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脊尾白蝦蛻皮和性別調(diào)控相關(guān)基因的鑒定及功能分析

發(fā)布時間:2017-09-07 05:20

  本文關(guān)鍵詞:脊尾白蝦蛻皮和性別調(diào)控相關(guān)基因的鑒定及功能分析


  更多相關(guān)文章: 脊尾白蝦 EH基因 IAG基因 Sox9基因 蛻皮 性別決定


【摘要】:脊尾白蝦(Exopalaemon carinicauda)是我國重要的經(jīng)濟甲殼動物,了解其內(nèi)分泌調(diào)控及性別調(diào)控機制在理論和實踐上具有重要的指導(dǎo)意義。甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控是由多種激素協(xié)同作用,共同調(diào)控其蛻皮、生長、發(fā)育等生理過程。甲殼動物的蛻皮和生長是密切相關(guān)的,甲殼動物只有通過不斷蛻皮才能完成其生長和發(fā)育過程。對甲殼動物性別分化和性別決定機制的研究是實現(xiàn)甲殼動物性別控制的基礎(chǔ),一直是國際同行所關(guān)注的熱點問題。本論文利用脊尾白蝦為研究對象,鑒定了與蛻皮或性別發(fā)育相關(guān)的幾個重要功能基因,并對其功能進行了初步分析,以期為闡明甲殼動物的蛻皮調(diào)控和性別發(fā)育機制提供重要基礎(chǔ)。主要進展簡述如下:甲殼動物的蛻皮是與其生長、變態(tài)和繁殖密切相關(guān)的重要生理過程。前期的研究表明蛻皮過程是由20-羥基蛻皮酮(20E)及其上游的激素、多肽和環(huán)境因子共同調(diào)控的,然而對于20E調(diào)控的下游基因以及其在蛻皮中的功能仍不清楚。蛻殼激素基因(eclosion hormone, EH),又稱為羽化激素,最早是從飛蛾中分離得到的,隨后在其他昆蟲如煙草天蛾(Manduca sexta)、家蠶(Bombyx mori)、果蠅(Drosophila melanogaster)中都有報道。EH是由昆蟲的腹神經(jīng)細胞合成和分泌的一類神經(jīng)肽,在昆蟲蛻皮中起著重要的作用,至于EH在甲殼動物蛻皮中的作用了解得很少。本論文從脊尾白蝦中獲得了與昆蟲的EH編碼基因具有一定相似性的序列(命名為EcEH),其開放閱讀框(ORF)為273bp,可編碼90個氨基酸;氨基酸序列包括一段疏水的信號肽,6個保守的半胱氨酸殘基,具有保守的eclosion結(jié)構(gòu)域。組織表達分析結(jié)果表明,EcEH轉(zhuǎn)錄本主要在鰓、表皮及眼柄中表達。EcEH在脊尾白蝦不同的蛻皮時期,其轉(zhuǎn)錄表達發(fā)生明顯的變化,在蛻皮前期(late premolt)表達量最高,而在其它蛻皮時期,其表達量維持在較低水平,提示其可能與蛻皮相關(guān)。利用RNAi干擾技術(shù)和外源20-羥基蛻皮酮(20E)激素注射的方法進一步研究了EH在脊尾白蝦蛻皮中的功能, 結(jié)果表明注射EcEH的雙鏈RNA會導(dǎo)致蛻皮過程明顯延遲,注射外源的20E可以明顯加快蛻皮進程。以上研究結(jié)果說明EcEH與脊尾白蝦的蛻皮密切相關(guān)。胰島素樣促雄性腺激素(Insulin-like androgenic gland hormone, IAG)由甲殼動物雄性個體所獨有的促雄性腺(Angrogenic gland, AG)分泌,在雄性甲殼動物的性別分化、雄性性征維持和精子發(fā)生中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。IAG基因在沼蝦、對蝦、蟹類中均有報道, 但是對其功能的研究相對較少。本論文從脊尾白蝦中克隆了IAG基因(EcIAG),并對其功能進行了分析。EcIAG基因的ORF全長531bp,可編碼176個氨基酸;包括一段疏水的信號肽,6個保守的半胱氨酸殘基,具有保守結(jié)構(gòu)域(insulin-like IPRO16179)。EcIA G主要在雄性個體的促雄性腺(AG)及精巢(Te)中表達。原位雜交分析表明:EcIAG的轉(zhuǎn)錄本主要定位在促雄性腺細胞。對不同胚胎和幼體發(fā)育時期的轉(zhuǎn)錄表達分析結(jié)果表明,EcIAG在原腸期和仔蝦P2期有著較高表達。為了解眼柄內(nèi)分泌中心是否對EcIAG的表達具有調(diào)控作用,我們研究眼柄摘除對其表達的影響。結(jié)果表明:眼柄摘除后EcIAG的轉(zhuǎn)錄表達明顯提高,說明眼柄中存在調(diào)控IAG表達的激素。原位雜交的相關(guān)研究為理解甲殼動物的性別分化調(diào)控通路提供了一定基礎(chǔ)。Sox9(SRY-box9)基因是一類與動物性別決定基因SRY具有高度序列相似性的轉(zhuǎn)錄因子;赟ox9在哺乳動物等物種中參與性別調(diào)控過程,本研究嘗試探討EcSox9在促雄性腺中的表達分布情況及其與EcIAG之間的調(diào)控關(guān)系。本研究從脊尾白蝦中克隆獲得Sox9基因,其ORF全長672bp,編碼243個氨基酸;推導(dǎo)的氨基酸序列具有保守的HMG BOX結(jié)構(gòu)域。EcSox9轉(zhuǎn)錄本在各組織中廣泛存在,但在鰓及肝胰腺中表達量最高。EcSox9的表達隨著胚胎和幼體發(fā)育時期的推移而呈現(xiàn)表達增加的趨勢。EcSox9在摘除眼柄的脊尾白蝦促雄性腺中表達量增加,表明眼柄中可能存在內(nèi)分泌調(diào)控因子對EcSox9基因的表達具有調(diào)控作用。利用RNAi技術(shù)研究了EcSox9和EcIAG基因之間的關(guān)系,結(jié)果表明:注射EcSox9的雙鏈RNA(dsSox9)時,EcIAG的表達量顯著降低,表明EcSox9可能對EcIAG的表達存在正調(diào)控的關(guān)系;而在注射EcIAG的雙鏈dsIAG時,EcSox9的表達量卻顯著升高,表明EcIAG的表達水平對EcSox9的表達存在反饋調(diào)控作用。相關(guān)研究結(jié)果為闡明Sox9在甲殼動物性別決定中的作用提供了重要資料。
【關(guān)鍵詞】:脊尾白蝦 EH基因 IAG基因 Sox9基因 蛻皮 性別決定
【學(xué)位授予單位】:中國科學(xué)院研究生院(海洋研究所)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2016
【分類號】:Q953
【目錄】:
  • 致謝4-6
  • 摘要6-8
  • Abstract8-15
  • 第一章 緒論15-33
  • 1.1 甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控系統(tǒng)的研究進展和現(xiàn)狀15-20
  • 1.1.1 甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控相關(guān)的內(nèi)分泌器官15-16
  • 1.1.2 甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控的相關(guān)激素16-18
  • 1.1.3 甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控途徑的相關(guān)假說18-20
  • 1.1.4 甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控的環(huán)境影響因子20
  • 1.2 蛻皮過程的研究進展20-27
  • 1.2.1 蛻皮及蛻皮周期的分類20-22
  • 1.2.2 蛻皮過程及內(nèi)分泌調(diào)控關(guān)系22-24
  • 1.2.3 昆蟲的蛻皮調(diào)控機制與甲殼類的蛻皮機制24-26
  • 1.2.4 昆蟲與甲殼動物的內(nèi)分泌學(xué)(蛻皮與生長繁殖)比較26-27
  • 1.3 甲殼動物性別決定及性別分化研究進展27-29
  • 1.3.1 性別決定機制與性別分化的相關(guān)基因27-28
  • 1.3.2 蝦類性別決定及性別分化的研究進展28-29
  • 1.4 甲殼動物內(nèi)分泌調(diào)控及性別決定與性別分化的關(guān)系29-30
  • 1.5 本研究的目標及意義30-31
  • 1.6 本研究的主要內(nèi)容和技術(shù)路線31-33
  • 第二章 脊尾白蝦EH基因的鑒定及功能分析33-57
  • 2.1 材料和方法33-47
  • 2.1.1 實驗動物33
  • 2.1.2 組織取樣33
  • 2.1.3 實驗試劑33-34
  • 2.1.4 實驗儀器34-35
  • 2.1.5 總RNA的提取及cDNA的合成35-36
  • 2.1.6 基因的克隆及序列分析36-38
  • 2.1.7 熒光實時定量PCR(quantitative PCR,qPCR)38-39
  • 2.1.8 原位雜交39-44
  • 2.1.9 dsEH的合成44-45
  • 2.1.10 dsRNA與20E劑量的最優(yōu)化45-46
  • 2.1.11 dsRNA與20E對蛻皮過程的影響46
  • 2.1.12 dsRNA與20E對蛻皮率的影響46-47
  • 2.2 結(jié)果與分析47-54
  • 2.2.1 脊尾白蝦EH基因的鑒定、結(jié)構(gòu)分析及親緣關(guān)系分析47-49
  • 2.2.2 脊尾白蝦EH基因在不同組織的表達特征分析49-50
  • 2.2.3 脊尾白蝦EH基因在不同蛻皮階段的表達特征分析50-51
  • 2.2.4 脊尾白蝦dsEH干擾或20E激素注射對EH基因的表達特征分析51-52
  • 2.2.5 脊尾白蝦dsEH干擾或20E激素注射對蛻皮過程的影響52-53
  • 2.2.6 脊尾白蝦dsEH干擾或20E激素注射對蛻皮率的影響53-54
  • 2.3 討論54-57
  • 第三章 脊尾白蝦IAG基因的鑒定及功能分析57-73
  • 3.1 材料與方法57-63
  • 3.1.1 實驗動物57
  • 3.1.2 組織取樣57
  • 3.1.3 實驗試劑57
  • 3.1.4 實驗儀器57-58
  • 3.1.5 總RNA的提取及cDNA的合成58
  • 3.1.6 基因克隆及序列分析58-59
  • 3.1.7 定量PCR(qPCR檢測)59-60
  • 3.1.8 原位雜交60-61
  • 3.1.9 dsIAG的合成61-62
  • 3.1.10 dsRNA干擾劑量最優(yōu)化62
  • 3.1.11 眼柄切除之后,AG的形態(tài)學(xué)觀察,組織定位及IAG表達變化62-63
  • 3.2 結(jié)果與分析63-70
  • 3.2.1 脊尾白蝦IAG基因的鑒定、結(jié)構(gòu)分析及親緣關(guān)系分析63-66
  • 3.2.2 脊尾白蝦IAG基因在不同組織的表達特征分析66-67
  • 3.2.3 脊尾白蝦IAG基因在早期不同發(fā)育時期中的表達特征分析67-68
  • 3.2.4 脊尾白蝦的眼柄摘除,AG的形態(tài)學(xué)觀察、組織定位及表達特征68-70
  • 3.3 討論70-73
  • 第四章 脊尾白蝦Sox9基因的鑒定及功能分析73-87
  • 4.1 材料與方法73-78
  • 4.1.1 實驗動物73
  • 4.1.2 組織取樣73
  • 4.1.3 實驗試劑73
  • 4.1.4 實驗儀器73
  • 4.1.5 總RNA的提取及cDNA的合成73-74
  • 4.1.6 基因克隆及序列分析74-76
  • 4.1.7 定量PCR(RT-qPCR檢測)76-77
  • 4.1.8 dsSox9的合成77
  • 4.1.9 dsSox9干擾劑量的最優(yōu)化77-78
  • 4.2 結(jié)果與分析78-85
  • 4.2.1 脊尾白蝦Sox9基因的鑒定、結(jié)構(gòu)分析及親緣關(guān)系分析78-81
  • 4.2.2 脊尾白蝦Sox9基因在不同組織的表達特征分析81-82
  • 4.2.3 脊尾白蝦Sox9基因在早期不同發(fā)育時期中的表達特征分析82-83
  • 4.2.4 脊尾白蝦Sox9基因在雄性脊尾白蝦促雄性腺的表達特征分析83-84
  • 4.2.5 脊尾白蝦dsSox9及dsIAG梯度劑量最優(yōu)化及相互調(diào)控關(guān)系84-85
  • 4.3 討論85-87
  • 結(jié)論87-89
  • 參考文獻89-105
  • 個人簡歷105-107
  • 碩士期間發(fā)表論文與研究成果107

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