外泌體miR-204-5p抑制結(jié)直腸癌細(xì)胞增殖的實(shí)驗(yàn)研究
【學(xué)位授予單位】:江南大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2018
【分類號(hào)】:R735.3
【圖文】:
江南大學(xué)碩士學(xué)位論文腔內(nèi)堆積。存在于早期內(nèi)涵體中的分子可以被回收整合到質(zhì)膜上S 中[29]。內(nèi)容物分揀到 ILVS 的機(jī)制是由依賴于內(nèi)涵體分選轉(zhuǎn)運(yùn)dosomal sorting complexes required for transport dependent,ESCR早期內(nèi)涵體向內(nèi)出芽的方式堆積在晚期內(nèi)涵體,從而將內(nèi)涵體轉(zhuǎn)esicular bodies,MVBs)[33]。隨后這些 MVBs 與溶酶體融合后被釋放其內(nèi)部囊泡,如外泌體。重要的是,MVBs 的轉(zhuǎn)運(yùn)和與細(xì)胞ab 鳥(niǎo)苷三磷酸酶(GTPase)蛋白調(diào)控,并與細(xì)胞骨架和分子運(yùn)動(dòng)
圖 1-2 外泌體的生物合成與內(nèi)化機(jī)制,以及它在生理病理狀態(tài)發(fā)揮的作用ig. 1-2 Exosomal biogenesis and internalization mechanisms and their roles in physiological pathological processes.(2)分離與鑒定外泌體的分離純化主要基于免疫親和捕獲、聚合物沉淀、超速離心和微流控技技術(shù)原理并不是相互排斥的,它們的組合使用或許更有助于高效分離純化外這些分離方法,國(guó)際細(xì)胞外囊泡學(xué)會(huì)提出的標(biāo)準(zhǔn)化程序可以提供詳細(xì)的指導(dǎo)[止,其中采用最為廣泛和最可靠的方法是超速離心,它包括一系列的離心步種方法繁瑣耗時(shí),需要大量的生物樣品量。因此,商用聚合物沉淀試劑盒用于外泌體的分離[41]。這些方法采用 ExoQuick 和 TotalExosome 等分離試劑,耗時(shí)短,但產(chǎn)品純度低于超速離心法。目前仍舊無(wú)法完全分離或消除尺寸接近的不同類型 EVs,這表明外泌體的提一些小的 EVs 或其他成分,而非“純”的外泌體。免疫親和分離法可能會(huì)富的外泌體群體[42],但這種方法的產(chǎn)量無(wú)法得到保證。最近,Heller 等人用交[43]。該裝置只需 30~50
第一章 緒論靶細(xì)胞,從而對(duì)其靶點(diǎn) mRNA 的功能進(jìn)行調(diào)節(jié)。然而,由于缺乏對(duì) EV 介導(dǎo)的 miRNA轉(zhuǎn)移功能的直接論證,因此該假設(shè)中包含不確定性。這一假說(shuō)的核心是原始轉(zhuǎn)錄本加工成能在受體細(xì)胞中直接發(fā)揮作用的活性 miRNAs 的過(guò)程只發(fā)生在哺乳動(dòng)物細(xì)胞內(nèi)。然而,這一觀點(diǎn)正面臨一些挑戰(zhàn)。已有研究發(fā)現(xiàn),miRNA 加工的關(guān)鍵成分 Dicer 和 Ago 2在外泌體中存在并可發(fā)揮功能[58]。雖然尚未證實(shí),但這些發(fā)現(xiàn)表明,外泌體不僅是miRNA 被動(dòng)的載體,也可能是它的加工工廠。
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6 朱s
本文編號(hào):2750510
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