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L.plantum和E.coli細(xì)胞壁肽聚糖緩釋微球?qū)π∈竽c道菌群及機(jī)體免疫調(diào)節(jié)作用的研究

發(fā)布時(shí)間:2017-04-11 03:24

  本文關(guān)鍵詞:L.plantum和E.coli細(xì)胞壁肽聚糖緩釋微球?qū)π∈竽c道菌群及機(jī)體免疫調(diào)節(jié)作用的研究,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:肽聚糖的生物活性越來(lái)越受到人們的關(guān)注,本課題的目的是通過比較革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌(植物乳桿菌為代表)和革蘭氏陰性細(xì)菌(大腸桿菌為代表)細(xì)胞壁肽聚糖對(duì)腸道菌群組成和機(jī)體免疫調(diào)節(jié)活性的影響,為肽聚糖作為潛在疫苗的開發(fā)提供前期的數(shù)據(jù)支持。本實(shí)驗(yàn)通過三氯乙酸法分離了大腸桿菌細(xì)胞壁肽聚糖,得到大腸桿菌肽聚糖的提取率為(11.2±1.35%)。并以殼聚糖作為壁材,通過化學(xué)交聯(lián)法制備了大腸桿菌肽聚糖(EPG)微球,通過掃描電鏡觀察證明EPG微球成球性良好,該微球載藥量為(43.51±4.66)g/100g,包封率為(91.20±1.82)%。肽聚糖微球?qū)π∈竽c道菌群及免疫功能的調(diào)節(jié)作用。研究數(shù)據(jù)顯示:肽聚糖微球組小鼠腸道中的有益菌乳酸桿菌、雙歧桿菌顯著高于生理鹽水組(P0.01),條件致病菌腸桿菌、腸球菌顯著低于生理鹽水組(P0.01),血清中溶菌酶含量、IgG含量、IL-2含量、腸粘膜中SIgA的含量、肝臟指數(shù)、脾臟指數(shù)均顯著高于生理鹽水組(P0.01)。肽聚糖微球?qū)Υ竽c桿菌感染小鼠模型的保護(hù)作用。結(jié)果顯示,肽聚糖微球組小鼠腸道菌群中有益菌的數(shù)量顯著高于生理鹽水組(P0.01),條件致病菌數(shù)量顯著低于生理鹽水組(P0.01),血清中IgG含量、IL-10含量、腸粘膜中的SIgA的含量顯著高于生理鹽水組(P0.05)。IL-6的含量顯著低于生理鹽水組(P0.01)。本研究結(jié)果表明,大腸桿菌肽聚糖微球成球性良好、性能穩(wěn)定,兩種肽聚糖微球具有良好的調(diào)節(jié)腸道菌群及機(jī)體免疫功能的能力。可以有效增強(qiáng)機(jī)體免疫能力,對(duì)大腸桿菌感染小鼠引起的小鼠腸道菌群失調(diào)、腸道免疫功能紊亂具有有效的且持久的預(yù)防保護(hù)效果,兩種肽聚糖在保護(hù)效果上無(wú)顯著性差異,初步顯示肽聚糖在保護(hù)效果上具有非特異性,為肽聚糖作為疫苗的進(jìn)一步開發(fā)奠定基礎(chǔ)。
【關(guān)鍵詞】:肽聚糖復(fù)合微球 腸道菌群 免疫調(diào)節(jié)
【學(xué)位授予單位】:黑龍江大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2015
【分類號(hào)】:R965
【目錄】:
  • 中文摘要3-4
  • Abstract4-10
  • 第1章 前言10-22
  • 1.1 腸道菌群與健康的關(guān)系10-11
  • 1.1.1 腸道菌群概述10
  • 1.1.2 腸道菌群與宿主健康10-11
  • 1.2 腸道菌群失調(diào)的常見控制措施11-15
  • 1.2.1 抗生素治療11-12
  • 1.2.2 益生菌治療12-13
  • 1.2.3 益生元治療13-14
  • 1.2.4 多糖對(duì)腸道菌群的影響14-15
  • 1.3 細(xì)菌肽聚糖的研究及應(yīng)用15-19
  • 1.3.1 細(xì)菌肽聚糖概述15-16
  • 1.3.2 細(xì)菌肽聚糖的免疫效果研究進(jìn)展16-17
  • 1.3.3 細(xì)菌肽聚糖應(yīng)用研究進(jìn)展17-18
  • 1.3.4 肽聚糖作為腸道菌群和機(jī)體免疫調(diào)節(jié)劑的可行性分析18-19
  • 1.4 本實(shí)驗(yàn)室的前期研究工作基礎(chǔ)19
  • 1.5 本課題研究的立體依據(jù),研究?jī)?nèi)容及目的意義19-22
  • 1.5.1 立體依據(jù)及目的意義19-20
  • 1.5.2 研究?jī)?nèi)容概述20-22
  • 第2章 大腸桿菌細(xì)胞壁肽聚糖分離及微球的研制22-34
  • 2.1 實(shí)驗(yàn)材料22-25
  • 2.1.1 菌種22
  • 2.1.2 培養(yǎng)基22-23
  • 2.1.3 實(shí)驗(yàn)試劑23-24
  • 2.1.4 實(shí)驗(yàn)儀器24-25
  • 2.2 大腸桿菌細(xì)胞壁肽聚糖分離25-26
  • 2.2.1 菌種的活化25
  • 2.2.2 三氯乙酸法提取肽聚糖25
  • 2.2.3 溶菌酶試驗(yàn)25-26
  • 2.3 大腸桿菌細(xì)胞壁肽聚糖緩釋微球制備26
  • 2.4 大腸桿菌細(xì)胞壁肽聚糖緩釋微球結(jié)構(gòu)表征及性能檢測(cè)26-27
  • 2.4.1 EPG微球掃描電鏡觀察26
  • 2.4.2 紅外光譜分析26-27
  • 2.4.3 熱重分析27
  • 2.4.4 肽聚糖-殼聚糖緩釋微球載藥量和包封率檢測(cè)27
  • 2.5 結(jié)果與討論27-32
  • 2.5.1 溶解酶實(shí)驗(yàn)結(jié)果27-28
  • 2.5.2 掃描電鏡觀察EPG微球,CS微球形態(tài)28-29
  • 2.5.3 傅立葉紅外光譜分析(FTIR)29-31
  • 2.5.4 熱重分析31-32
  • 2.5.5 載藥量和包封率32
  • 2.6 本章小結(jié)32-34
  • 第3章 EPG微球,LPG微球?qū)π∈竽c道菌群和機(jī)體免疫的調(diào)節(jié)作用34-58
  • 3.1 實(shí)驗(yàn)材料34-35
  • 3.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物34
  • 3.1.2 實(shí)驗(yàn)材料及試劑34-35
  • 3.2 實(shí)驗(yàn)方法35-39
  • 3.2.1 動(dòng)物分組和劑量設(shè)置35-36
  • 3.2.2 腸道菌群檢測(cè)36
  • 3.2.3 血清中溶菌酶含量檢測(cè)36-37
  • 3.2.4 血清中Ig G,IL-2 含量檢測(cè)37-38
  • 3.2.5 腸粘膜中SIg A含量檢測(cè)38
  • 3.2.6 免疫器官指數(shù)的測(cè)定38-39
  • 3.2.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析39
  • 3.3 結(jié)果分析39-53
  • 3.3.1 小鼠表觀特征觀察39
  • 3.3.2 各組小鼠腸道菌群變化39-45
  • 3.3.3 各組小鼠血清中溶解酶含量變化45-46
  • 3.3.4 各組小鼠免疫器官指數(shù)的變化46-50
  • 3.3.5 各組小鼠Ig G,IL-2,SIg A含量的變化50-53
  • 3.4 討論53-58
  • 3.4.1 小鼠免疫器官測(cè)定53-54
  • 3.4.2 各項(xiàng)檢測(cè)指標(biāo)的分析54-58
  • 第4章 肽聚糖緩釋微球?qū)Υ竽c桿菌感染小鼠的保護(hù)效果的研究58-75
  • 4.1 實(shí)驗(yàn)材料58
  • 4.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物58
  • 4.1.2 實(shí)驗(yàn)材料及試劑58
  • 4.1.3 實(shí)驗(yàn)儀器和設(shè)備58
  • 4.2 試驗(yàn)方法58-59
  • 4.2.1 大腸桿菌致小鼠腸道菌群失調(diào)模型建立58-59
  • 4.2.2 緩釋微球?qū)δc道菌群失調(diào)小鼠保護(hù)效果評(píng)價(jià)59
  • 4.3 實(shí)驗(yàn)結(jié)果討論59-71
  • 4.3.1 小鼠表觀特征觀察59
  • 4.3.2 大腸桿菌感染后各組腸道菌群的含量的測(cè)定59-65
  • 4.3.3 大腸桿菌感染后不同時(shí)間 Ig G、IL-6、IL-10 含量的測(cè)定65-69
  • 4.3.4 大腸桿菌感染后不同時(shí)間腸粘膜SIg A的測(cè)定69-70
  • 4.3.5 各組小鼠小腸病理學(xué)變化70-71
  • 4.4 討論71-75
  • 4.4.1 大腸桿菌感染后小鼠腸道菌群數(shù)量變化分析71-72
  • 4.4.2 大腸桿菌感染后不同時(shí)間Ig G,IL-6,,IL-10含量變化分析72-75
  • 第5章 結(jié)論75-76
  • 第6章 本論文的主要?jiǎng)?chuàng)新點(diǎn)及展望76-77
  • 6.1 創(chuàng)新點(diǎn)76
  • 6.2 展望76-77
  • 參考文獻(xiàn)77-85
  • 致謝85-86
  • 攻讀碩士期間發(fā)表的論文86-87

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本文編號(hào):298217

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