4.1B對小鼠黑色素瘤細胞增殖、遷移和上皮間質轉化的影響
本文關鍵詞:4.1B對小鼠黑色素瘤細胞增殖、遷移和上皮間質轉化的影響
【摘要】:研究目的目前,黑色素瘤已經(jīng)成為全球發(fā)病率增長最快的惡性腫瘤之一。腫瘤轉移導致傳統(tǒng)治療方法不能取得理想的效果,因此,有效抑制腫瘤轉移可以改善黑色素瘤的治療效果。EMT在腫瘤轉移、干細胞性、耐藥性中發(fā)揮重要作用,因此尋找EMT相關的負調(diào)控因子,對惡性腫瘤的預防和預后都具有重要意義。蛋白4.1B是一種骨架蛋白,已有研究表明在多種腫瘤中蛋白4.1B呈現(xiàn)不同程度的表達下調(diào)或缺失,可能是一種潛在的腫瘤抑制因子。我們在前期研究中發(fā)現(xiàn)4.1B在B16和B16-F10細胞中均呈現(xiàn)表達缺失,構建pEGFP-N1-EPB41L3真核表達載體,探究4.1B在黑色素瘤細胞轉移中的作用。將外源性的EPB41L3基因轉染4.1B缺失表達的黑色素瘤細胞系,探討其對細胞的增殖和遷移能力的影響,以及在B16皮下移植瘤和B16-F10肺轉移中的作用,并初步探索4.1B調(diào)控黑色素瘤細胞EMT的分子機制。方法1.PCR和western blot技術篩選蛋白4.1家族在黑色素瘤細胞B16和B16-F10中的表達情況;熒光定量PCR進一步檢測EPB41L3基因的表達情況。2.構建pEGFP-N1-EPB41L3真核表達載體,轉染B16和B16-F10細胞,熒光顯微鏡觀察蛋白4.1B在黑色素瘤細胞內(nèi)的定位情況,PCR、熒光定量PCR以及western blot實驗方法檢測蛋白4.1B的表達情況。3.MTT法檢測蛋白4.1B對黑色素瘤細胞體外增殖的影響,細胞劃痕實驗檢測蛋白4.1B對其遷移能力的影響。4.熒光定量PCR和western blot技術檢測EMT相關標志物E-cadherin、vi mentin、MMP-2、MMP-9的表達情況。熒光定量PCR檢測啟動EMT相關的T GF-β家族成員、轉錄因子Snail、Slug、Twist 2基因的表達量。5.熒光定量PCR技術檢測蛋白4.1B對integrinβ1基因水平表達量的影響。流式細胞術檢測蛋白4.1B對細胞表面integrinβ1的表達以及活化的影響。6.B16皮下移植瘤模型以及B16-F10肺轉移模型評估蛋白4.1B的抑癌功能。結果1.小鼠黑色素瘤細胞系B16和B16-F10中,4.1R、4.1N、4.1G在核酸和蛋白水平均正常表達,但是蛋白4.1B在兩種細胞中都呈現(xiàn)表達缺失。2.成功構建了真核表達載體pEGFP-N1-EPB41L3,EPB41L3基因轉染細胞后熒光顯微鏡鏡檢,可觀察到綠色熒光。PCR、熒光定量PCR和western blot技術檢測結果顯示EPB41L3基因轉染后細胞均表達4.1B。3.蛋白4.1B對黑色素瘤細胞系B16和B16-F10細胞的體外增殖以及遷移具有抑制作用。4.蛋白4.1B表達后,上皮型標志物E-cadherin的表達出現(xiàn)明顯上調(diào),間充質型標志物vimentin、MMP-9的表達出現(xiàn)下調(diào)。蛋白4.1B可能通過抑制轉錄因子Snail、Slug、Twist 2基因的表達抑制EMT。5.蛋白4.1B對細胞表面integrinβ1的表達和活化沒有影響。6.蛋白4.1B對B16皮下移植瘤和B16-F10肺轉移具有一定的抑制作用。結論蛋白4.1B對B16和B16-F10細胞的增殖和遷移具有抑制作用,并且能夠通過下調(diào)相關轉錄因子Snail、Slug、Twist 2的表達水平,調(diào)節(jié)EMT相關標志物E-cadherin、vimentin、MMP-9的表達,從而抑制黑色素瘤細胞EMT,抑制腫瘤細胞的轉移。動物實驗結果進一步證實了蛋白4.1B能夠顯著性抑制B16皮下移植瘤的生長,對小鼠肺轉移模型中B16-F10的肺轉移也具有一定的抑制作用。
【關鍵詞】:腫瘤轉移 黑色素瘤 4.1B 增殖 EMT
【學位授予單位】:鄭州大學
【學位級別】:碩士
【學位授予年份】:2016
【分類號】:R739.5
【目錄】:
- 摘要4-6
- Abstract6-14
- 常見英文縮寫一覽表(文中先后順序)14-16
- 第一章 引言16-23
- 1.1 黑色素瘤16
- 1.2 腫瘤轉移16-17
- 1.3 上皮間質轉化17-18
- 1.4 蛋白 4.1B18-20
- 1.5 研究目的與意義20
- 1.6 研究內(nèi)容與方法20-22
- 1.7 技術路線22-23
- 第二章 蛋白 4.1 家族在小鼠黑色素瘤細胞中的表達篩選23-38
- 2.1 材料23-26
- 2.1.1 細胞株23
- 2.1.2 主要試劑23-24
- 2.1.3 主要儀器24-25
- 2.1.4 常用試劑配制25-26
- 2.2 方法26-35
- 2.2.1 細胞培養(yǎng)的常規(guī)方法26-28
- 2.2.2 PCR法檢測蛋白 4.1 家族基因的表達情況28-30
- 2.2.3 Western blot技術檢測蛋白 4.1 家族的表達30-33
- 2.2.4 熒光定量PCR檢測EPB41L3基因的表達33-35
- 2.2.5 統(tǒng)計學分析35
- 2.3 結果35-37
- 2.3.1 PCR法初步篩選蛋白 4.1 家族的表達35-36
- 2.3.2 Western blot法檢測蛋白 4.1 家族的表達情況36-37
- 2.3.3 熒光定量PCR法檢測EPB41L3基因的表達情況37
- 2.4 討論37-38
- 第三章 真核表達載體p EGFP-N1-EPB41L3的構建和表達38-56
- 3.1 材料38-40
- 3.1.1 細胞株38
- 3.1.2 主要試劑38-39
- 3.1.3 主要儀器39-40
- 3.1.4 常用試劑配制40
- 3.2 方法40-46
- 3.2.1 小鼠EPB41L3基因的擴增40-41
- 3.2.2 真核表達載體p EGFP-N1-EPB41L3的構建41-43
- 3.2.3 熒光顯微鏡檢測 4.1B融合蛋白的表達43-44
- 3.2.4 PCR檢測EPB41L3的表達44
- 3.2.5 熒光定量PCR法檢測EPB41L3基因的表達情況44-45
- 3.2.6 Western blot法檢測蛋白 4.1B45
- 3.2.7 統(tǒng)計學分析45-46
- 3.3 結果46-55
- 3.3.1 小鼠EPB41L3基因的擴增結果46
- 3.3.2 繪制小鼠EPB41L3基因的外顯子圖譜46-47
- 3.3.3 真核表達載體p EGFP-N1-EPB41L3的鑒定47-50
- 3.3.4 熒光顯微鏡觀察 4.1B在細胞內(nèi)的表達情況50-52
- 3.3.5 PCR檢測EPB41L3基因的表達情況52
- 3.3.6 熒光定量PCR檢測EPB41L3基因的表達情況52-53
- 3.3.7 Western blot法檢測B16和B16-F10細胞表達蛋白 4.1B53-55
- 3.4 討論55-56
- 第四章 4.1B對B16、B16-F10細胞體外增殖和遷移的影響56-63
- 4.1 材料56
- 4.1.1 細胞株56
- 4.1.2 主要試劑56
- 4.1.3 主要儀器56
- 4.1.4 常用試劑配制56
- 4.2 方法56-59
- 4.2.1 MMT法檢測蛋白 4.1B抑制B16的體外增殖56-57
- 4.2.2 MTT法檢測蛋白 4.1B抑制B16-F10的體外增殖57-58
- 4.2.3 劃痕實驗檢測蛋白 4.1B對細胞遷移的影響58
- 4.2.4 統(tǒng)計學分析58-59
- 4.3 結果59-62
- 4.3.1 蛋白 4.1B抑制B16細胞的體外增殖59-60
- 4.3.2 蛋白 4.1B抑制B16-F10細胞的體外增殖60-61
- 4.3.3 蛋白 4.1B抑制黑色素瘤細胞系B16、B16-F10的遷移61-62
- 4.4 討論62-63
- 第五章 4.1B抑制黑色素瘤細胞EMT的機制研究63-75
- 5.1 材料63-64
- 5.1.1 細胞株63
- 5.1.2 主要試劑63-64
- 5.1.3 主要儀器64
- 5.1.4 常用試劑配制64
- 5.2 方法64-67
- 5.2.1 熒光定量PCR檢測EMT相關基因的表達64-65
- 5.2.2 Western blot法檢測EMT相關蛋白的表達情況65-66
- 5.2.3 流式細胞術檢測integrin β1 的表達和活化66-67
- 5.2.4 統(tǒng)計學分析67
- 5.3 結果67-73
- 5.3.1 蛋白 4.1B影響EMT相關marker的表達67-68
- 5.3.2 蛋白 4.1B對TGF-β 家族成員的影響68-69
- 5.3.3 蛋白 4.1B抑制驅動EMT的相關轉錄因子69-70
- 5.3.4 蛋白 4.1B對MMP-2 和MMP-9 的影響70-71
- 5.3.5 蛋白 4.1B對integrinβ1 的影響71-73
- 5.4 討論73-75
- 第六章 小鼠皮下移植瘤和肺轉移動物實驗驗證 4.1B功能75-80
- 6.1 材料75-76
- 6.1.1 細胞株75
- 6.1.2 主要試劑75
- 6.1.3 主要儀器75
- 6.1.4 常用試劑配制75-76
- 6.1.5 實驗動物76
- 6.2 方法76-77
- 6.2.1 蛋白 4.1B對B16皮下移植瘤的影響76
- 6.2.2 蛋白 4.1B對B16-F10肺轉移的影響76-77
- 6.2.3 統(tǒng)計學分析77
- 6.3 結果77-79
- 6.3.1 蛋白 4.1B對B16皮下移植瘤的影響77-78
- 6.3.2 蛋白 4.1B對B16-F10肺轉移的影響78-79
- 6.4 討論79-80
- 第七章 全文討論80-82
- 全文結論82-83
- 參考文獻83-88
- 個人簡歷、碩士期間發(fā)表的學術論文及研究成果88-89
- 致謝89
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3 白玲,陳保生;穩(wěn)定表達組織因子的黑色素瘤細胞中血管內(nèi)皮細胞生長因子的誘導[J];基礎醫(yī)學與臨床;2003年01期
4 肖國宏;羅成群;唐國茂;周建大;;人內(nèi)皮抑素基因轉染原代成人黑色素瘤細胞[J];中南大學學報(醫(yī)學版);2005年06期
5 李鳳云;免疫RNA引起對黑色素瘤細胞的溶解[J];蚌埠醫(yī)學院學報;1978年S1期
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8 楊方黎;唐均英;米彥;姚陳果;王劍飛;;納秒級陡脈沖電場誘導人黑色素瘤細胞裸鼠皮下移植瘤凋亡作用及機制[J];第四軍醫(yī)大學學報;2009年13期
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1 桑紅;;積雪甙對黑色素瘤細胞生長影響的實驗研究[A];2002中國中西醫(yī)結合皮膚性病學術會議論文匯編[C];2002年
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7 張婧思;間充質干細胞對黑色素瘤細胞的抑制作用及其機制的研究[D];北京交通大學;2016年
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10 周憶新;裂解型基因重組腺病毒對人黑色素瘤細胞及小鼠肝癌抑瘤作用的實驗研究[D];蘇州大學;2007年
本文編號:525962
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