目的應(yīng)用獼猴腦出血（ICH）模型,觀察基于生物電阻抗技術(shù)的無創(chuàng)腦水腫動態(tài)監(jiān)護儀對病情變化的監(jiān)測能力,明確該儀器在顱腦出血及后續(xù)血腫擴大過程中的數(shù)據(jù)變化規(guī)律,為其在臨床腦出血患者病情監(jiān)測中的應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。方法健康成年雄性獼猴3只,通過股動脈抽取自體血5 m L,采用二次注入法制備獼猴腦出血及血腫擴大模型。應(yīng)用有創(chuàng)顱內(nèi)壓監(jiān)測儀和無創(chuàng)腦水腫動態(tài)監(jiān)護儀同時對造模動物進(jìn)行病情動態(tài)監(jiān)測,術(shù)后通過MRI確認(rèn)腦出血造模情況。結(jié)果獼猴在腦出血造模后,出現(xiàn)了相應(yīng)的神經(jīng)損傷癥狀,MRI可見腦內(nèi)血腫位置、大小固定,表明該造模方法較為穩(wěn)定。另外,有創(chuàng)顱內(nèi)壓監(jiān)測指標(biāo)與無創(chuàng)腦水腫監(jiān)護儀擾動系數(shù)、相位斜率的變化趨勢基本一致。結(jié)論本研究建立的獼猴腦出血模型,可以較穩(wěn)定、可靠地模擬腦出血和血腫擴大的病情及其變化。無創(chuàng)腦水腫動態(tài)監(jiān)護儀可以比較直觀地反映腦內(nèi)血腫變化情況,結(jié)合其操作方法簡單、無創(chuàng)傷和可以持續(xù)動態(tài)監(jiān)測的優(yōu)點,為該設(shè)備用于臨床腦出血患者的病情監(jiān)測和臨床治療指導(dǎo)提供了重要的實驗依據(jù)。 

【文章來源】：臨床神經(jīng)外科雜志. 2020,17(06)

【文章頁數(shù)】：5 頁

【部分圖文】：

獼猴腦出血造模后行為學(xué)評分變化

基線位置全頻相位斜率值(-0.955 8±0.003 8)。第一次注血過程中，全頻相位斜率值迅速上升到(-0.949 3±0.001 5)，而后稍下降到(-0.949 8±0.001 5)。在第二次注血時，全頻相位斜率值同樣先迅速上升到(-0.943 9±0.000 8)，而后下降到穩(wěn)定在(-0.944 5±0.004 3)。見圖5。3 討論

常用的ICH實驗動物模型包括嚙齒類動物[11]、狗[12]、豬[13]、兔[14]、猴[15]等。而最主要的是嚙齒類動物。因為其腦組織與人腦的相似性高，繁殖、購買及飼養(yǎng)的成本較低，體積小容易操作和管理，并且多年來的研究已經(jīng)積累了豐富的實驗基礎(chǔ)，有利于ICH的研究[16]。靈長類動物的生理結(jié)構(gòu)和腦組織結(jié)構(gòu)等都與人極為相似，并且其DNA有90%以上與人類相同。因此靈長類動物被認(rèn)為是臨床研究中最佳的實驗對像，但由于成本高，飼養(yǎng)費用貴等原因，無法大批量使用。動物的ICH模型制作方法主要有以下幾種:(1)自體血注入法:這是目前在各類實驗動物上應(yīng)用最多的ICH模型制作方法，并由單次注射法[17]逐漸演變?yōu)楹髞淼膬刹阶⑸浞╗18]、三步注射[19]法，通過分次注射和進(jìn)針停留，減少了血液的順針道反流，這樣制作的模型具有成功率高、血腫體積穩(wěn)定不會反流等優(yōu)勢，能較好地適用臨床上腦內(nèi)血腫的占位效應(yīng)及繼發(fā)性腦損傷的研究;(2)膠原酶誘導(dǎo)法:膠原酶是一種能夠水解蛋白的酶[16]，該物質(zhì)被認(rèn)為是ICH后血腫范圍擴大以及血管源性水腫發(fā)生的主要原因[20]。該方法主要在嚙齒類動物上應(yīng)用較多，通過膠原酶破壞血管內(nèi)皮基底膜上的膠原蛋白，導(dǎo)致血-腦屏障破壞，產(chǎn)生滲血，慢慢形成片狀出血。該模型主要應(yīng)用于ICH后腦水腫的研究，但其引起的炎癥反應(yīng)與臨床ICH患者出現(xiàn)的反應(yīng)有顯著區(qū)別[21];(3)腦內(nèi)微氣囊填充法:該方法是將一個微氣囊植入動物腦內(nèi)后，將血液注入氣囊內(nèi)充漲氣囊，這種方法與臨床腦出血的病理變化相差甚遠(yuǎn)，由于氣囊體積相對較大，因此主要用于兔、狗、豬等大型動物ICH的單純機械損傷(即應(yīng)力性損傷)研究，與血腫引起的生化反應(yīng)、炎癥反應(yīng)等相關(guān)性不大[22]。

【參考文獻(xiàn)】：
期刊論文
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