本文關(guān)鍵詞：章魚內(nèi)臟中有效成分的綜合利用及活性研究，，由筆耕文化傳播整理發(fā)布。

【摘要】：本文以章魚內(nèi)臟為主要的研究對象,研究了�；撬峒爸舅岬木C合提取工藝。并在得到高純度天然�；撬岬幕A(chǔ)上,探討了天然�；撬崤c合成牛磺酸對小鼠腸道菌群的作用,以期為�；撬岬耐茝V應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。主要研究結(jié)果包括:1)采用分光光度法測定章魚內(nèi)臟中�；撬岷�,對影響檢測結(jié)果的顯色劑用量、顯色時(shí)間和顯色溫度三個(gè)因素進(jìn)行優(yōu)化,得出最佳檢測條件為:顯色劑用量1.5 mL,顯色溫度100℃,顯色時(shí)間15 min。以�；撬崽崛÷蕿橹笜�(biāo),研究了水提法提取�；撬嶂辛弦罕取⑻崛r(shí)間、提取溫度和提取pH四個(gè)因素對提取效率的影響。在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,通過響應(yīng)面試驗(yàn)確定了最佳的提取工藝條件:料液比1:8,提取溫度72℃,提取時(shí)間2.8h,提取pH5.3,在最優(yōu)工藝條件下得到�；撬岬奶崛÷蕿�2.37mg/g。2)以脂肪酸提取率為指標(biāo),研究了五種常用提取試劑對脂肪酸提取效果的影響,確定了乙酸乙酯為最佳提取劑,并探討了料液比、提取溫度、提取時(shí)間對章魚內(nèi)臟中脂肪酸提取效果的影響。先通過單因素試驗(yàn),再通過響應(yīng)面分析法進(jìn)行優(yōu)化,得出最佳提取工藝條件為:料液比1:7、提取溫度54℃、提取時(shí)間2 h,該條件下所得脂肪酸的提取率為45.33%。然后通過氣相色譜法分析了脂肪酸的組分,結(jié)果得出不飽和脂肪酸的含量占脂肪酸總含量的63.54%,其中含量最大的兩種不飽和脂肪酸是EPA和DHA,含量之和為40.48%。3)以高純度天然�；撬岷秃铣膳；撬釣椴牧�,以口服方式給藥BALB/C小鼠,以生理鹽水為對照,收集�；撬峤M和對照組小鼠糞便,采用宏基因組技術(shù)分析糞便樣品中優(yōu)勢菌群的結(jié)構(gòu)變化,探討牛磺酸對腸道微生態(tài)的影響。結(jié)果表明,兩種牛磺酸的攝入均可改變BALB/C小鼠腸道菌群結(jié)構(gòu),具體表現(xiàn)在兩種�；撬峥梢鹦∈蠹S便中螺旋桿菌數(shù)量減少,且天然�；撬峤档吐菪龡U菌豐度的幅度大于合成牛磺酸。并通過對各種生化指標(biāo)的測定,發(fā)現(xiàn)天然�；撬釋τ诙替溨舅岬纳删哂写龠M(jìn)作用,且可以降低機(jī)體的內(nèi)毒素,而合成�；撬嵩谶@方面的作用不明顯;此外天然牛磺酸和合成�；撬峋哂刑岣咝∈篌w內(nèi)SOD活力的作用。
【關(guān)鍵詞】：�；撬� 脂肪酸 提取 腸道菌群 宏基因組
【學(xué)位授予單位】：浙江工業(yè)大學(xué)
【學(xué)位級別】：碩士
【學(xué)位授予年份】：2015
【分類號(hào)】：R914
【目錄】：

• 摘要4-6
• ABSTRACT6-12
• 第一章 緒論12-24
• 1.1 章魚簡介12
• 1.2 章魚內(nèi)臟利用現(xiàn)狀12-13
• 1.3 牛磺酸的研究概況13-17
• 1.3.1 �；撬岬暮喗�13
• 1.3.2 牛磺酸的生理功能13-14
• 1.3.3 �；撬嵩趪鴥�(nèi)外的應(yīng)用14-15
• 1.3.4 牛磺酸提取技術(shù)的研究進(jìn)展15-16
• 1.3.4.1 水提法15
• 1.3.4.2 乙醇提取法15-16
• 1.3.4.3 酶解法16
• 1.3.5 �；撬岬臋z測技術(shù)的研究進(jìn)展16-17
• 1.4 脂肪酸的研究概況17-19
• 1.4.1 脂肪酸的功能與作用17-18
• 1.4.2 脂肪酸提取技術(shù)的研究進(jìn)展18-19
• 1.5 腸道微生態(tài)與健康研究概況19-22
• 1.5.1 腸道菌群及腸道微生態(tài)平衡20
• 1.5.2 腸道菌群與疾病20-22
• 1.5.2.1 腸道菌群與營養(yǎng)不良20-21
• 1.5.2.2 腸道菌群與心腦血管疾病21
• 1.5.2.3 腸道菌群與糖尿病21
• 1.5.2.4 腸道菌群與肥胖21-22
• 1.5.2.5 腸道菌群與炎癥性腸病22
• 1.6 立題目的與意義及研究內(nèi)容22-24
• 1.6.1 立題目的與意義22-23
• 1.6.2 研究內(nèi)容23-24
• 第二章 章魚內(nèi)臟中�；撬岬奶崛》蛛x與工藝優(yōu)化24-41
• 2.1 引言24
• 2.2 實(shí)驗(yàn)材料與儀器24-25
• 2.2.1 實(shí)驗(yàn)材料24
• 2.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器24-25
• 2.3 實(shí)驗(yàn)方法25-29
• 2.3.1 �；撬崽崛》蛛x的工藝流程及操作方法25-26
• 2.3.1.1 工藝流程25
• 2.3.1.2 牛磺酸提取分離的操作步驟25-26
• 2.3.2 �；撬岬臋z測方法26-27
• 2.3.2.1 牛磺酸的定性檢驗(yàn)26
• 2.3.2.2 �；撬岬亩繙y定26-27
• 2.3.3 牛磺酸最佳檢測方法的優(yōu)化27
• 2.3.3.1 測定波長的選擇27
• 2.3.3.2 顯色劑用量的選擇27
• 2.3.3.3 顯色溫度的選擇27
• 2.3.3.4 顯色時(shí)間的選擇27
• 2.3.4 加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)27
• 2.3.5 �；撬崽崛〉膯我蛩卦囼�(yàn)設(shè)計(jì)27-28
• 2.3.5.1 料液比對牛磺酸提取率的影響27-28
• 2.3.5.2 提取時(shí)間對�；撬崽崛÷实挠绊�28
• 2.3.5.3 pH對牛磺酸提取率的影響28
• 2.3.5.4 提取溫度對牛磺酸提取率的影響28
• 2.3.6 �；撬崽崛〉捻憫�(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)28-29
• 2.3.7 牛磺酸最佳提取工藝的驗(yàn)證試驗(yàn)29
• 2.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析29-40
• 2.4.1 牛磺酸薄層色譜分析29
• 2.4.2 牛磺酸含量測定方法的優(yōu)化29-31
• 2.4.2.1 測定波長的選擇29-30
• 2.4.2.2 顯色劑用量的選擇30
• 2.4.2.3 顯色溫度的選擇30-31
• 2.4.2.4 顯色時(shí)間的選擇31
• 2.4.3 牛磺酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制31-32
• 2.4.4 加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)32
• 2.4.5 牛磺酸提取的單因素試驗(yàn)32-34
• 2.4.5.1 料液比對牛磺酸提取率的影響32-33
• 2.4.5.2 提取時(shí)間對牛磺酸提取率的影響33
• 2.4.5.3 p H對牛磺酸提取率的影響33-34
• 2.4.5.4 提取溫度對牛磺酸提取率的影響34
• 2.4.6 �；撬崽崛〉捻憫�(yīng)面試驗(yàn)34-39
• 2.4.6.1 響應(yīng)面分析36-39
• 2.4.7 �；撬嶙罴烟崛l件的驗(yàn)證試驗(yàn)39-40
• 2.5 本章小結(jié)40-41
• 第三章 章魚內(nèi)臟提�；撬釟�?jiān)兄舅岬奶崛」に囇芯?/span>41-51
• 3.1 引言41
• 3.2 實(shí)驗(yàn)材料儀器41-42
• 3.2.1 實(shí)驗(yàn)材料41
• 3.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器41-42
• 3.3 實(shí)驗(yàn)方法42-44
• 3.3.1 脂肪酸的提取方法42
• 3.3.2 脂肪酸提取劑的選擇42
• 3.3.3 脂肪酸提取的單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)42-43
• 3.3.3.1 料液比對脂肪酸提取效果的影響42
• 3.3.3.2 提取溫度對脂肪酸提取效果的影響42
• 3.3.3.3 提取時(shí)間對脂肪酸提取效果的影響42-43
• 3.3.4 脂肪酸提取的響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)43
• 3.3.5 脂肪酸最佳提取工藝的驗(yàn)證試驗(yàn)43
• 3.3.6 脂肪酸成分的分析43-44
• 3.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析44-50
• 3.4.1 不同溶劑對提取效果的影響44
• 3.4.2 脂肪酸提取單因素試驗(yàn)44-45
• 3.4.2.1 料液比對脂肪酸提取效果的影響44
• 3.4.2.2 提取溫度對脂肪酸提取效果的影響44-45
• 3.4.2.3 提取時(shí)間對脂肪酸提取效果的影響45
• 3.4.3 脂肪酸提取的響應(yīng)面試驗(yàn)45-48
• 3.4.3.1 響應(yīng)面分析47-48
• 3.4.4 脂肪酸最佳提取條件的驗(yàn)證試驗(yàn)48-49
• 3.4.5 脂肪酸成分分析49-50
• 3.5 本章小結(jié)50-51
• 第四章 �；撬釋π∈竽c道菌群的影響51-78
• 4.1 引言51-52
• 4.2 實(shí)驗(yàn)材料和儀器52
• 4.2.1 實(shí)驗(yàn)材料52
• 4.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器52
• 4.3 實(shí)驗(yàn)方法52-57
• 4.3.1 小鼠的處理及樣品收集52-53
• 4.3.2 腸道微生物總DNA的提取53-54
• 4.3.3 宏基因組DNA Solexa測序及數(shù)據(jù)預(yù)處理54
• 4.3.4 去除嵌合體及靶區(qū)域外序列54
• 4.3.5 腸道菌群結(jié)構(gòu)成分的生物學(xué)分析54-55
• 4.3.6 小鼠糞便中短鏈脂肪酸的測定55
• 4.3.7 小鼠血清中脂多糖的測定55-56
• 4.3.8 小鼠血清及肝臟中SOD含量的測定56-57
• 4.3.8.1 血清中SOD的測定56
• 4.3.8.2 肝臟中SOD的測定56-57
• 4.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果57-76
• 4.4.1 牛磺酸對小鼠健康的影響57-58
• 4.4.2 測序結(jié)果及數(shù)據(jù)處理58-59
• 4.4.3 �；撬峤M與正常對照組的菌群結(jié)構(gòu)分析59-71
• 4.4.3.1 牛磺酸組與對照組腸道菌群門水平的分布59-61
• 4.4.3.2 �；撬峤M與對照組腸道菌群綱水平的分布61-63
• 4.4.3.3 牛磺酸組與對照組腸道菌群目水平的分布63-66
• 4.4.3.4 �；撬峤M與對照組腸道菌群科水平的分布66-69
• 4.4.3.5 牛磺酸組與對照組腸道菌群屬水平的分布69-70
• 4.4.3.6 �；撬峤M與對照組腸道菌群種水平的分布70-71
• 4.4.4 �；撬峤M與正常對照組的菌群多樣性分析71-72
• 4.4.5 �；撬峤M與正常對照組的菌群Classifier分類圖分析72
• 4.4.6 短鏈脂肪酸的測定結(jié)果72-73
• 4.4.7 脂多糖含量的測定結(jié)果73-74
• 4.4.8 SOD含量的測定結(jié)果74-76
• 4.4.8.1 血清中SOD含量的測定結(jié)果74-75
• 4.4.8.2 肝臟中SOD含量的測定結(jié)果75-76
• 4.5 本章小結(jié)76-78
• 第五章 結(jié)論與展望78-80
• 參考文獻(xiàn)80-88
• 附圖88-89
• 致謝89-90
• 攻讀學(xué)位期間參加的科研項(xiàng)目和成果90

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本文編號(hào)：285768