CRISPR/Cas9系統(tǒng)介導(dǎo)的斑馬魚kctd1純合突變體的構(gòu)建
發(fā)布時(shí)間:2021-10-25 02:21
KCTD1(potassium channel tetramerization domain containing 1)屬于鉀離子通道四聚化結(jié)構(gòu)域蛋白基因家族的成員,該家族成員的N端具有保守的BTB(Bric-a-brack, Tram-track, Broad complex)結(jié)構(gòu)域和一個(gè)鉀離子四聚體通道結(jié)構(gòu)域(K-ketra),但C端是多變的。人類KCTD基因家族成員的突變和表達(dá)異常與多種疾病相關(guān)。研究選取人類皮膚-耳朵-乳頭綜合征(Scalp-Ear-Nipple Syndrome,SEN)致病基因KCTD1在斑馬魚(Danio rerio)中的直系同源基因kctd1,利用CRISPR/Cas9技術(shù)進(jìn)行基因敲除,通過F1剪尾檢測和F1內(nèi)交,成功獲得kctd1 F2純合突變體。獲得的突變體類型為+7 bp和-8 bp。研究結(jié)果對(duì)于人類KCTD1基因功能以及KCTD1致病機(jī)理的研究具有參考價(jià)值。
【文章來源】:生物學(xué)雜志. 2019,36(05)北大核心CSCD
【文章頁數(shù)】:5 頁
【部分圖文】:
靶點(diǎn)設(shè)計(jì)示意圖注:紅色堿基代表
?舛?量檢測,使用2-ΔΔct法計(jì)算基因相對(duì)表達(dá)量,使用軟件Graphpadprism5繪制柱狀圖。表2qRT-PCR引物序列Table2PrimersequencesforqRT-PCR基因名稱Genename引物序列(5'-3')Primersequence退火溫度Annealingtemperature片段大小Productsize參考文獻(xiàn)Referenceβ-actin(F)CGAGCTGTCTTCCCATCCA(R)TCACCAACGTAGCTGTCTTTCTG60℃86bp[25]kctd1(F)ACGCTGAGTGGAGATAAAGCC(R)GTACCCGTTCAGAGGGAAGC60℃129bp—紅框代表PAM和靶序列,黑色箭頭代表Cas9切割位置圖2kctd1注射敲除后T7E1酶切檢測和測序分析Figure2T7E1assayandsequencinganalysisofkctd1knock-outafterinjection2結(jié)果與分析2.1F0顯微注射敲除檢測經(jīng)過T7E1酶切檢測,根據(jù)公式100×{1-sqrt[1-(b+c)/(a+b+c)]}計(jì)算敲除效率,a為未切開條帶灰度值,b、c為切開條帶的灰度值[26]。得出kctd1顯微注射的敲除效率范圍是11.60%~37.41%,將酶切成功對(duì)應(yīng)的PCR產(chǎn)物進(jìn)行測序,發(fā)現(xiàn)在靶點(diǎn)附近及以后出現(xiàn)亂峰,說明敲除成功(圖2)。2.2F1突變類型檢測通過F1成魚剪尾及PCR產(chǎn)物TA克隆檢測,成功獲得kctd1兩種突變類型,為+7bp和-8bp(圖3)。2.3F2純合突變體的篩選經(jīng)過序列比對(duì),得到F2兩種突變類型的純合突變體-8bp-/-18尾,+7bp-/-11尾,F(xiàn)2具體基因型統(tǒng)計(jì)情況如表3所示。紅框代表靶序列,紅色箭頭代表Cas9切割位置圖3F1突變類型檢測Figure3GenotypeidentificationofF19第36卷第5期2019?
6]。得出kctd1顯微注射的敲除效率范圍是11.60%~37.41%,將酶切成功對(duì)應(yīng)的PCR產(chǎn)物進(jìn)行測序,發(fā)現(xiàn)在靶點(diǎn)附近及以后出現(xiàn)亂峰,說明敲除成功(圖2)。2.2F1突變類型檢測通過F1成魚剪尾及PCR產(chǎn)物TA克隆檢測,成功獲得kctd1兩種突變類型,為+7bp和-8bp(圖3)。2.3F2純合突變體的篩選經(jīng)過序列比對(duì),得到F2兩種突變類型的純合突變體-8bp-/-18尾,+7bp-/-11尾,F(xiàn)2具體基因型統(tǒng)計(jì)情況如表3所示。紅框代表靶序列,紅色箭頭代表Cas9切割位置圖3F1突變類型檢測Figure3GenotypeidentificationofF19第36卷第5期2019年10月生物學(xué)雜志JOURNALOFBIOLOGYVol.36No.5Oct.2019???????????????????????????????????????????????
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]CRISPR/Cas9技術(shù)及其在藥物研發(fā)中的應(yīng)用[J]. 陸娣,李莉,鄧賢明. 藥學(xué)學(xué)報(bào). 2018(01)
[2]CRISPR/Cas9介導(dǎo)的基因組編輯技術(shù)及研究進(jìn)展與應(yīng)用[J]. 邢國杰,李桐,鄭慧瑾,張玲,姜曉坤. 東北農(nóng)業(yè)科學(xué). 2017(06)
[3]CRISPR/Cas9 system: a powerful technology for in vivo and ex vivo gene therapy[J]. Xiaohui Zhang,Liren Wang,Mingyao Liu,Dali Li. Science China(Life Sciences). 2017(05)
[4]Validation of Zebrafish (Danio rerio) Reference Genes for Quantitative Real-time RT-PCR Normalization[J]. Andrew DODD,Daniel LA,Warren C. MCNABB,Donald R. LOVE. Acta Biochimica et Biophysica Sinica. 2007(05)
本文編號(hào):3456457
【文章來源】:生物學(xué)雜志. 2019,36(05)北大核心CSCD
【文章頁數(shù)】:5 頁
【部分圖文】:
靶點(diǎn)設(shè)計(jì)示意圖注:紅色堿基代表
?舛?量檢測,使用2-ΔΔct法計(jì)算基因相對(duì)表達(dá)量,使用軟件Graphpadprism5繪制柱狀圖。表2qRT-PCR引物序列Table2PrimersequencesforqRT-PCR基因名稱Genename引物序列(5'-3')Primersequence退火溫度Annealingtemperature片段大小Productsize參考文獻(xiàn)Referenceβ-actin(F)CGAGCTGTCTTCCCATCCA(R)TCACCAACGTAGCTGTCTTTCTG60℃86bp[25]kctd1(F)ACGCTGAGTGGAGATAAAGCC(R)GTACCCGTTCAGAGGGAAGC60℃129bp—紅框代表PAM和靶序列,黑色箭頭代表Cas9切割位置圖2kctd1注射敲除后T7E1酶切檢測和測序分析Figure2T7E1assayandsequencinganalysisofkctd1knock-outafterinjection2結(jié)果與分析2.1F0顯微注射敲除檢測經(jīng)過T7E1酶切檢測,根據(jù)公式100×{1-sqrt[1-(b+c)/(a+b+c)]}計(jì)算敲除效率,a為未切開條帶灰度值,b、c為切開條帶的灰度值[26]。得出kctd1顯微注射的敲除效率范圍是11.60%~37.41%,將酶切成功對(duì)應(yīng)的PCR產(chǎn)物進(jìn)行測序,發(fā)現(xiàn)在靶點(diǎn)附近及以后出現(xiàn)亂峰,說明敲除成功(圖2)。2.2F1突變類型檢測通過F1成魚剪尾及PCR產(chǎn)物TA克隆檢測,成功獲得kctd1兩種突變類型,為+7bp和-8bp(圖3)。2.3F2純合突變體的篩選經(jīng)過序列比對(duì),得到F2兩種突變類型的純合突變體-8bp-/-18尾,+7bp-/-11尾,F(xiàn)2具體基因型統(tǒng)計(jì)情況如表3所示。紅框代表靶序列,紅色箭頭代表Cas9切割位置圖3F1突變類型檢測Figure3GenotypeidentificationofF19第36卷第5期2019?
6]。得出kctd1顯微注射的敲除效率范圍是11.60%~37.41%,將酶切成功對(duì)應(yīng)的PCR產(chǎn)物進(jìn)行測序,發(fā)現(xiàn)在靶點(diǎn)附近及以后出現(xiàn)亂峰,說明敲除成功(圖2)。2.2F1突變類型檢測通過F1成魚剪尾及PCR產(chǎn)物TA克隆檢測,成功獲得kctd1兩種突變類型,為+7bp和-8bp(圖3)。2.3F2純合突變體的篩選經(jīng)過序列比對(duì),得到F2兩種突變類型的純合突變體-8bp-/-18尾,+7bp-/-11尾,F(xiàn)2具體基因型統(tǒng)計(jì)情況如表3所示。紅框代表靶序列,紅色箭頭代表Cas9切割位置圖3F1突變類型檢測Figure3GenotypeidentificationofF19第36卷第5期2019年10月生物學(xué)雜志JOURNALOFBIOLOGYVol.36No.5Oct.2019???????????????????????????????????????????????
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]CRISPR/Cas9技術(shù)及其在藥物研發(fā)中的應(yīng)用[J]. 陸娣,李莉,鄧賢明. 藥學(xué)學(xué)報(bào). 2018(01)
[2]CRISPR/Cas9介導(dǎo)的基因組編輯技術(shù)及研究進(jìn)展與應(yīng)用[J]. 邢國杰,李桐,鄭慧瑾,張玲,姜曉坤. 東北農(nóng)業(yè)科學(xué). 2017(06)
[3]CRISPR/Cas9 system: a powerful technology for in vivo and ex vivo gene therapy[J]. Xiaohui Zhang,Liren Wang,Mingyao Liu,Dali Li. Science China(Life Sciences). 2017(05)
[4]Validation of Zebrafish (Danio rerio) Reference Genes for Quantitative Real-time RT-PCR Normalization[J]. Andrew DODD,Daniel LA,Warren C. MCNABB,Donald R. LOVE. Acta Biochimica et Biophysica Sinica. 2007(05)
本文編號(hào):3456457
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