番茄成花基因SFT上游調(diào)控因子SPL13和COL1的功能解析
【學(xué)位單位】:華中農(nóng)業(yè)大學(xué)
【學(xué)位級別】:博士
【學(xué)位年份】:2018
【中圖分類】:S641.2
【部分圖文】:
圖 2-1 SPL13-RNAi和35S-miR156a轉(zhuǎn)基因植株表型相似(A)定植 10 周后來自有代表性轉(zhuǎn)基因番茄(左、中)和 WT(右)植株的第二個(gè)花序。(B)代表性轉(zhuǎn)基因(左、中)和 WT(右)番茄植株的單株總產(chǎn)量。所有轉(zhuǎn)基因株系均為 AilsaCraig 背景。(C-E) 花、果實(shí)的積累以及每株花序在三個(gè)發(fā)育階段的營養(yǎng)枝的百分比。(F)轉(zhuǎn)基因和 WT 番茄植株果實(shí)的縱橫徑的統(tǒng)計(jì)比較。(G,H)轉(zhuǎn)基因和 WT 番茄植株在種植后 8 周第一花序下的節(jié)間數(shù)。(I,J)來自轉(zhuǎn)基因或 WT 番茄植株的總果實(shí)產(chǎn)量和平均果實(shí)重量的值,選擇三個(gè)轉(zhuǎn)基因系的有代表性的四棵植株和四棵有代表性的 WT 植株中進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,利用 t 檢驗(yàn)對每組數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析。統(tǒng)計(jì)學(xué)上的差異分為兩組:*P < 0.05,**P < 0.01。Figure 2-1 Transgenic SPL13-RNAi and 35S-miR156a tomato plants are phenotypically similar.(A) Second inflorescence from representative transgenic (left and middle) and WT (right) tomato plants at 10 weeks afterplanting. (B) Total fruit yield per plant for representative transgenic (left and middle) and WT (right) tomato plants. Alltransgenic lines arein the Ailsa Craig background. (C-E) Accumulation of flowers, fruits and the percentage ofvegetativebranches per inflorescences per plant at three developmental stages. (F) Statistical comparison of the vertical andhorizontaldiametersofthefruits fromthe transgenicandWTtomato plants. (G, H) Lateral branchingnumber and numberof nodes under the first inflorescence in the transgenic and WT tomato plants at seven or eight weeks after planting. (I, J)Mean values for the total fruit yield and f
圖 2-2 SPL13 CRISPR/Cas9轉(zhuǎn)基因株系的側(cè)枝及花序營養(yǎng)枝較野生型增加A)SPL13中設(shè)計(jì)的兩個(gè)sgRNA目標(biāo)位點(diǎn)(紅色箭頭)的示意圖。黑色箭頭表示用于PCR分析基因分型的引位置。(B)PCR擴(kuò)增三個(gè)CR-spl13轉(zhuǎn)基因T0代株系等位基因突變。Cas9基因的擴(kuò)增顯示轉(zhuǎn)基因植株為陽性C)通過DNA測序分析驗(yàn)證T0代CR-spl13等位基因的突變,在三個(gè)轉(zhuǎn)基因株系中發(fā)現(xiàn),跨越兩個(gè)sgRNA靶位置都存在一個(gè)長片段的缺失,紅色字體表示sgRNA目標(biāo)序列,黑色方框表示PAM序列。(D,E)SPLRISPR/Cas9 T0代轉(zhuǎn)基因株系的側(cè)枝和花序營養(yǎng)枝增多的表型,紅色箭頭表示葉腋產(chǎn)生的側(cè)枝(D圖),花序營養(yǎng)枝(E圖),以WT(AC)作為對照。Figure 2-2 Increased vegetative branches from inflorescences and lateral branches in the SPL1CRISPR/Cas9 transgenic lines.A) Schematic illustration of the two sgRNA target sites (red arrows) designed in SPL13. Black arrows represent ocation of the primers that were used for PCR-based genotyping. (B) PCR-based analysis of three T0-generation Cpl13 mutant alleles with different amplicon lengths. Amplification of the Cas9 transgene is shown as a positive contC) Verification of the T0-generation CR-spl13 mutant alleles by DNA sequencing analysis. We found a long sequeeletion that spanned the two sgRNA target sites in all three lines. The red font indicates sgRNA target sequences. Tlack boxes indicate protospacer-adjacent motif (PAM) sequences. (D, E) Lateral branch and inflorescence vegetatranch phenotypes in the SPL13 CRISPR/Cas9 T0-generation lines. Red arrows indicate lateral branches
27圖 2-3 spl13突變體中側(cè)枝與果實(shí)數(shù)目觀察統(tǒng)計(jì)-spl13番茄植株中葉腋(由紅色箭頭表示)產(chǎn)生的側(cè)枝。(B)基于PCR擴(kuò)增的三個(gè)CR-spl13等位CR-spl13和WT番茄植株的側(cè)枝。(E,F(xiàn))CR-spl13和WT番茄植株側(cè)枝和果實(shí)數(shù)目的統(tǒng)計(jì)分組數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析。統(tǒng)計(jì)學(xué)上的差異分為兩組:*P < 0.05,**P < 0.01。e 2-3 Lateral branching and fruit number in the CR-spl13 lines without the PTXateral branching in the leaf axils (indicatedbyred arrows)in the CR-spl13 tomato plants. (B) PCR-baR-spl13 mutant alleles with different amplicon lengths. (C, D) Lateral branching in CR-spl13 and , F) Mean values for the lateral branching and total fruit number of the CR-spl13 and WT tomllysignificant differences between the mean values were evaluated using t-tests and are represented b, **P < 0.01.
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10 ;全基因表達(dá)分析標(biāo)準(zhǔn)方法存在重大缺陷[J];中華肺部疾病雜志(電子版);2012年06期
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