利用基因編輯和干細(xì)胞技術(shù)進(jìn)行人胰腺分化及糖尿病預(yù)防和治療研究
發(fā)布時(shí)間:2021-02-28 12:45
糖尿病是一種世界范圍內(nèi)高發(fā)的代謝性疾病,患者體內(nèi)的胰島β細(xì)胞缺失或功能障礙導(dǎo)致胰島素分泌不足,進(jìn)而誘發(fā)慢性高血糖癥。因此,在體外產(chǎn)生大量有功能的胰島β細(xì)胞對(duì)于胰腺發(fā)育學(xué)研究和糖尿病治療至關(guān)重要。近期的研究報(bào)道了很多具有前景的研究方案,其中包括由人多能干細(xì)胞向胰島β細(xì)胞的定向分化法。通過對(duì)定向分化體系的優(yōu)化,我們獲得了大量有功能的胰島β細(xì)胞。這些細(xì)胞高表達(dá)胰島β細(xì)胞的標(biāo)志基因、具有胰島素分泌囊泡的亞顯微結(jié)構(gòu)且可以感應(yīng)葡萄糖濃度的變化來分泌胰島素,并且具有一定的體內(nèi)功能,因而在疾病建模、藥物開發(fā)和細(xì)胞治療等方面有廣闊的應(yīng)用前景。精準(zhǔn)的基因編輯有助于高效地構(gòu)建疾病模型。然而,在人多能干細(xì)胞中進(jìn)行精準(zhǔn)的基因編輯仍然非常耗時(shí)耗力。CRISPR-Cpf1是新開發(fā)的一種基因編輯工具酶,具有很多獨(dú)特的優(yōu)勢,包括具有較短的crRNA和低脫靶率等。因此,在人多能干細(xì)胞中開發(fā)基于CRISPR-Cpf1的精準(zhǔn)基因編輯系統(tǒng)具有十分廣闊的應(yīng)用前景。而化學(xué)小分子具有使用簡便、高效以及非整合等特點(diǎn),可以用于提高基因編輯效率。在這里,我們在人多能干細(xì)胞中構(gòu)建了 CRISPR-Cpf1基因編輯體系,并且開發(fā)了一種無偏好的...
【文章來源】:浙江大學(xué)浙江省 211工程院校 985工程院校 教育部直屬院校
【文章頁數(shù)】:132 頁
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【部分圖文】:
圖1.1真核細(xì)胞中主要的DNA斷裂修復(fù)方式(引自參考文獻(xiàn)W)
浙江繼博士雜齡.?1?g[R??DNA-binding?domain???一?x?(ZF?or?TALE)??F〇k。?zf?umnnun^??…?Fok丨?一?-,)?TALE??圖1.2?ZFN和TALEN的工作模式圖(引自參考文獻(xiàn)叫9??隨后,研究者們依舊不斷致力于尋找新的基因編輯工具。2013年,研究人員??在II型細(xì)菌的適應(yīng)性免疫系統(tǒng)CRISPR中開發(fā)出了?Cas9核酸酶[13、14],從此,基??因編輯工具得到了廣泛的應(yīng)用。CRISPR基因編輯系統(tǒng)的開發(fā)和使用是基因編輯??領(lǐng)域中里程碑式的進(jìn)展,為生物學(xué)基礎(chǔ)研究和臨床治療提供了強(qiáng)大的分子工具。??1.1.2?CRISPR-Cas9基因編輯系統(tǒng)??CRISPR-Cas9基因編輯系統(tǒng)包含Cas9核酸酶以及兩個(gè)非編碼的CRISPR單??鏈RNA[l3l(圖1.3?)。單鏈RNA系統(tǒng)由反式激活crRNA(tracrRNA)和前體crRNA??(pre-crRNA)兩部分組成,其中前體crRNA包含核酸酶定位序列(gRNA)和??直接重復(fù)序列(DR)。gRNA可以與基因組上前間區(qū)序列臨近基序(PAM)前的??特定序列結(jié)合,引導(dǎo)Cas9核酸酶定位到基因組上。Cas9核酸酶識(shí)別PAM序列??(NGG)之后造成DNA的雙鏈斷裂,從而引發(fā)細(xì)胞內(nèi)源的DNA修復(fù)。其中,??通過非同寐末端連接方式進(jìn)If的DNA修復(fù)會(huì)導(dǎo)致.基因組小片段插入或缺失,進(jìn)??而產(chǎn)生基因突交或敲除的細(xì)胞系,而通過同源重組方式修復(fù)基因組可以用來構(gòu)建??基因敲入的細(xì)胞系心16]。??3??
浙江大學(xué)博士學(xué)雜文?1?g丨R??Cas9??DNA??l?template?strand?PAM??|Non?templatel??_。?sgRNA??圖1.3?CRISPR-Cas9的工作模式圖(引自參考文獻(xiàn)【1?1)。??1.1.3?CRISPR-Cpfl基因編輯系統(tǒng)??2015年,張峰實(shí)驗(yàn)室報(bào)道了新型基因編輯工具酶CRISPR-Cpfl(圖1.4)[18]。??CRISPR-Cpfl可以識(shí)別富含胸腺嘧啶(T)的PAM序列,區(qū)別于CR1SPR-Cas9??識(shí)別的“NGG”PAM序列,擴(kuò)大了?RNA介導(dǎo)的基因編輯的范圍。此外,不同于??CRISPR-Cas9造成的DNA平末端斷裂,CRISPR-Cpfl造成DNA雙鏈斷裂后產(chǎn)??生5?nt的粘性末端。因此,CRISPR-Cpfl可能會(huì)帶來不同的DNA修復(fù)機(jī)制?。??值得一提的是,CRISPR-Cpfl的單鏈RNA系統(tǒng)不包含tracrRNA,所以長度明顯??短于CRISPR-Cas9的單鏈RNA長度,因此crRNA更適于體外合成和多基因編??輯。而且CRISPR-Cpfl的脫靶率較低,非常利:于在細(xì)胞中進(jìn)行精準(zhǔn)的基因編輯??[20-22]??〇??4??
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]誘導(dǎo)多能干細(xì)胞的臨床應(yīng)用研究[J]. 瞿超,李勁松. 中國細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào). 2018(S1)
[2]基因編輯技術(shù):進(jìn)展與挑戰(zhàn)[J]. 盧俊南,褚鑫,潘燕平,陳映羲,溫欒,戴俊彪. 中國科學(xué)院院刊. 2018(11)
[3]人類基因編輯的前景與挑戰(zhàn)[J]. 李卓,吳景淳,裴端卿. 生命科學(xué). 2018(09)
[4]中國2型糖尿病防治指南(2017年版)[J]. Chinese Diabetes Society;. 中國實(shí)用內(nèi)科雜志. 2018(04)
[5]基因組編輯技術(shù)應(yīng)用于作物遺傳改良的進(jìn)展與挑戰(zhàn)[J]. 王福軍,趙開軍. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué). 2018(01)
[6]誘導(dǎo)重編程的表觀遺傳調(diào)控研究進(jìn)展[J]. 李東偉,陳捷凱,裴端卿. 生命科學(xué). 2017(10)
[7]什么控制著器官再生?[J]. 裴端卿. 科學(xué)通報(bào). 2017(Z2)
[8]新一代基因組編輯系統(tǒng)CRISPR/Cpf1[J]. 楊帆,李寅. 生物工程學(xué)報(bào). 2017(03)
[9]CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)在腫瘤研究及治療中的應(yīng)用[J]. 孟澤松,王飛飛,王光林,席金川,王貴英. 腫瘤. 2016(12)
[10]干細(xì)胞與再生醫(yī)學(xué)發(fā)展前瞻[J]. 劉晶,曹尚濤,蔡景蕾,裴端卿. 科技導(dǎo)報(bào). 2016(20)
本文編號(hào):3055870
【文章來源】:浙江大學(xué)浙江省 211工程院校 985工程院校 教育部直屬院校
【文章頁數(shù)】:132 頁
【學(xué)位級(jí)別】:博士
【部分圖文】:
圖1.1真核細(xì)胞中主要的DNA斷裂修復(fù)方式(引自參考文獻(xiàn)W)
浙江繼博士雜齡.?1?g[R??DNA-binding?domain???一?x?(ZF?or?TALE)??F〇k。?zf?umnnun^??…?Fok丨?一?-,)?TALE??圖1.2?ZFN和TALEN的工作模式圖(引自參考文獻(xiàn)叫9??隨后,研究者們依舊不斷致力于尋找新的基因編輯工具。2013年,研究人員??在II型細(xì)菌的適應(yīng)性免疫系統(tǒng)CRISPR中開發(fā)出了?Cas9核酸酶[13、14],從此,基??因編輯工具得到了廣泛的應(yīng)用。CRISPR基因編輯系統(tǒng)的開發(fā)和使用是基因編輯??領(lǐng)域中里程碑式的進(jìn)展,為生物學(xué)基礎(chǔ)研究和臨床治療提供了強(qiáng)大的分子工具。??1.1.2?CRISPR-Cas9基因編輯系統(tǒng)??CRISPR-Cas9基因編輯系統(tǒng)包含Cas9核酸酶以及兩個(gè)非編碼的CRISPR單??鏈RNA[l3l(圖1.3?)。單鏈RNA系統(tǒng)由反式激活crRNA(tracrRNA)和前體crRNA??(pre-crRNA)兩部分組成,其中前體crRNA包含核酸酶定位序列(gRNA)和??直接重復(fù)序列(DR)。gRNA可以與基因組上前間區(qū)序列臨近基序(PAM)前的??特定序列結(jié)合,引導(dǎo)Cas9核酸酶定位到基因組上。Cas9核酸酶識(shí)別PAM序列??(NGG)之后造成DNA的雙鏈斷裂,從而引發(fā)細(xì)胞內(nèi)源的DNA修復(fù)。其中,??通過非同寐末端連接方式進(jìn)If的DNA修復(fù)會(huì)導(dǎo)致.基因組小片段插入或缺失,進(jìn)??而產(chǎn)生基因突交或敲除的細(xì)胞系,而通過同源重組方式修復(fù)基因組可以用來構(gòu)建??基因敲入的細(xì)胞系心16]。??3??
浙江大學(xué)博士學(xué)雜文?1?g丨R??Cas9??DNA??l?template?strand?PAM??|Non?templatel??_。?sgRNA??圖1.3?CRISPR-Cas9的工作模式圖(引自參考文獻(xiàn)【1?1)。??1.1.3?CRISPR-Cpfl基因編輯系統(tǒng)??2015年,張峰實(shí)驗(yàn)室報(bào)道了新型基因編輯工具酶CRISPR-Cpfl(圖1.4)[18]。??CRISPR-Cpfl可以識(shí)別富含胸腺嘧啶(T)的PAM序列,區(qū)別于CR1SPR-Cas9??識(shí)別的“NGG”PAM序列,擴(kuò)大了?RNA介導(dǎo)的基因編輯的范圍。此外,不同于??CRISPR-Cas9造成的DNA平末端斷裂,CRISPR-Cpfl造成DNA雙鏈斷裂后產(chǎn)??生5?nt的粘性末端。因此,CRISPR-Cpfl可能會(huì)帶來不同的DNA修復(fù)機(jī)制?。??值得一提的是,CRISPR-Cpfl的單鏈RNA系統(tǒng)不包含tracrRNA,所以長度明顯??短于CRISPR-Cas9的單鏈RNA長度,因此crRNA更適于體外合成和多基因編??輯。而且CRISPR-Cpfl的脫靶率較低,非常利:于在細(xì)胞中進(jìn)行精準(zhǔn)的基因編輯??[20-22]??〇??4??
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]誘導(dǎo)多能干細(xì)胞的臨床應(yīng)用研究[J]. 瞿超,李勁松. 中國細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào). 2018(S1)
[2]基因編輯技術(shù):進(jìn)展與挑戰(zhàn)[J]. 盧俊南,褚鑫,潘燕平,陳映羲,溫欒,戴俊彪. 中國科學(xué)院院刊. 2018(11)
[3]人類基因編輯的前景與挑戰(zhàn)[J]. 李卓,吳景淳,裴端卿. 生命科學(xué). 2018(09)
[4]中國2型糖尿病防治指南(2017年版)[J]. Chinese Diabetes Society;. 中國實(shí)用內(nèi)科雜志. 2018(04)
[5]基因組編輯技術(shù)應(yīng)用于作物遺傳改良的進(jìn)展與挑戰(zhàn)[J]. 王福軍,趙開軍. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué). 2018(01)
[6]誘導(dǎo)重編程的表觀遺傳調(diào)控研究進(jìn)展[J]. 李東偉,陳捷凱,裴端卿. 生命科學(xué). 2017(10)
[7]什么控制著器官再生?[J]. 裴端卿. 科學(xué)通報(bào). 2017(Z2)
[8]新一代基因組編輯系統(tǒng)CRISPR/Cpf1[J]. 楊帆,李寅. 生物工程學(xué)報(bào). 2017(03)
[9]CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)在腫瘤研究及治療中的應(yīng)用[J]. 孟澤松,王飛飛,王光林,席金川,王貴英. 腫瘤. 2016(12)
[10]干細(xì)胞與再生醫(yī)學(xué)發(fā)展前瞻[J]. 劉晶,曹尚濤,蔡景蕾,裴端卿. 科技導(dǎo)報(bào). 2016(20)
本文編號(hào):3055870
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