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山羊IFN-γ雜交瘤細(xì)胞的制備與鑒定

發(fā)布時間:2017-05-20 15:02

  本文關(guān)鍵詞:山羊IFN-γ雜交瘤細(xì)胞的制備與鑒定,,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:IFN-γ是反映機(jī)體細(xì)胞免疫功能水平的一個重要細(xì)胞因子,測定該細(xì)胞因子水平常用ELISA檢測試劑盒,IFN-γ單抗則是該試劑盒最為關(guān)鍵的試劑之一。目前尚未見有關(guān)于山羊IFN-γ單克隆抗體的報道,且IFN-γ具有較強(qiáng)的種屬特異性,無法利用其他物種的IFN-γELISA檢測試劑盒評估其水平;谏鲜鲈,本試驗(yàn)利用純化的山羊IFN-γ原核表達(dá)重組蛋白免疫BALB/c小鼠,采集小鼠血清,建立并優(yōu)化山羊IFN-γ抗體的ELISA測定方法;分離免疫小鼠脾細(xì)胞,與SP2/0骨髓瘤細(xì)胞融合,制備并篩選分泌抗山羊IFN-γ單抗的雜交瘤細(xì)胞。研究取得如下結(jié)果:1.包被抗原濃度為10 ug/mL,4℃包被12 h,免疫血清孵育時間為60 min,羊抗小鼠酶標(biāo)抗體的稀釋度為1:5000的條件下,ELISA測定抗山羊IFN-γ抗體能夠獲得最佳結(jié)果。免疫小鼠3次后,小鼠血清效價達(dá)到105;2.SP2/0骨髓瘤細(xì)胞經(jīng)8-AG處理2次,可有效提高融合率,使其達(dá)到60%;3.篩選獲得一株雜交瘤細(xì)胞5D5B8,分泌的單抗能夠識別山羊rIFN-γ而不識別空載體標(biāo)簽融合蛋白,且與山羊IFN-γ陽性血清和Con A刺激的淋巴細(xì)胞培養(yǎng)上清反應(yīng)呈陽性;4.篩選出的雜交瘤細(xì)胞,經(jīng)過連續(xù)傳代和反復(fù)凍存復(fù)蘇后,仍能夠穩(wěn)定分泌IFN-γ單抗,培養(yǎng)上清的OD450值均在1.0左右;5.雜交瘤細(xì)胞培養(yǎng)上清效價為29,小鼠腹水效價為107,純化單克隆抗體效價為106。結(jié)果表明,本研究成功建立了山羊IFN-γ抗體的ELISA測定方法及山羊IFN-γ單抗雜交瘤細(xì)胞的制備方法,并且獲得一株能夠穩(wěn)定分泌識別山羊IFN-γ單抗的雜交瘤細(xì)胞,能夠用于山羊IFN-γ在蛋白質(zhì)水平上的檢測。
【關(guān)鍵詞】:山羊 IFN-γ ELISA 雜交瘤細(xì)胞
【學(xué)位授予單位】:西北農(nóng)林科技大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2016
【分類號】:S827
【目錄】:
  • 摘要6-7
  • abstract7-11
  • 第一章 IFN-γ 研究進(jìn)展11-21
  • 1.1 IFN-γ 的分子生物學(xué)研究進(jìn)展11-15
  • 1.1.1 IFN-γ 的結(jié)構(gòu)11-12
  • 1.1.2 IFN-γ 受體12-14
  • 1.1.3 IFN-γ 的作用機(jī)制14-15
  • 1.2 IFN-γ 的理化性質(zhì)和免疫學(xué)活性15-16
  • 1.2.1 IFN-γ 的理化性質(zhì)15
  • 1.2.2 IFN-γ 的免疫學(xué)活性15-16
  • 1.3 IFN-γ 與疾病16-19
  • 1.3.1 IFN-γ 的抗病毒作用16-17
  • 1.3.2 IFN-γ 與自身免疫病的關(guān)系17-18
  • 1.3.3 IFN-γ 與腫瘤18-19
  • 1.4 IFN-γ 檢測方法研究進(jìn)展19-20
  • 1.5 本研究的目的意義20-21
  • 第二章 山羊IFN-γ 抗體的制備及其ELISA檢測方法的建立21-32
  • 2.1 材料21-24
  • 2.1.1 菌株21
  • 2.1.2 實(shí)驗(yàn)動物21
  • 2.1.3 主要試劑21
  • 2.1.4 主要儀器21-22
  • 2.1.5 主要溶液的配制22-24
  • 2.2 方法24-27
  • 2.2.1 山羊IFN-γ 融合蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)24-25
  • 2.2.2 山羊rIFN-γ 的純化25
  • 2.2.3 小鼠免疫及其抗體的制備25-26
  • 2.2.4 ELISA檢測方法的建立26-27
  • 2.3 結(jié)果27-30
  • 2.3.1 山羊rIFN-γ 的誘導(dǎo)表達(dá)鑒定結(jié)果27
  • 2.3.2 羊抗小鼠IgG酶標(biāo)抗體的優(yōu)選稀釋度27-28
  • 2.3.3 山羊rIFN-γ 的優(yōu)化包被濃度28
  • 2.3.4 山羊rIFN-γ 的優(yōu)化包被時間28-29
  • 2.3.5 免疫血清孵育時間的優(yōu)化結(jié)果29
  • 2.3.6 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果29
  • 2.3.7 抗山羊rIFN-γ 抗體效價測定結(jié)果29-30
  • 2.4 討論30-31
  • 2.5 小結(jié)31-32
  • 第三章 雜交瘤細(xì)胞的制備與鑒定32-42
  • 3.1 材料32-33
  • 3.1.1 實(shí)驗(yàn)動物32
  • 3.1.2 細(xì)胞32
  • 3.1.3 主要試劑32
  • 3.1.4 主要儀器32
  • 3.1.5 主要溶液的配方32-33
  • 3.2 方法33-36
  • 3.2.1 抗原制備和小鼠免疫33-34
  • 3.2.2 細(xì)胞融合34
  • 3.2.3 雜交瘤細(xì)胞陽性克隆篩選34
  • 3.2.4 陽性雜交瘤細(xì)胞克隆化-有限稀釋法34
  • 3.2.5 穩(wěn)定性試驗(yàn)34-35
  • 3.2.6 空載體融合標(biāo)簽蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)35
  • 3.2.7 采集山羊外周血,分離血清及單個核細(xì)胞35
  • 3.2.8 雜交瘤細(xì)胞特異性鑒定35
  • 3.2.9 小鼠腹水的制備及純化35-36
  • 3.2.10單克隆抗體效價的測定36
  • 3.3 結(jié)果36-40
  • 3.3.1 小鼠血清效價的測定結(jié)果36
  • 3.3.2 細(xì)胞融合及陽性雜交瘤細(xì)胞篩選結(jié)果36-37
  • 3.3.3 陽性雜交瘤細(xì)胞克隆化結(jié)果37-38
  • 3.3.4 穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果38
  • 3.3.5 雜交瘤細(xì)胞特異性鑒定結(jié)果38
  • 3.3.6 單克隆抗體純化結(jié)果38-39
  • 3.3.7 單克隆抗體效價的測定結(jié)果39-40
  • 3.4 討論40-41
  • 3.5 小結(jié)41-42
  • 結(jié)論42-43
  • 參考文獻(xiàn)43-50
  • 致謝50-51
  • 作者簡介51

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