MiR-155通過C-maf調(diào)控過敏性鼻炎小鼠中的ILC2
發(fā)布時(shí)間:2023-04-26 00:02
目的:應(yīng)用IL-33誘導(dǎo)的AR小鼠模型及C-maf干擾病毒,探究miR-155、C-maf和ILC2之間的調(diào)節(jié)關(guān)系。方法:1、小鼠AR模型的建立方法選取6-8周雌性Balb/c小鼠,分為實(shí)驗(yàn)組及對(duì)照組,實(shí)驗(yàn)組:經(jīng)鼻腔滴入重組小鼠IL-33(Recombinant mouse IL-33,rmIL-33)試劑,劑量為0.5ug/20ul/只,連續(xù)滴鼻3天。對(duì)照組經(jīng)鼻腔滴入相同體積無菌PBS,連續(xù)3天。在第4天處死小鼠,取其鼻黏膜組織進(jìn)行蘇木精-伊紅(hematoxylin and eosin,HE)染色,觀察鼻黏膜組織病理學(xué)改變。2、IL-33與miR-155模擬劑或抑制劑聯(lián)合應(yīng)用造模miR-155模擬劑(agomir)和miR-155抑制劑(antagomir)在運(yùn)用rmIL-33之前3h開始進(jìn)行滴鼻干預(yù),對(duì)照組小鼠經(jīng)鼻腔滴入無菌PBS。3、慢病毒的使用第1天每只老鼠滴鼻20ul,9×108TU/ml的LMRi82714,第5天開始按方法1和2進(jìn)行后續(xù)造模。4、實(shí)時(shí)熒光定量PCR(quantitative reverse transcriptase polymer...
【文章頁數(shù)】:55 頁
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
ABSTRACT
中英文縮略詞表
第1章 引言
第2章 材料
2.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
2.2 試劑和耗材
2.3 試劑配制
2.3.1 rmIL-33 溶液的配制
2.3.2 膠原酶I的配制
2.3.3 miR-155 agomir和 antagomir溶液的配制
2.4 序列
2.4.1 引物序列
2.4.2 C-maf干擾序列
2.5 主要的儀器設(shè)備
第3章 方法
3.1 慢病毒C-maf-shRNA的獲取
3.2 AR動(dòng)物模型建立及miR-155 和慢病毒的使用
3.3 小鼠鼻黏膜HE染色
3.4 小鼠鼻黏膜蛋白提取及濃度測定
3.4.1 提取小鼠鼻黏膜蛋白
3.4.2 BCA法測蛋白濃度
3.5 ELISA檢測小鼠鼻黏膜中IL-5和IL-13 的表達(dá)水平
3.5.1 檢測原理(以IL-5 為例)
3.5.2 試劑配制
3.5.3 操作步驟
3.6 細(xì)胞表面流式細(xì)胞染色(Cell Surface Flow Cytometry Staining)檢測小鼠鼻黏膜和脾臟中ILC2 的比例
3.7 qRT-PCR檢測C-maf、Il-5和Il-13的mRNA的水平
3.7.1 Trizol法提取組織和細(xì)胞中的總RNA
3.7.2 逆轉(zhuǎn)錄為c DNA
3.7.3 熒光定量PCR
3.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
第4章 結(jié)果
4.1 小鼠鼻黏膜組織HE染色
4.2 MiR-155 可促進(jìn)小鼠鼻黏膜中ILC2 的產(chǎn)生
4.3 ELISA檢測小鼠鼻黏膜中IL-5和IL-13 的變化
4.4 慢病毒抑制效率檢測及篩選
4.5 干擾C-maf對(duì)小鼠鼻黏膜IL-5、IL-13 表達(dá)的影響
4.6 MiR-155 調(diào)控鼻黏膜中IL-5和IL-13 的水平需要C-maf
第5章 討論
第6章 結(jié)論
致謝
參考文獻(xiàn)
綜述
參考文獻(xiàn)
本文編號(hào):3801326
【文章頁數(shù)】:55 頁
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
ABSTRACT
中英文縮略詞表
第1章 引言
第2章 材料
2.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
2.2 試劑和耗材
2.3 試劑配制
2.3.1 rmIL-33 溶液的配制
2.3.2 膠原酶I的配制
2.3.3 miR-155 agomir和 antagomir溶液的配制
2.4 序列
2.4.1 引物序列
2.4.2 C-maf干擾序列
2.5 主要的儀器設(shè)備
第3章 方法
3.1 慢病毒C-maf-shRNA的獲取
3.2 AR動(dòng)物模型建立及miR-155 和慢病毒的使用
3.3 小鼠鼻黏膜HE染色
3.4 小鼠鼻黏膜蛋白提取及濃度測定
3.4.1 提取小鼠鼻黏膜蛋白
3.4.2 BCA法測蛋白濃度
3.5 ELISA檢測小鼠鼻黏膜中IL-5和IL-13 的表達(dá)水平
3.5.1 檢測原理(以IL-5 為例)
3.5.2 試劑配制
3.5.3 操作步驟
3.6 細(xì)胞表面流式細(xì)胞染色(Cell Surface Flow Cytometry Staining)檢測小鼠鼻黏膜和脾臟中ILC2 的比例
3.7 qRT-PCR檢測C-maf、Il-5和Il-13的mRNA的水平
3.7.1 Trizol法提取組織和細(xì)胞中的總RNA
3.7.2 逆轉(zhuǎn)錄為c DNA
3.7.3 熒光定量PCR
3.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
第4章 結(jié)果
4.1 小鼠鼻黏膜組織HE染色
4.2 MiR-155 可促進(jìn)小鼠鼻黏膜中ILC2 的產(chǎn)生
4.3 ELISA檢測小鼠鼻黏膜中IL-5和IL-13 的變化
4.4 慢病毒抑制效率檢測及篩選
4.5 干擾C-maf對(duì)小鼠鼻黏膜IL-5、IL-13 表達(dá)的影響
4.6 MiR-155 調(diào)控鼻黏膜中IL-5和IL-13 的水平需要C-maf
第5章 討論
第6章 結(jié)論
致謝
參考文獻(xiàn)
綜述
參考文獻(xiàn)
本文編號(hào):3801326
本文鏈接:http://sikaile.net/yixuelunwen/wuguanyixuelunwen/3801326.html
最近更新
教材專著