時間
2.1.7 最適酶標二抗稀釋度
2.2 實驗室內(nèi)控品標定結(jié)果
2.3 方法的初步應用
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