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基于噻唑橙和聚苯胺的DNA甲基化檢測(cè)方法研究

發(fā)布時(shí)間:2017-05-11 12:18

  本文關(guān)鍵詞:基于噻唑橙和聚苯胺的DNA甲基化檢測(cè)方法研究,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:DNA甲基化是一種重要的表觀遺傳修飾方式,在甲基轉(zhuǎn)移酶的催化作用下,將甲基自由基選擇性地添加到DNA的CpG序列的胞嘧啶上,從而形成5-甲基胞嘧啶,通常發(fā)生在基因的5'-CG-3'序列(被稱(chēng)為CpG島)。大量的科學(xué)研究表明,DNA甲基化涉及到很多細(xì)胞的調(diào)控過(guò)程,例如調(diào)控基因表達(dá)、胚胎發(fā)育、抑制轉(zhuǎn)錄、染色質(zhì)結(jié)構(gòu)、X-染色體失活、染色體結(jié)構(gòu)重組、基因組印跡和染色體的穩(wěn)定性。在高等真核生物的正常細(xì)胞中,一般情況下CpG島是末甲基化,但是,異常甲基化會(huì)抑制遺傳信息的表達(dá),會(huì)導(dǎo)致人類(lèi)各種疾病,比如癌癥的發(fā)生。因此,DNA甲基化可以作為疾病的一種潛在生物標(biāo)志。同時(shí),甲基轉(zhuǎn)移酶在細(xì)胞分化和發(fā)育、基因的抑制、腫瘤和基因疾病中發(fā)揮了關(guān)鍵作用,所以甲基轉(zhuǎn)移酶的活性評(píng)價(jià)在藥物研發(fā)和臨床診斷的領(lǐng)域很重要。因此,發(fā)展一種迅速、簡(jiǎn)單、高效、選擇性高的DNA甲基化和甲基轉(zhuǎn)移酶活性的檢測(cè)方法是刻不容緩的。本論文圍繞DNA甲基化和DNA甲基轉(zhuǎn)移酶的檢測(cè)開(kāi)展了如下兩個(gè)工作:第一,我們發(fā)展了一種基于限制性?xún)?nèi)切酶HpaⅡ和外切酶III(Exo III)的無(wú)標(biāo)記熒光檢測(cè)DNA甲基化和DNA甲基轉(zhuǎn)移酶活性的方法。設(shè)計(jì)了一種可與目標(biāo)DNA雜交形成雙鏈DNA的無(wú)標(biāo)記探針DNA。我們以從人p53基因外顯子8上截取了一段32堿基長(zhǎng)度的DNA作為研究對(duì)象。由于HpaⅡ切割和ExoⅢ消化的作用,雙鏈DNA會(huì)變成單鏈DNA,導(dǎo)致噻唑橙的熒光強(qiáng)度減弱。但是,在雙鏈DNA上特定的序列被DNA甲基轉(zhuǎn)移酶甲基化后,就會(huì)抑制Jpan和Exo Ⅲ的功能,噻唑橙嵌入到雙鏈DNA中,從而發(fā)出很強(qiáng)的熒光。這種方法可以確定DNA上特定位點(diǎn)CpG的甲基化,同時(shí)我們進(jìn)一步考察了由化學(xué)試劑二甲亞砜(DMSO)和乙醛(CH3CH0)引起的甲基化。對(duì)人血清樣品的分析,表明此方法在進(jìn)一步應(yīng)用到復(fù)雜的生物胖品中有著巨大的潛力。第二,發(fā)展了一種基于限制性?xún)?nèi)切酶HpaⅡ和HRP模擬酶(bemin/G-quadruplex DNAzyme)誘導(dǎo)聚苯胺合成的甲基轉(zhuǎn)移酶活性檢測(cè)方法。其中HRP模擬酶作為一種強(qiáng)催化劑,催化雙氧水誘導(dǎo)苯胺在電極表面的DNA上聚合生成聚苯胺(PANI),進(jìn)而聚苯胺作為本實(shí)驗(yàn)中的氧化還原信號(hào)分子。電極表面先修飾捕獲探針(S1),然后與目標(biāo)DNA (S2)雜交形成雙鏈DNA。在沒(méi)有甲基轉(zhuǎn)移酶存在的情況下,雙鏈DNA就會(huì)被HpaⅡⅡ切割,那么DANzyme DNA (S3)就不能與電極上的DNA雜交,繼而HRP模擬酶也就不會(huì)形成。苯胺不能在電極表面聚合,就不會(huì)有電流信號(hào)。但是,在甲基轉(zhuǎn)移酶存在的情況下,雙鏈DNA會(huì)被甲基化,就會(huì)抑制HpaⅡ的切割功能。HRP模擬酶順利在電極表面形成,催化H2O2誘導(dǎo)苯胺聚合。由于聚苯胺的生成,就會(huì)有強(qiáng)的電流信號(hào)。這種方法可以準(zhǔn)確地檢測(cè)特定位點(diǎn)CpG的甲基化。同時(shí)也對(duì)人血清中檢測(cè)DNA甲基轉(zhuǎn)移酶活性的效果進(jìn)行了驗(yàn)證。另外,我們還研究這種方法在甲基轉(zhuǎn)移酶抑制劑篩選中的應(yīng)用。
【關(guān)鍵詞】:DNA甲基化 甲基轉(zhuǎn)移酶 限制性?xún)?nèi)切酶 噻唑橙 聚苯胺 熒光檢測(cè) 電化學(xué)檢測(cè)
【學(xué)位授予單位】:東南大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2015
【分類(lèi)號(hào)】:Q78
【目錄】:
  • 摘要4-5
  • Abstract5-9
  • 第一章 緒論9-18
  • 1.1 DNA甲基化概述9-11
  • 1.1.1 CpG島9-10
  • 1.1.2 DNA甲基化的生成10
  • 1.1.3 DNA甲基化與腫瘤10-11
  • 1.2 影響DNA甲基化的因素11-14
  • 1.2.1 DNA甲基轉(zhuǎn)移酶11-12
  • 1.2.2 組蛋白甲基化12
  • 1.2.3 飲食等環(huán)境因素12-13
  • 1.2.4 RNA干擾13-14
  • 1.2.5 病毒感染14
  • 1.3 DNA甲基化的檢測(cè)方法14-17
  • 1.3.1 重亞硫酸鹽測(cè)序法14-15
  • 1.3.2 高效液相色譜15
  • 1.3.3 高效毛細(xì)管電泳法15
  • 1.3.4 甲基化敏感性限制內(nèi)切酶法15-16
  • 1.3.5 甲基化結(jié)合蛋白分析方法16-17
  • 1.4 本文研究的內(nèi)容17-18
  • 第二章 基于限制性?xún)?nèi)切酶和外切酶Ⅲ的無(wú)標(biāo)記熒光檢測(cè)DNA甲基化和甲基轉(zhuǎn)移酶活性18-29
  • 2.1 引言18-20
  • 2.2 實(shí)驗(yàn)部分20-21
  • 2.2.1 試劑和儀器20
  • 2.2.2 探針DNA與目標(biāo)DNA雜交20
  • 2.2.3 DNA甲基化及限制性?xún)?nèi)切酶和外切酶Ⅲ的作用20-21
  • 2.2.4 由化學(xué)試劑引起的DNA甲基化21
  • 2.2.5 在血清中檢測(cè)M.SssI甲基轉(zhuǎn)移酶活性21
  • 2.3 結(jié)果與討論21-28
  • 2.3.1 噻唑橙的熒光性能和它的濃度優(yōu)化21-22
  • 2.3.2 HpaⅡ和ExoⅢ的功能驗(yàn)證及它們的濃度優(yōu)化22-23
  • 2.3.3 目標(biāo)DNA檢測(cè)及驗(yàn)證其選擇性23-25
  • 2.3.4 DNA甲基化及甲基轉(zhuǎn)移酶活性的檢測(cè)25-26
  • 2.3.5 化學(xué)試劑甲基化的檢測(cè)26-27
  • 2.3.6 在人血清中檢測(cè)M.SssI甲基轉(zhuǎn)移酶的活性27-28
  • 2.4 本章小結(jié)28-29
  • 第三章 基于限制性?xún)?nèi)切酶HpaⅡ和聚苯胺的無(wú)標(biāo)記電化學(xué)檢測(cè)甲基轉(zhuǎn)移酶活性29-41
  • 3.1 引言29-31
  • 3.2 實(shí)驗(yàn)部分31-33
  • 3.2.1 試劑和儀器31
  • 3.2.2 捕獲探針DNA修飾金電極的制備31-32
  • 3.2.3 捕獲DNA與目標(biāo)DNA雜交32
  • 3.2.4 DNA甲基化及限制性?xún)?nèi)切酶HpaⅡ和外切酶Ⅲ的作用32
  • 3.2.5 HRP模擬酶和聚苯胺的形成32
  • 3.2.6 抑制劑對(duì)M.SssI甲基轉(zhuǎn)移酶活性的抑制32-33
  • 3.2.7 電化學(xué)測(cè)試33
  • 3.3 結(jié)果與討論33-40
  • 3.3.1 聚苯胺的電化學(xué)性能33-35
  • 3.3.2 電化學(xué)檢測(cè)M.SssI甲基轉(zhuǎn)移酶活性35-38
  • 3.3.3 在人血清中測(cè)定M.SssI甲基轉(zhuǎn)移酶的活性38-39
  • 3.3.4 不同濃度抑制劑對(duì)M.SssI甲基轉(zhuǎn)移酶活性的抑制39-40
  • 3.4 本章小結(jié)40-41
  • 第四章 總結(jié)與展望41-42
  • 參考文獻(xiàn)42-52
  • 致謝52-53
  • 作者簡(jiǎn)介53

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