利用CRISPR/Cas9技術(shù)對果蠅的多個基因位點進行編輯
發(fā)布時間:2020-12-16 09:21
基因的原位編輯修飾一直被認為是生物學實驗中最困難也是最關(guān)鍵的部分,研究者通過對特定基因的原位編輯可以了解更多關(guān)于基因的功能、基因所調(diào)控的信號通路的細節(jié)。本文對于目的基因的原位編輯主要是通過CRISPR/Cas9技術(shù)將光轉(zhuǎn)蛋白基因序列敲入果蠅的多個基因位點中。從細菌中發(fā)現(xiàn)的CRISPR/Cas9系統(tǒng)在許多生物體中被證明是非常高效強大的基因編輯工具。成規(guī)律的成簇的非連續(xù)的短回文重復(fù)序列(Clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)是一類在細菌中發(fā)現(xiàn)的DNA片段,在這些片段中包含了來自于攻擊過這類細菌的病毒的DNA片段。這些片段最初是被細菌用來檢測和摧毀含有與之相似序列的病毒,其和CRISPR相關(guān)蛋白(CRISPR-associated protein,Cas)構(gòu)成了細菌的防御免疫系統(tǒng)。人們通過基因工程改造了Ⅱ型的CRISPR/Cas系統(tǒng)即我們所稱的CRISPR/Cas9系統(tǒng),使得基因的原位編輯效率大大提高。形成素基因是TGF-β信號通路的配體,其調(diào)控生物體發(fā)育,pattern的形成和干細胞的分化。它們的產(chǎn)...
【文章來源】:福州大學福建省 211工程院校
【文章頁數(shù)】:52 頁
【學位級別】:碩士
【部分圖文】:
圖1-1?ZFN基因編輯原理簡圖(引自網(wǎng)絡(luò))??
于免疫記憶中的記憶T細胞,當含有同樣序列的外源DNA再次入侵時,該外源DNA??可以被細菌的CR1SPR免疫機制識別,并進行剪切使得外源DNA表達沉默,進而達??到保護細菌自身安全的目的(圖1-4)。在這里行使DNA剪切功能的是CRISPR相??關(guān)蛋白9,在Cas9上有2個酶切活性位點可以切割DNA,其靶向介質(zhì)是RNA,我們將??其稱為向?qū)В遥危?(gRNA)。??除了主角Cas9外,還有一些其他的Cas蛋白,也會促進CRISPR/Cas9系統(tǒng)的編??輯能力。例如:幫助獲得新的重復(fù)序列的Casl和Cas2蛋白;具有解旋酶和核酸酶??功能的Cas3蛋白。當然也有一些Cas蛋白的功能目前尚且不太清楚。???A?CRISPR?Locus???Spacers??/?1?\??'f?\?"\{???#??"???、??V?k?J?g??CAS?Genes?Leader?\?\?/?/??Repeats??A?CRISPR?Array??圖卜4?CRISPR的序列結(jié)構(gòu)簡圖(引自網(wǎng)絡(luò))Leader:位于CRISPR簇上游,富含AT序列,長度約??300-500bp,可能是啟動子.Repeat:為重復(fù)序列區(qū),其長度約為21?48bp,并且其中含有回文序列,可以??形成發(fā)夾結(jié)構(gòu).Spacer:即重復(fù)序列中的間隔區(qū)域,其長度約為26?72bp,由被俘獲的外源DNA組成.CAS??Genes:編碼CRISPR相關(guān)Cas蛋白基因.??1.3.?3?CRISPR/Cas9系統(tǒng)的基因原位編輯機制原理??前文我們提到過目前人們發(fā)現(xiàn)了三種不同類型的CRISPR系統(tǒng),其中由于II??型CRISPR系統(tǒng)比較簡單
比例選取果蠅提基因組并進行第一輪分子鑒定。本課題的果蠅第一輪分子鑒定的??陽性標簽是KI片段中dendra蛋白核酸序列中的一部分(引物設(shè)計位點見圖??3-1,3-6,?3-9)。??(3)若第一輪分子鑒定出現(xiàn)陽性管,則從每個陽性管中分別再挑選10只F1R??雄蠅,再次與雙平衡子品系一對一雜交,待其有后代后,對父母本中的雄蠅(原??F1代雄蠅)進行第二輪分子鑒定。第二輪分子鑒定引物設(shè)計位點為原同源臂5’??端上游30(^口處和同源臂3’端下游30(^口處(圖3-1,3-5,3-8)。為降低?〇???難度,可將第二輪分子鑒定引物與第一輪分子鑒定引物結(jié)合使用。以Dpp為例(圖??3-1),第二輪分子鑒定的目的片段:5’端flank?(使用5’DppFP,dendraRP這對??弓丨物)3’端flank(使用dendraFP,?3’?DppRP這對引物)。??(4)若第二輪分子鑒定出現(xiàn)陽性管,將陽性管的PCR產(chǎn)物5’端Hank和3’端??flank送測序,確認其不是脫靶的KI陽性品系,并確認其沒有發(fā)生移碼或錯義??突變。??(5)完成鑒定后,從第二輪分子鑒定陽性管中挑選類似KI/平衡子的基因型保??種,并將含有相同平衡子的KI/平衡子果蠅進行一對一雜交,構(gòu)建純合的KI??果繩品系。??
【參考文獻】:
期刊論文
[1]TALENs:植物基因組定點剪輯的分子剪[J]. 趙開軍,楊兵. 中國農(nóng)業(yè)科學. 2012(14)
[2]鋅指蛋白核酸酶的作用原理及其應(yīng)用[J]. 鐘強,趙書紅. 遺傳. 2011(02)
本文編號:2919924
【文章來源】:福州大學福建省 211工程院校
【文章頁數(shù)】:52 頁
【學位級別】:碩士
【部分圖文】:
圖1-1?ZFN基因編輯原理簡圖(引自網(wǎng)絡(luò))??
于免疫記憶中的記憶T細胞,當含有同樣序列的外源DNA再次入侵時,該外源DNA??可以被細菌的CR1SPR免疫機制識別,并進行剪切使得外源DNA表達沉默,進而達??到保護細菌自身安全的目的(圖1-4)。在這里行使DNA剪切功能的是CRISPR相??關(guān)蛋白9,在Cas9上有2個酶切活性位點可以切割DNA,其靶向介質(zhì)是RNA,我們將??其稱為向?qū)В遥危?(gRNA)。??除了主角Cas9外,還有一些其他的Cas蛋白,也會促進CRISPR/Cas9系統(tǒng)的編??輯能力。例如:幫助獲得新的重復(fù)序列的Casl和Cas2蛋白;具有解旋酶和核酸酶??功能的Cas3蛋白。當然也有一些Cas蛋白的功能目前尚且不太清楚。???A?CRISPR?Locus???Spacers??/?1?\??'f?\?"\{???#??"???、??V?k?J?g??CAS?Genes?Leader?\?\?/?/??Repeats??A?CRISPR?Array??圖卜4?CRISPR的序列結(jié)構(gòu)簡圖(引自網(wǎng)絡(luò))Leader:位于CRISPR簇上游,富含AT序列,長度約??300-500bp,可能是啟動子.Repeat:為重復(fù)序列區(qū),其長度約為21?48bp,并且其中含有回文序列,可以??形成發(fā)夾結(jié)構(gòu).Spacer:即重復(fù)序列中的間隔區(qū)域,其長度約為26?72bp,由被俘獲的外源DNA組成.CAS??Genes:編碼CRISPR相關(guān)Cas蛋白基因.??1.3.?3?CRISPR/Cas9系統(tǒng)的基因原位編輯機制原理??前文我們提到過目前人們發(fā)現(xiàn)了三種不同類型的CRISPR系統(tǒng),其中由于II??型CRISPR系統(tǒng)比較簡單
比例選取果蠅提基因組并進行第一輪分子鑒定。本課題的果蠅第一輪分子鑒定的??陽性標簽是KI片段中dendra蛋白核酸序列中的一部分(引物設(shè)計位點見圖??3-1,3-6,?3-9)。??(3)若第一輪分子鑒定出現(xiàn)陽性管,則從每個陽性管中分別再挑選10只F1R??雄蠅,再次與雙平衡子品系一對一雜交,待其有后代后,對父母本中的雄蠅(原??F1代雄蠅)進行第二輪分子鑒定。第二輪分子鑒定引物設(shè)計位點為原同源臂5’??端上游30(^口處和同源臂3’端下游30(^口處(圖3-1,3-5,3-8)。為降低?〇???難度,可將第二輪分子鑒定引物與第一輪分子鑒定引物結(jié)合使用。以Dpp為例(圖??3-1),第二輪分子鑒定的目的片段:5’端flank?(使用5’DppFP,dendraRP這對??弓丨物)3’端flank(使用dendraFP,?3’?DppRP這對引物)。??(4)若第二輪分子鑒定出現(xiàn)陽性管,將陽性管的PCR產(chǎn)物5’端Hank和3’端??flank送測序,確認其不是脫靶的KI陽性品系,并確認其沒有發(fā)生移碼或錯義??突變。??(5)完成鑒定后,從第二輪分子鑒定陽性管中挑選類似KI/平衡子的基因型保??種,并將含有相同平衡子的KI/平衡子果蠅進行一對一雜交,構(gòu)建純合的KI??果繩品系。??
【參考文獻】:
期刊論文
[1]TALENs:植物基因組定點剪輯的分子剪[J]. 趙開軍,楊兵. 中國農(nóng)業(yè)科學. 2012(14)
[2]鋅指蛋白核酸酶的作用原理及其應(yīng)用[J]. 鐘強,趙書紅. 遺傳. 2011(02)
本文編號:2919924
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