Wip1/PP2A通路調(diào)控小鼠間充質(zhì)干細(xì)胞成脂肪細(xì)胞分化的實(shí)驗(yàn)研究
發(fā)布時(shí)間:2023-04-23 15:22
目的探究野生型p53誘導(dǎo)磷酸酶1(Wip1)基因調(diào)控小鼠骨實(shí)質(zhì)來(lái)源間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)成脂肪細(xì)胞分化的作用與調(diào)控機(jī)制。方法分離培養(yǎng)Wip1基因敲除小鼠的MSC,觀察細(xì)胞形態(tài),流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞表型和體外誘導(dǎo)分化鑒定MSC。利用油紅O染色和實(shí)時(shí)熒光定量PCR(RT-PCR)比較野生型MSC(WT-MSC)和Wip1敲除MSC(Wip1-/-MSC)成脂分化后的脂滴數(shù)和成脂關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)。Western印跡(WB)檢測(cè)脂肪細(xì)胞分化關(guān)鍵蛋白蛋白質(zhì)磷酸酶2A(PP2A)的表達(dá)。分別收集MSC成脂誘導(dǎo)分化后第0、2、4和5天樣本,RT-PCR檢測(cè)成脂關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子過(guò)氧化物酶體增殖物激活受體(PPARγ)與PP2A的表達(dá)相關(guān)性。構(gòu)建EGFP-Wip1質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至293T細(xì)胞,WB檢測(cè)過(guò)表達(dá)Wip1后細(xì)胞表達(dá)PP2A的差異。采用si RNA-PP2A瞬時(shí)轉(zhuǎn)染MSC,檢測(cè)PP2A敲低后PPARγ在MSC中的表達(dá)。結(jié)果分離培養(yǎng)的細(xì)胞形態(tài)呈成纖維樣,細(xì)胞表型為Sca-1+CD90+CD105+CD29+
【文章頁(yè)數(shù)】:8 頁(yè)
【文章目錄】:
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
1.1.2 細(xì)胞
1.1.3 藥物與試劑
1.2 方法
1.2.1 小鼠骨實(shí)質(zhì)來(lái)源MSC的分離培養(yǎng)
1.2.2 MSC成脂肪誘導(dǎo)及油紅O染料染色
1.2.3 RNA提取與RT-PCR檢測(cè)
1.2.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)MSC細(xì)胞表型
1.2.5 細(xì)胞轉(zhuǎn)染
1.2.6 Western印跡檢測(cè)
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2結(jié)果
2.1 WT-MSC和Wip1-/-MSC分離培養(yǎng)與鑒定
2.2 Wip1-/-MSC向脂肪細(xì)胞分化能力降低
2.3 Wip1參與調(diào)控脂肪細(xì)胞分化關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子PP2A的表達(dá)
2.4 PP2A與PPARγ在MSC成脂分化過(guò)程中的相關(guān)性檢測(cè)
2.5 Wip1通過(guò)PP2A影響PPARγ的表達(dá)
3討論
本文編號(hào):3799972
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1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
1.1.2 細(xì)胞
1.1.3 藥物與試劑
1.2 方法
1.2.1 小鼠骨實(shí)質(zhì)來(lái)源MSC的分離培養(yǎng)
1.2.2 MSC成脂肪誘導(dǎo)及油紅O染料染色
1.2.3 RNA提取與RT-PCR檢測(cè)
1.2.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)MSC細(xì)胞表型
1.2.5 細(xì)胞轉(zhuǎn)染
1.2.6 Western印跡檢測(cè)
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
2結(jié)果
2.1 WT-MSC和Wip1-/-MSC分離培養(yǎng)與鑒定
2.2 Wip1-/-MSC向脂肪細(xì)胞分化能力降低
2.3 Wip1參與調(diào)控脂肪細(xì)胞分化關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子PP2A的表達(dá)
2.4 PP2A與PPARγ在MSC成脂分化過(guò)程中的相關(guān)性檢測(cè)
2.5 Wip1通過(guò)PP2A影響PPARγ的表達(dá)
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