親水基團修飾靶向GPC3受體的新型分子探針的構(gòu)建及PET顯像研究
發(fā)布時間:2020-07-22 19:06
【摘要】:研究背景:磷脂酰肌醇蛋白聚糖3(Glypican-3,GPC3)是硫酸類肝素蛋白聚糖家族中的一員,特異性的高表達在80%以上的人肝癌組織中,而非肝癌組織不表達。L5(序列為RLNVGGTYFLTTRQ)是韓國學(xué)者Lee等經(jīng)噬菌體展示及轉(zhuǎn)染技術(shù)篩選出來的GPC3受體的特異靶向多肽。近幾年,我們研究團隊開發(fā)了 18F標(biāo)記的L5顯像劑用于荷瘤裸鼠HCC成像,然而,肝臟及腸道聚集了大量的放射性顯像劑,其圖像質(zhì)量并不是很好,不利于肝臟和腹部腫瘤的顯像。為了提高顯像效果,我們在前期研究的基礎(chǔ)上,對NOTA-L5進行修飾,在靶向多肽NOTA-L5的-NH2端增加了親水基團GGGRDN(簡稱L),制備了 18F標(biāo)記的18F-AlF-NOTA-L-L5,期望親水基團的引入能提高探針的水溶性,減少肝膽排泄,降低肝臟和腸道的放射性背景,更有利于肝細胞癌的顯像。研究目的:1.通過將GGGRDN(L)的親水性基團修飾NOTA-L5多肽并使用18F-AlF螯合法進行放射性標(biāo)記開發(fā)新型的GPC3靶向PET探針(18F-AlF-NOTA-L-L5)。2.與18F-AlF-NOTA-L5進行比較,探索親水基團L的引入后的靶向探針18F-AlF-NOTA-L-L5能否減少肝膽排泄,降低肝和腸中的背景放射性,提高腫瘤顯像效果。研究方法:1.合成L5、L-L5、NOTA-L5及NOTA-L-L5,并對多肽進行分離純化及分析鑒定。2.用表面等離子共振(SPR)測量來確定NOTA-L5和NOTA-L-L5對GPC3蛋白的親和力。3.采用手動和模塊化通過18F-AlF螯合法標(biāo)記得到放射性標(biāo)記探針18F-AlF-NOTA-L5及18F-AlF-NOTA-L-L5,并測定各自的標(biāo)記率和放化純度。4.用HPLC對18F-AlF-NOTA-L5及18F-AlF-NOTA-L-L5放射性藥物進行體外穩(wěn)定性實驗,使用Y計數(shù)器對上述放射性藥物進行體內(nèi)穩(wěn)定性實驗及脂水分配系數(shù)實驗。5.體外細胞攝取及流出實驗用于評價18F-AlF-NOTA-L5和18F-AlF-NOTA-L-L5與受體GPC3的結(jié)合特性。6.建立HepG2及RH7777裸鼠腫瘤模型,經(jīng)尾靜脈注射18F-AlF-NOTA-L5或18F-AlF-NOTA-L-L5,并研究該腫瘤模型的microPET/CT顯像及裸鼠的體內(nèi)分布。7.通過對HepG2及RH7777腫瘤組織行免疫病理檢查確認其GPC3表達。結(jié)果:1.合成多肽L5、L-L5、NOTA-L5和NOTA-L-L5,純度均大于95%。質(zhì)譜分析主峰分子量與理論分子量相符,滿足實驗要求。2.親和力實驗:用表面等離子體共振(SPR)測定法測定NOTA-L5和NOTA-L-L5與GPC3結(jié)合能力,結(jié)果顯示:NOTA-L5和NOTA-L-L5的解離常數(shù)(KD)分別為1.01×10-7和6.33×10-8mol。兩者的Kd都在納摩爾級別,提示親水基團修飾對親和力無明顯影響。3.18F-AlF-NOTA-L5 和18F-AlF-NOTA-L-L5 合成產(chǎn)率分別為 79.98±8.04%和54.81±9.05%,18F-AlF-NOTA-L-L5 標(biāo)記產(chǎn)率低于 18F-AlF-NOTA-L5(P0.05)。經(jīng)C18柱純化后其放化純度分別為97.17±1.03%和100±0%,兩者的放化純度差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P0.05)。產(chǎn)物峰單一,與未標(biāo)記前的多肽出峰位置基本相同。4.穩(wěn)定性試驗:18F-AlF-NOTA-L5在37℃ PBS及血清中的放化純度均大于94%,18F-AlF-NOTA-L-L5在37℃ PBS及血清中的放化純度均大于98%,18F-AlF-NOTA-L-L5 體外穩(wěn)定性優(yōu)于 18F-AlF-NOTA-L5(P0.05)。在注射18F-AlF-NOTA-L5 60 分鐘后,18F-AlF-NOTA-L5 及 18F-AlF-NOTA-L-L5 的體內(nèi)穩(wěn)定未見明顯差異(P0.05)。5.脂水分配實驗:經(jīng)實驗測定18F-AlF-NOTA-L5的Log P=-2.10±0.07,18F-AlF-NOTA-L-L5的Log P=-2.42±0.09,兩者之間的統(tǒng)計學(xué)分析表明18F-AlF-NOTA-L-L5 分子探針親水性比 18F-AlF-NOTA-L5 好(t=5.482,P=0.002,n=4)。6.體外細胞攝取實驗:HepG2細胞攝取18F-AlF-NOTA-L-L5及18F-AlF-NOTA-L5兩種示蹤劑曲線相似,HepG2細胞攝取18F-AlF-NOTA-L-L5稍高于18F-AlF-NOTA-L5,但是兩者差別不大。HepG2細胞攝取18F-AlF-NOTA-L5及18F-AlF-NOTA-L-L5明顯高于GPC3陰性的RH7777細胞。HepG2細胞與兩種放射性藥物共同孵育30min后,HepG2細胞結(jié)合放射活性接近高峰,并達到平臺期。7.micro PET/CT 顯像:注射 18F-AlF-NOTA-L5 或 18F-AlF-NOTA-L-L5 后,18F-AlF-NOTA-L-L5 的 HepG2 腫瘤攝取顯著高于 18F-AlF-NOTA-L5(30min:3.10±0.26vs2.28±0.33,t=3.935,P = 0.008;60min:3.27±0.34vs1.90±0.65,t =3.757,P = 0.016),120min 18F-AlF-NOTA-L-L5 腫瘤攝取為 1.35±0.17%ID/g 稍高于18F-AlF-NOTA-L5 腫瘤攝取(1.08±0.73%ID/g),差異沒有統(tǒng)計學(xué)意義(t=0.730,P=0.493)。注射18F-AlF-NOTA-L-L5 30min、60min及120min后,不表達GPC3 RH7777腫瘤幾乎不攝取,HepG2腫瘤攝取在不同時間的均顯著高于RH7777腫瘤攝取(30min:3.10±0.26vs1.75±0.04,t =10.308,P=0.002;60min:3.27±0.34vs1.63±0.03,t =9.639,P = 0.002;120min:1.35±0.17vs0.66-±0.05,t =7.693,P = 0.003)。18F-AlF-NOTA-L5 在 30min、60min、120min 肝臟攝取值高于18F-AlF-NOTA-L-L5 肝臟攝取值,并且 30 及 60min 18F-AlF-NOTA-L-L5 肝臟攝取值顯著低于18F-AlF-NOTA-L5肝臟攝取,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(30min:6.35±2.54vs1.93±0.39,t=3.449,P=0.038;60min:4.32±1.49vs1.85±0.37,t=3.232,P=0.041;120min:2.30±0.21v51.23±0.43,t=2.118,P=0.079)。18F-AlF-NOTA-L-L5的腎臟攝取值都明顯高于18F-AlF-NOTA-L5的腎臟攝取值,差異都具有統(tǒng)計學(xué)意義(30min:37.55±3.79vs12.83±1.65,t=6.426,P= 0.001;60min:35.9±2.56vs8.70±1.70,t =11.798,P = 0.000;120min:31.86±3.8vs2.57±0.17,t=4.224,P = 0.006)。對不同時間點的不同臟器進行了腫瘤/非腫瘤放射性比值分析,結(jié)果顯示:在HepG2裸鼠腫瘤模型中,18F-AlF-NOTA-L-L5的腫瘤/肝臟攝取比值在30min、60min及120min都高于18F-AlF-NOTA-L5的腫瘤/肝臟攝取比值,差異都具有統(tǒng)計學(xué)意義(30min:1.65±0.28vs0.39±0.11,t =8.314,P = 0.000;60min:1.82±0.38vs0.48±0.23,t =6.068,P = 0.001;120min:1.17±0.31vs0.49±0.39,t =2.740,P=0.034)。注射靶向分子探針后,18F-AlF-NOTA-L-L5在30min及60min具有比18F-AlF-NOTA-L5更高腫瘤/腸道,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(30min:2.70±1.19vs0.64±0.35,t =3.324,P = 0.016;60min:2.74±0.44vs0.71±0.53,t =5.863,P = 0.001;120min:3.45±2.15vs0.39±0.19,t=2.842,P = 0.064)。體外生物學(xué)分布實驗結(jié)果與小動物microPET結(jié)果相似。8.免疫組化結(jié)果顯示GPC3在HepG2腫瘤組織高表達,在RH7777腫瘤組織中不表達。結(jié)論1.本研究通過 A118F 螯合法成功制備了 18F-AlF-NOTA-L5 和 18F-AlF-NOTA-L-L5,其放化純達97%以上。此A118F-NOTA螫合化學(xué)方法簡便、省時,可通過“一鍋法”標(biāo)記完成,并同時能進行模塊式自動化生產(chǎn),為臨床大批量生產(chǎn)提供可能。此實驗表明:親水基團修飾NOTA-L5肽后,18F-AlF-NOTA-L-L5放射性標(biāo)記效率低于18F-AlF-NOTA-L5放射性標(biāo)記效率,但是其放化純度高于18F-AlF-NOTA-L5。2.以上實驗證明:增加親水基團GGGRDN后,不影響18F-AlF-NOTA-L-L5與GPC3結(jié)合能力,不影響18F-AlF-NOTA-L-L5體內(nèi)外穩(wěn)定性,且其親水性明顯提高。3.體外細胞攝取實驗表明18F-AlF-NOTA-L-L5攝取均符合受體-配體競爭結(jié)合規(guī)律。4.經(jīng)microPET/CT和體內(nèi)放射性分布研究證實引入親水基團后,腫瘤攝取提高了,肝膽排泄明顯降低,腎臟攝取明顯增高,腫瘤/肝比值明顯增高,有利于肝細胞癌的顯像。
【學(xué)位授予單位】:南方醫(yī)科大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2018
【分類號】:R817
【圖文】:
3.2邋NOTA-L5及NOTA-L-L5的合成方法學(xué)逡逑3.2.1邐NOTA-L5和NOTA-L-L5通過p-NCS-Bn-NOTA經(jīng)由硫脲鍵與肽的胺基連逡逑接(圖3-1)。逡逑L邋,..一f邋s邐肽鏈逡逑》c4s邐If邋'邋kw邐^邋H逡逑°邐丨加熱逡逑邐邐邐邐逡逑fX邋A邐,佊佊二/ ??0*逡逑'NH邋加熱邐、邐s3^0逡逑d^-R邋^邐>=\逡逑\1邋H逡逑苯乙內(nèi)酸硫佭逡逑(PTH邋}邐k^J逡逑圖3-1邋N0TA-L5和N0TA-L-L5合成化學(xué)方程式。逡逑Fig邋3-1NOTA-L5邋and邋N0TA-L-L5邋synthesis邋of邋the邋chemical邋equation.逡逑3.2.2邐NOTA-L5邋的合成逡逑準(zhǔn)備兩個1.5ml的編號分別為A、B的離心管。用精密天平稱。常罚恚缍嚯腻义希蹋笛b至A管,并加200ul的硼酸緩沖液,超聲震蕩2分鐘。稱。玻埃恚珏义希穑危茫樱拢睿危希裕裂b至B管,溶解于lOOul邋DMSO,超聲震蕩2分鐘。A管及B逡逑管混合,將混合物的pH調(diào)節(jié)至9.0,在室溫下超聲2小時后,反應(yīng)被淬滅。反逡逑應(yīng)后。担酰鞓悠罚褂梅治鲂停龋校蹋脕龛b定所需產(chǎn)物。分析型HPLC在Phenomenex逡逑Luna邋Ci8反相分析柱(5jam,250x4.6mm)上的參數(shù)為:流速為lmL邋/邋min,A逡逑相為含0.1邋%三氟乙酸的水溶液、B相為含0.1邋%三氟乙酸的乙腈溶液
圖3-2邋18F標(biāo)記N0TA-L5及N0TA-L-L5反應(yīng)流程圖。逡逑Fig邋3-2邋18F邋labeled邋N0TA-L5邋and邋N0TA-L-L5邋reaction邋scheme0逡逑3.4.3半自動化模塊18F-A1F螯合法NOTA-L5及NOTA-L-L5逡逑I8F標(biāo)記N0TA-L5及N0TA-L-L5在氟多功能模塊(如下圖)半自動合成。逡逑1)C18柱的活化:使用注射器抽取無水乙醇10ml,將C18柱與注射器連接,推動逡逑注射器使無水乙醇通過Ci8柱,隨后打入空氣使Ci8柱干燥,另用注射器抽。保埃恚戾义霞兯ㄟ^C18柱,隨后打入空氣使其千燥,完成活化。2)模塊的清洗:首先檢逡逑查設(shè)備中的各個部件的功能狀態(tài),如密封性,濾片的過濾功能,管線是否完好逡逑及無折疊,氣密性是否良好等。然后依次向試劑瓶1-6號瓶中先后加入5ml水,逡逑17逡逑
質(zhì)譜分析鑒定,NOTA邋-L5的主峰分子量(m/z,邋Da)為2076.3和2632.8,逡逑與NOTA邋-L5及NOTA-L-L5理論分子量2076.37和2632.91相符,證明標(biāo)記合成逡逑(圖5-3)。經(jīng)HPLC純化、分析結(jié)果顯示,NOTA-L5及NOTA-L-L5標(biāo)記多肽主逡逑峰明確,對稱性良好,主峰保留時間分別為14.533和13.473min。NOTA-L5的逡逑純度為96.29%和95.97%邋(圖5-4)。驗證合格后將產(chǎn)物分裝入250^g/管,清楚標(biāo)逡逑識后放入-80°C冰箱中存放。逡逑f邐邐邋邐[苜邐邐逡逑I邋5Js,邐A邋!郵邐SfS邐B逡逑I邋5J邐卜叫逡逑I邐!逡逑M邐j邋I)逡逑f邐I逡逑H邐I邋—逡逑i邐f邐Mi?|邐:邐I逡逑1邐叫逡逑aS.4pHr.IMf邐Ut/i邐i邐|逡逑S2*1‘邐i邐丨邋‘邐|邋i逡逑Is邐|邐!邐is逡逑I邐k^\邐i邐i邐|逡逑!邐丨邐潔w逡逑!邐卜逡逑;邐I邐I邐|邐i邐i逡逑;H邐丨邐丨心逡逑I邐叫邋|邐j邐^臂逡逑,鱸邐j邐|邋Urf|逡逑I邐I邐丨逡逑卜?.邐?被邐H邐j邐I逡逑I邐\邐mi邐\逡逑I邋^邐^邋|邋j邋^邐j邐Li邐^邋^逡逑■.^3?邐t&t7jig:-ai-:邋c邋^,iT??邐j邋jg;邐^邋m邐sa>邐?mnga邋i逡逑"¥c邐??銥邋i?邋滾邋_炲迕藉澹觶澹潁澹礤澹潁椋簀澹蓿螅澹幔徨澹
本文編號:2766230
【學(xué)位授予單位】:南方醫(yī)科大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2018
【分類號】:R817
【圖文】:
3.2邋NOTA-L5及NOTA-L-L5的合成方法學(xué)逡逑3.2.1邐NOTA-L5和NOTA-L-L5通過p-NCS-Bn-NOTA經(jīng)由硫脲鍵與肽的胺基連逡逑接(圖3-1)。逡逑L邋,..一f邋s邐肽鏈逡逑》c4s邐If邋'邋kw邐^邋H逡逑°邐丨加熱逡逑邐邐邐邐逡逑fX邋A邐,佊佊二/ ??0*逡逑'NH邋加熱邐、邐s3^0逡逑d^-R邋^邐>=\逡逑\1邋H逡逑苯乙內(nèi)酸硫佭逡逑(PTH邋}邐k^J逡逑圖3-1邋N0TA-L5和N0TA-L-L5合成化學(xué)方程式。逡逑Fig邋3-1NOTA-L5邋and邋N0TA-L-L5邋synthesis邋of邋the邋chemical邋equation.逡逑3.2.2邐NOTA-L5邋的合成逡逑準(zhǔn)備兩個1.5ml的編號分別為A、B的離心管。用精密天平稱。常罚恚缍嚯腻义希蹋笛b至A管,并加200ul的硼酸緩沖液,超聲震蕩2分鐘。稱。玻埃恚珏义希穑危茫樱拢睿危希裕裂b至B管,溶解于lOOul邋DMSO,超聲震蕩2分鐘。A管及B逡逑管混合,將混合物的pH調(diào)節(jié)至9.0,在室溫下超聲2小時后,反應(yīng)被淬滅。反逡逑應(yīng)后。担酰鞓悠罚褂梅治鲂停龋校蹋脕龛b定所需產(chǎn)物。分析型HPLC在Phenomenex逡逑Luna邋Ci8反相分析柱(5jam,250x4.6mm)上的參數(shù)為:流速為lmL邋/邋min,A逡逑相為含0.1邋%三氟乙酸的水溶液、B相為含0.1邋%三氟乙酸的乙腈溶液
圖3-2邋18F標(biāo)記N0TA-L5及N0TA-L-L5反應(yīng)流程圖。逡逑Fig邋3-2邋18F邋labeled邋N0TA-L5邋and邋N0TA-L-L5邋reaction邋scheme0逡逑3.4.3半自動化模塊18F-A1F螯合法NOTA-L5及NOTA-L-L5逡逑I8F標(biāo)記N0TA-L5及N0TA-L-L5在氟多功能模塊(如下圖)半自動合成。逡逑1)C18柱的活化:使用注射器抽取無水乙醇10ml,將C18柱與注射器連接,推動逡逑注射器使無水乙醇通過Ci8柱,隨后打入空氣使Ci8柱干燥,另用注射器抽。保埃恚戾义霞兯ㄟ^C18柱,隨后打入空氣使其千燥,完成活化。2)模塊的清洗:首先檢逡逑查設(shè)備中的各個部件的功能狀態(tài),如密封性,濾片的過濾功能,管線是否完好逡逑及無折疊,氣密性是否良好等。然后依次向試劑瓶1-6號瓶中先后加入5ml水,逡逑17逡逑
質(zhì)譜分析鑒定,NOTA邋-L5的主峰分子量(m/z,邋Da)為2076.3和2632.8,逡逑與NOTA邋-L5及NOTA-L-L5理論分子量2076.37和2632.91相符,證明標(biāo)記合成逡逑(圖5-3)。經(jīng)HPLC純化、分析結(jié)果顯示,NOTA-L5及NOTA-L-L5標(biāo)記多肽主逡逑峰明確,對稱性良好,主峰保留時間分別為14.533和13.473min。NOTA-L5的逡逑純度為96.29%和95.97%邋(圖5-4)。驗證合格后將產(chǎn)物分裝入250^g/管,清楚標(biāo)逡逑識后放入-80°C冰箱中存放。逡逑f邐邐邋邐[苜邐邐逡逑I邋5Js,邐A邋!郵邐SfS邐B逡逑I邋5J邐卜叫逡逑I邐!逡逑M邐j邋I)逡逑f邐I逡逑H邐I邋—逡逑i邐f邐Mi?|邐:邐I逡逑1邐叫逡逑aS.4pHr.IMf邐Ut/i邐i邐|逡逑S2*1‘邐i邐丨邋‘邐|邋i逡逑Is邐|邐!邐is逡逑I邐k^\邐i邐i邐|逡逑!邐丨邐潔w逡逑!邐卜逡逑;邐I邐I邐|邐i邐i逡逑;H邐丨邐丨心逡逑I邐叫邋|邐j邐^臂逡逑,鱸邐j邐|邋Urf|逡逑I邐I邐丨逡逑卜?.邐?被邐H邐j邐I逡逑I邐\邐mi邐\逡逑I邋^邐^邋|邋j邋^邐j邐Li邐^邋^逡逑■.^3?邐t&t7jig:-ai-:邋c邋^,iT??邐j邋jg;邐^邋m邐sa>邐?mnga邋i逡逑"¥c邐??銥邋i?邋滾邋_炲迕藉澹觶澹潁澹礤澹潁椋簀澹蓿螅澹幔徨澹
本文編號:2766230
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