PEDOT/PLLA膜材料協(xié)同電刺激對(duì)PC12細(xì)胞行為的影響
發(fā)布時(shí)間:2025-04-01 02:09
電刺激(Electrical Stimulation, ES)可以調(diào)控細(xì)胞在特定材料如組織支架材料中的行為變化,從而達(dá)到治療損傷組織的目的。神經(jīng)組織損傷后不容易修復(fù),而ES對(duì)損傷組織的修復(fù)具有良好的效果。組織工程ES的應(yīng)用,不僅要求導(dǎo)電材料的支持為后盾,還需要一個(gè)可行的電刺激模型及合適的電刺激參數(shù)。因此,設(shè)計(jì)電刺激的模型及電刺激參數(shù)的設(shè)置都是非常重要的。 本文采用化學(xué)聚合方法制備透明質(zhì)酸(HA)摻雜的聚3,4-乙撐二氧噻吩(PEDOT)導(dǎo)電材料,然后物理混合聚乳酸(PLLA),制得適合細(xì)胞生長(zhǎng)且具有導(dǎo)電性與生物可降解性的復(fù)合材料。并且設(shè)計(jì)出一個(gè)可行的電刺激培養(yǎng)模型,確定了電刺激參數(shù),考察了ES和PEDOT/PLLA膜共同作用對(duì)PC12細(xì)胞的行為變化影響。四探針電導(dǎo)率儀測(cè)試顯示,當(dāng)3,4-乙撐二氧噻吩(EDOT)單體為0.01mol, HA為0.05g,過(guò)硫酸銨(APS)為0.015mol,反應(yīng)時(shí)間為24h,制備的PEDOT顆粒直徑在200-300nm范圍;當(dāng)PEDOT質(zhì)量濃度30%時(shí),制備的PEDOT/PLLA薄膜的電導(dǎo)率可達(dá)2.61×10-2s/cm;雖MTT分析電刺激后的細(xì)胞生存...
【文章頁(yè)數(shù)】:60 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
引言
1 文獻(xiàn)綜述
1.1 組織工程與導(dǎo)電聚合物
1.1.1 組織工程
1.1.2 組織工程電刺激
1.1.3 導(dǎo)電聚合物
1.2 電刺激及模型的應(yīng)用
1.2.1 ES在神經(jīng)組織工程上的應(yīng)用
1.2.2 ES及模型在組織工程中的應(yīng)用
1.2.3 ES在生物醫(yī)學(xué)方面的應(yīng)用
1.3 電刺激方式及參數(shù)
1.3.1 電刺激方式
1.3.2 電刺激參數(shù)的設(shè)定
1.4 本文選題依據(jù)及研究?jī)?nèi)容
2 PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的制備
2.1 概述
2.2 實(shí)驗(yàn)材料
2.2.1 藥品與試劑
2.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
2.3 實(shí)驗(yàn)方法
2.3.1 PEDOT的聚合
2.3.2 PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的制備
2.3.3 PEDOT顆粒及PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的性能測(cè)定
2.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與討論
2.4.1 PEDOT顆粒的表觀形貌
2.4.2 PEDOT/PLLA的表觀形貌
2.4.3 PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的電導(dǎo)率
2.5 本章小結(jié)
3 電刺激的實(shí)施及細(xì)胞行為的檢測(cè)
3.1 概述
3.2 實(shí)驗(yàn)材料與儀器
3.2.1 藥品與試劑
3.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
3.2.3 PC12細(xì)胞
3.2.4 電刺激模型
3.3 實(shí)驗(yàn)方法
3.3.1 實(shí)驗(yàn)試劑溶液的配制
3.3.2 PC12細(xì)胞培養(yǎng)
3.3.3 細(xì)胞在經(jīng)LN修飾后的PEDOT/PLLA薄膜上的接種與培養(yǎng)
3.3.4 電刺激參數(shù)
3.3.5 電刺激條件下細(xì)胞粘附生長(zhǎng)狀態(tài)觀察
3.3.6 電刺激條件下細(xì)胞生存力
3.3.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
3.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與討論
3.4.1 PC12細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)
3.4.2 電刺激條件下細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)
3.4.3 電刺激下細(xì)胞的活力
3.5 本章小結(jié)
結(jié)論
工作展望
創(chuàng)新點(diǎn)
參考文獻(xiàn)
附錄A 引文縮略詞
致謝
本文編號(hào):4038779
【文章頁(yè)數(shù)】:60 頁(yè)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
引言
1 文獻(xiàn)綜述
1.1 組織工程與導(dǎo)電聚合物
1.1.1 組織工程
1.1.2 組織工程電刺激
1.1.3 導(dǎo)電聚合物
1.2 電刺激及模型的應(yīng)用
1.2.1 ES在神經(jīng)組織工程上的應(yīng)用
1.2.2 ES及模型在組織工程中的應(yīng)用
1.2.3 ES在生物醫(yī)學(xué)方面的應(yīng)用
1.3 電刺激方式及參數(shù)
1.3.1 電刺激方式
1.3.2 電刺激參數(shù)的設(shè)定
1.4 本文選題依據(jù)及研究?jī)?nèi)容
2 PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的制備
2.1 概述
2.2 實(shí)驗(yàn)材料
2.2.1 藥品與試劑
2.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
2.3 實(shí)驗(yàn)方法
2.3.1 PEDOT的聚合
2.3.2 PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的制備
2.3.3 PEDOT顆粒及PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的性能測(cè)定
2.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與討論
2.4.1 PEDOT顆粒的表觀形貌
2.4.2 PEDOT/PLLA的表觀形貌
2.4.3 PEDOT/PLLA復(fù)合薄膜的電導(dǎo)率
2.5 本章小結(jié)
3 電刺激的實(shí)施及細(xì)胞行為的檢測(cè)
3.1 概述
3.2 實(shí)驗(yàn)材料與儀器
3.2.1 藥品與試劑
3.2.2 實(shí)驗(yàn)儀器與設(shè)備
3.2.3 PC12細(xì)胞
3.2.4 電刺激模型
3.3 實(shí)驗(yàn)方法
3.3.1 實(shí)驗(yàn)試劑溶液的配制
3.3.2 PC12細(xì)胞培養(yǎng)
3.3.3 細(xì)胞在經(jīng)LN修飾后的PEDOT/PLLA薄膜上的接種與培養(yǎng)
3.3.4 電刺激參數(shù)
3.3.5 電刺激條件下細(xì)胞粘附生長(zhǎng)狀態(tài)觀察
3.3.6 電刺激條件下細(xì)胞生存力
3.3.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
3.4 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與討論
3.4.1 PC12細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)
3.4.2 電刺激條件下細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)
3.4.3 電刺激下細(xì)胞的活力
3.5 本章小結(jié)
結(jié)論
工作展望
創(chuàng)新點(diǎn)
參考文獻(xiàn)
附錄A 引文縮略詞
致謝
本文編號(hào):4038779
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