顳葉癲癇大鼠模型海馬組織Nav1.2的動態(tài)表達(dá)變化
發(fā)布時間:2025-04-11 04:12
目的通過監(jiān)測Navl.2在顳葉癲癇大鼠模型海馬組織的動態(tài)表達(dá)變化,探討其在顳葉癲癇發(fā)病機(jī)制中的作用。 方法將6-8周齡健康雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,體重250士20g,共149只,隨機(jī)分為實(shí)驗(yàn)組和對照組。實(shí)驗(yàn)組采用氯化鋰-匹羅卡品腹腔注射法建立顳葉癲癇模型;對照組大鼠同期腹腔注射無菌生理鹽水。隨機(jī)抽取實(shí)驗(yàn)組6只,對照組3只行手術(shù)埋入海馬電極,分別于造模前,癲癇持續(xù)狀態(tài)(status epileptic us,SE)時,SE后1天,7天行腦電圖監(jiān)測。其余實(shí)驗(yàn)組和對照組按SE后1天、7天、15天、30天、60天分為5個亞組,分別進(jìn)行:①免疫組化檢測各時間點(diǎn)海馬組織CA1、CA3和DG區(qū)Nav1.2蛋白的表達(dá)變化;②Western blot檢測各時間點(diǎn)海馬Nav1.2的表達(dá)變化;③RT-PCR檢測各時間點(diǎn)實(shí)驗(yàn)組海馬Nav1.2mRNA水平較對照組的變化情況。 結(jié)果1.實(shí)驗(yàn)組大鼠SE誘發(fā)成功率為79.21%,死亡率為24.75%,模型成功率為54.45%。 2.免疫組化結(jié)果示Navl.2在海馬廣泛表達(dá),主要表達(dá)于突起和胞體。實(shí)驗(yàn)組SE后1天,7天,15天,3...
【文章頁數(shù)】:63 頁
【學(xué)位級別】:博士
【文章目錄】:
摘要
ABSTRACT
目錄
縮略詞表
第一章 前言
第二章 材料與方法
2.1 主要試劑與藥品
2.2 主要儀器
2.3 試劑配制
2.4 實(shí)驗(yàn)方法
2.4.1 實(shí)驗(yàn)對象及分組
2.4.2 腦電圖監(jiān)測
2.4.3 氯化鋰-匹羅卡品致癇大鼠模型的建立
2.4.4 標(biāo)本的準(zhǔn)備
2.4.5 免疫組化染色
2.4.6 Western Blot檢測
2.4.7 熒光實(shí)時定量逆轉(zhuǎn)錄PCR檢測
2.5 統(tǒng)計學(xué)分析
第三章 結(jié)果
3.1 氯化鋰-匹羅卡品顳葉癲癇大鼠模型的建立
3.1.1 行為學(xué)變化
3.1.2 腦電圖監(jiān)測結(jié)果
3.2 免疫組化染色
3.3 Nav1.2蛋白表達(dá)變化
3.4 Nav1.2 mRNA表達(dá)變化
第四章 討論
4.1 氯化鋰-匹羅卡品致癇大鼠模型評價
4.2 Na(v)1.2在海馬神經(jīng)元的亞細(xì)胞分布
4.3 Na(v)1.2在氯化鋰-匹羅卡品致癇后大鼠海馬的動態(tài)表達(dá)變化
4.4 Nav1.2參與癲癇發(fā)病機(jī)制的探討
第五章 結(jié)論
參考文獻(xiàn)
綜述
參考文獻(xiàn)
致謝
攻讀學(xué)位期間主要的研究成果目錄
本文編號:4039489
【文章頁數(shù)】:63 頁
【學(xué)位級別】:博士
【文章目錄】:
摘要
ABSTRACT
目錄
縮略詞表
第一章 前言
第二章 材料與方法
2.1 主要試劑與藥品
2.2 主要儀器
2.3 試劑配制
2.4 實(shí)驗(yàn)方法
2.4.1 實(shí)驗(yàn)對象及分組
2.4.2 腦電圖監(jiān)測
2.4.3 氯化鋰-匹羅卡品致癇大鼠模型的建立
2.4.4 標(biāo)本的準(zhǔn)備
2.4.5 免疫組化染色
2.4.6 Western Blot檢測
2.4.7 熒光實(shí)時定量逆轉(zhuǎn)錄PCR檢測
2.5 統(tǒng)計學(xué)分析
第三章 結(jié)果
3.1 氯化鋰-匹羅卡品顳葉癲癇大鼠模型的建立
3.1.1 行為學(xué)變化
3.1.2 腦電圖監(jiān)測結(jié)果
3.2 免疫組化染色
3.3 Nav1.2蛋白表達(dá)變化
3.4 Nav1.2 mRNA表達(dá)變化
第四章 討論
4.1 氯化鋰-匹羅卡品致癇大鼠模型評價
4.2 Na(v)1.2在海馬神經(jīng)元的亞細(xì)胞分布
4.3 Na(v)1.2在氯化鋰-匹羅卡品致癇后大鼠海馬的動態(tài)表達(dá)變化
4.4 Nav1.2參與癲癇發(fā)病機(jī)制的探討
第五章 結(jié)論
參考文獻(xiàn)
綜述
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致謝
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本文編號:4039489
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