類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎微生物組與免疫機(jī)制的研究
發(fā)布時(shí)間:2023-04-03 21:43
背景介紹:類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(Rheumatoid arthritis,RA)是一種以慢性、小關(guān)節(jié)對(duì)稱的炎癥性為主的全身性的自身免疫性疾病,是導(dǎo)致我國人口殘疾的第二大原因。此外,雖然甲氨蝶呤等改善病情的抗風(fēng)濕藥能緩解病情,卻無法徹底根治,而且有嚴(yán)重的副作用。目前RA已成為危害人類健康的重要疾病之一,但其病因尚不清楚。RA被認(rèn)為與細(xì)菌感染密切相關(guān),但其作用機(jī)制不明確。2015年7月,北京協(xié)和醫(yī)院和華大基因等機(jī)構(gòu)的研究人員共同合作完成了RA患者口腔和腸道微生物元基因組研究發(fā)現(xiàn)口腔和腸道菌群變化是病理生理和疾控的重要環(huán)節(jié)。發(fā)表在《自然》雜志。但是這些口腔和腸道菌群參與RA的具體機(jī)制不明確。2020年3月11日,加州大學(xué)圣地亞哥分校醫(yī)學(xué)院研究人員開發(fā)了一種新穎的方法,可以通過簡單地分析血液中存在的微生物DNA的模式來識(shí)別癌癥,發(fā)表在《自然》雜志。RA的血和滑液是否存在微生物DNA不明確。我們前期研究證明RA的腸道菌群失衡,并發(fā)現(xiàn)普雷沃氏菌(Prevotella copri)、牙齦卟啉單胞菌、擬桿菌等顯著表達(dá)失衡。但是菌群如何參與RA的具體發(fā)病機(jī)制均不清楚。為了能夠深入研究參與RA的機(jī)制,我們采用大量...
【文章頁數(shù)】:114 頁
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
英文縮略語表
第一章 前言
1.1 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的概述
1.1.1 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的發(fā)病病因
1.1.2 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎臨床表現(xiàn)
1.1.3 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎臨床診斷
1.1.4 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎臨床治療
1.2 研究背景及意義
1.3 國內(nèi)外研究進(jìn)展
1.3.1 微生物可能是導(dǎo)致RA發(fā)病的重要病理因素
1.3.2 腸道微生物和口腔微生物均可能導(dǎo)致RA的發(fā)生
1.3.2.1 腸道微生物與RA發(fā)病的關(guān)系
1.3.2.2 口腔菌群與RA發(fā)病的關(guān)系
1.3.3 微生物在風(fēng)濕性疾病中的代謝作用機(jī)制
1.3.4 滑膜組織和滑膜液中是否存在微生物的核酸序列得到關(guān)注
1.4 本研究的研究內(nèi)容及技術(shù)路線
1.5 本研究的思路擬解決的關(guān)鍵科學(xué)問題
第二章 RA中微生物與其代謝物的作用機(jī)制研究
2.1 引言
2.2 材料與方法
2.2.1 臨床樣本
2.2.2 試劑耗材
2.2.3 儀器設(shè)備
2.2.4 實(shí)驗(yàn)方法
2.2.4.1 滑膜液或唾液細(xì)菌DNA提取方法
2.2.4.2 滑膜組織細(xì)菌DNA提取方法
2.2.4.3 糞便DNA提取方法
2.2.4.4 PCR產(chǎn)物擴(kuò)增
2.2.4.5 ELISA檢測炎性因子的表達(dá)
2.2.4.6 菌群數(shù)據(jù)生物統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2.2.4.7 非靶向代謝組學(xué)
2.2.4.8 非靶向代謝組學(xué)數(shù)據(jù)分析
2.2.4.9 特異菌群目的基因的獲取及PCR反應(yīng)驗(yàn)證
2.2.4.10 瓊脂糖凝膠電泳
2.2.4.11 驗(yàn)證回收PCR產(chǎn)物
2.2.4.12 質(zhì)粒構(gòu)建
2.2.4.13 實(shí)時(shí)熒光定量PCR
2.2.4.14 實(shí)時(shí)熒光定量PCR數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2.3 結(jié)果
2.3.1 微生物組整體測序PCoA分析
2.3.2 整體微生物組的組成結(jié)構(gòu)分布
2.3.3 RA與 OA之間菌群差異分析
2.3.4 基于PICRUSt算法預(yù)測微生物的功能
2.3.5 滑膜液中非靶向代謝組學(xué)整體PCoA分析
2.3.6 滑膜液中代謝產(chǎn)物的整體結(jié)構(gòu)
2.3.7 代謝物的KEGG通路分析
2.3.8 RA腸道菌群、口腔菌群與滑膜液中菌的核酸片段的一致性
2.3.9 PCR定量分析結(jié)果
2.3.9.1 擬桿菌的定量結(jié)果
2.3.9.2 普雷沃氏菌的定量結(jié)果
2.3.9.3 牙齦卟啉單胞菌的定量結(jié)果
2.4 討論
2.5 結(jié)論
第三章 益生菌對(duì)類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎成纖維細(xì)胞的作用機(jī)制
3.1 引言
3.2 材料及方法
3.2.1 樣本采集
3.2.2 主要試劑及耗材
3.2.3 實(shí)驗(yàn)方法
3.2.3.1 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜成纖維細(xì)胞的原代培養(yǎng)
3.2.3.2 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜成纖維細(xì)胞的傳代培養(yǎng)
3.2.3.3 原代培養(yǎng)滑膜成纖維細(xì)胞的鑒定
3.2.3.4 滑膜細(xì)胞計(jì)數(shù)
3.2.3.5 益生菌群刺激類風(fēng)濕滑膜成纖維細(xì)胞
3.2.3.6 采用MTS法檢測細(xì)胞增殖能力
3.2.3.7 采用劃痕法檢測細(xì)胞遷移能力
3.2.3.8 采用Transwell法檢測細(xì)胞侵襲能力
3.2.3.9 ELISA酶聯(lián)免疫實(shí)驗(yàn)方法檢測炎性因子水平
3.2.3.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
3.3 結(jié)果
3.3.1 MTS方法檢測益生菌干預(yù)細(xì)胞增殖能力
3.3.2 劃痕法檢測益生菌干預(yù)表對(duì)RA FLS遷移能力的影響
3.3.3 Transwell方法檢測益生菌干預(yù)對(duì)RA FLS侵襲能力的影響
3.3.4 ELISA法檢測炎性因子的表達(dá)
3.4 討論
3.5 結(jié)論
第四章 益生菌群對(duì)膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎的機(jī)制研究
4.1 引言
4.2 材料與方法
4.2.1 材料
4.2.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
4.2.1.2 主要試劑耗材
4.2.1.3 主要儀器
4.2.2 實(shí)驗(yàn)方法
4.2.2.1 構(gòu)建Ⅱ型膠原誘導(dǎo)性DBA1 小鼠關(guān)節(jié)炎模型
4.2.2.2 關(guān)節(jié)炎的評(píng)分
4.2.2.3 病理組織學(xué)分析
4.2.2.4 小鼠CT掃描骨骼的變化
4.2.2.5 小鼠糞便樣本收集
4.2.2.6 糞便DNA提取方法同2.2.4.3
4.2.2.7 PCR產(chǎn)物擴(kuò)增
4.2.2.8 ELISA法檢測小鼠血清中IL-17、IL-6、IL-1α的水平
4.3 結(jié)果
4.3.1 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)小鼠誘導(dǎo)成功
4.3.2 16SrRNA V1-V2 區(qū)測序分析整體微生物組變化
4.3.3 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠腸道菌群β-多樣性差異
4.3.4 通過Veen圖比較各組OTU分布差異
4.3.5 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠腸道菌群的門分類水平差異
4.3.6 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠的腸道菌群屬分類水平的差異
4.3.7 各組膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠腸道菌群差異分析
4.3.8 CT掃描顯示益生菌對(duì)CIA小鼠具有保護(hù)作用
4.3.9 病理組織學(xué)分析益生菌制劑干預(yù)CIA小鼠結(jié)構(gòu)
4.3.10 益生菌制劑可調(diào)節(jié)炎性細(xì)胞因子水平
4.4 討論
4.5 結(jié)論
總結(jié)與展望
參考文獻(xiàn)
致謝
攻讀學(xué)位期間所取得的成果
本文編號(hào):3781197
【文章頁數(shù)】:114 頁
【學(xué)位級(jí)別】:博士
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摘要
Abstract
英文縮略語表
第一章 前言
1.1 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的概述
1.1.1 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎的發(fā)病病因
1.1.2 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎臨床表現(xiàn)
1.1.3 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎臨床診斷
1.1.4 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎臨床治療
1.2 研究背景及意義
1.3 國內(nèi)外研究進(jìn)展
1.3.1 微生物可能是導(dǎo)致RA發(fā)病的重要病理因素
1.3.2 腸道微生物和口腔微生物均可能導(dǎo)致RA的發(fā)生
1.3.2.1 腸道微生物與RA發(fā)病的關(guān)系
1.3.2.2 口腔菌群與RA發(fā)病的關(guān)系
1.3.3 微生物在風(fēng)濕性疾病中的代謝作用機(jī)制
1.3.4 滑膜組織和滑膜液中是否存在微生物的核酸序列得到關(guān)注
1.4 本研究的研究內(nèi)容及技術(shù)路線
1.5 本研究的思路擬解決的關(guān)鍵科學(xué)問題
第二章 RA中微生物與其代謝物的作用機(jī)制研究
2.1 引言
2.2 材料與方法
2.2.1 臨床樣本
2.2.2 試劑耗材
2.2.3 儀器設(shè)備
2.2.4 實(shí)驗(yàn)方法
2.2.4.1 滑膜液或唾液細(xì)菌DNA提取方法
2.2.4.2 滑膜組織細(xì)菌DNA提取方法
2.2.4.3 糞便DNA提取方法
2.2.4.4 PCR產(chǎn)物擴(kuò)增
2.2.4.5 ELISA檢測炎性因子的表達(dá)
2.2.4.6 菌群數(shù)據(jù)生物統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2.2.4.7 非靶向代謝組學(xué)
2.2.4.8 非靶向代謝組學(xué)數(shù)據(jù)分析
2.2.4.9 特異菌群目的基因的獲取及PCR反應(yīng)驗(yàn)證
2.2.4.10 瓊脂糖凝膠電泳
2.2.4.11 驗(yàn)證回收PCR產(chǎn)物
2.2.4.12 質(zhì)粒構(gòu)建
2.2.4.13 實(shí)時(shí)熒光定量PCR
2.2.4.14 實(shí)時(shí)熒光定量PCR數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2.3 結(jié)果
2.3.1 微生物組整體測序PCoA分析
2.3.2 整體微生物組的組成結(jié)構(gòu)分布
2.3.3 RA與 OA之間菌群差異分析
2.3.4 基于PICRUSt算法預(yù)測微生物的功能
2.3.5 滑膜液中非靶向代謝組學(xué)整體PCoA分析
2.3.6 滑膜液中代謝產(chǎn)物的整體結(jié)構(gòu)
2.3.7 代謝物的KEGG通路分析
2.3.8 RA腸道菌群、口腔菌群與滑膜液中菌的核酸片段的一致性
2.3.9 PCR定量分析結(jié)果
2.3.9.1 擬桿菌的定量結(jié)果
2.3.9.2 普雷沃氏菌的定量結(jié)果
2.3.9.3 牙齦卟啉單胞菌的定量結(jié)果
2.4 討論
2.5 結(jié)論
第三章 益生菌對(duì)類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎成纖維細(xì)胞的作用機(jī)制
3.1 引言
3.2 材料及方法
3.2.1 樣本采集
3.2.2 主要試劑及耗材
3.2.3 實(shí)驗(yàn)方法
3.2.3.1 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜成纖維細(xì)胞的原代培養(yǎng)
3.2.3.2 類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎滑膜成纖維細(xì)胞的傳代培養(yǎng)
3.2.3.3 原代培養(yǎng)滑膜成纖維細(xì)胞的鑒定
3.2.3.4 滑膜細(xì)胞計(jì)數(shù)
3.2.3.5 益生菌群刺激類風(fēng)濕滑膜成纖維細(xì)胞
3.2.3.6 采用MTS法檢測細(xì)胞增殖能力
3.2.3.7 采用劃痕法檢測細(xì)胞遷移能力
3.2.3.8 采用Transwell法檢測細(xì)胞侵襲能力
3.2.3.9 ELISA酶聯(lián)免疫實(shí)驗(yàn)方法檢測炎性因子水平
3.2.3.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
3.3 結(jié)果
3.3.1 MTS方法檢測益生菌干預(yù)細(xì)胞增殖能力
3.3.2 劃痕法檢測益生菌干預(yù)表對(duì)RA FLS遷移能力的影響
3.3.3 Transwell方法檢測益生菌干預(yù)對(duì)RA FLS侵襲能力的影響
3.3.4 ELISA法檢測炎性因子的表達(dá)
3.4 討論
3.5 結(jié)論
第四章 益生菌群對(duì)膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎的機(jī)制研究
4.1 引言
4.2 材料與方法
4.2.1 材料
4.2.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
4.2.1.2 主要試劑耗材
4.2.1.3 主要儀器
4.2.2 實(shí)驗(yàn)方法
4.2.2.1 構(gòu)建Ⅱ型膠原誘導(dǎo)性DBA1 小鼠關(guān)節(jié)炎模型
4.2.2.2 關(guān)節(jié)炎的評(píng)分
4.2.2.3 病理組織學(xué)分析
4.2.2.4 小鼠CT掃描骨骼的變化
4.2.2.5 小鼠糞便樣本收集
4.2.2.6 糞便DNA提取方法同2.2.4.3
4.2.2.7 PCR產(chǎn)物擴(kuò)增
4.2.2.8 ELISA法檢測小鼠血清中IL-17、IL-6、IL-1α的水平
4.3 結(jié)果
4.3.1 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)小鼠誘導(dǎo)成功
4.3.2 16SrRNA V1-V2 區(qū)測序分析整體微生物組變化
4.3.3 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠腸道菌群β-多樣性差異
4.3.4 通過Veen圖比較各組OTU分布差異
4.3.5 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠腸道菌群的門分類水平差異
4.3.6 膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠的腸道菌群屬分類水平的差異
4.3.7 各組膠原誘導(dǎo)性關(guān)節(jié)炎小鼠腸道菌群差異分析
4.3.8 CT掃描顯示益生菌對(duì)CIA小鼠具有保護(hù)作用
4.3.9 病理組織學(xué)分析益生菌制劑干預(yù)CIA小鼠結(jié)構(gòu)
4.3.10 益生菌制劑可調(diào)節(jié)炎性細(xì)胞因子水平
4.4 討論
4.5 結(jié)論
總結(jié)與展望
參考文獻(xiàn)
致謝
攻讀學(xué)位期間所取得的成果
本文編號(hào):3781197
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