本文選題：肝臟　切入點：缺血再灌注損傷　出處：《吉林大學(xué)》2014年博士論文

【摘要】：目的： 研究肝臟組織缺血再灌注損傷之后肝細胞及肝組織內(nèi)血管內(nèi)皮表面蛋白多糖復(fù)合物的損傷程度及機制，以及七氟醚預(yù)處理對二者的影響。 材料與方法： 本研究采用35只雌性大鼠隨機分為5組，分別為A組氯胺酮對照組(Ket對照組)，B組氯胺酮實驗組（Ket實驗組），C組七氟醚對照組（Sev對照組），D組七氟醚實驗組（Sev實驗組），E組七氟醚加氫化可的松組（Sev+氫可組）。按不同組別分別使用氯胺酮和七氟醚麻醉后，對照組不給予缺血處理，實驗組及七氟醚加氫化可的松組將肝臟給予45分鐘暖缺血處理，分別從各組大鼠股靜脈抽取1ml靜脈血標本之后，將各組肝臟離體，再將事先配制好的灌注液以30ml/h的速度進行灌注。灌注期內(nèi)分別于0~2.5分鐘，5~7.5分鐘，，15~17.5分鐘，35~37.5分鐘，收集流出液標本，分別將所收集標本放置于-20℃冰箱中保存。采用酶聯(lián)免疫吸附測定（ELESA）法檢測標本中的硫酸乙酰肝素、蛋白聚糖-1、透明質(zhì)酸的濃度；使用全自動化學(xué)分析儀檢測樣本中AST、ALT的含量；分別使用光學(xué)顯微鏡及電子顯微鏡觀察不同組別肝組織血管內(nèi)皮表面蛋白多糖復(fù)合物的脫落情況。 結(jié)果： 1.缺血再灌注損傷可以使肝細胞的破壞明顯增加，流出液中AST、ALT含量明顯增加；七氟醚及七氟醚加氫化可的松能減輕肝臟缺血再灌注損傷引起的肝細胞破壞，減少流出液中AST、ALT的含量，且這種保護作用以七氟醚加氫化可的松更加明顯。 2.缺血再灌注損傷可以導(dǎo)致肝血管內(nèi)皮蛋白多糖復(fù)合物的脫落，使流出液中硫酸乙酰肝素、蛋白聚糖-1、透明質(zhì)酸的含量明顯增加，血管內(nèi)皮結(jié)構(gòu)變��；七氟醚及七氟醚加氫化可的松能能減輕肝臟缺血再灌注損傷引起的肝血管內(nèi)皮蛋白多糖復(fù)合物的脫落，減少流出液中硫酸乙酰肝素、蛋白聚糖-1、透明質(zhì)酸的含量，且這種保護作用以七氟醚加氫化可的松更加明顯。 結(jié)論： 1.七氟醚及七氟醚加氫化可的松的預(yù)處理可以明顯減少肝缺血再灌注損傷之后肝細胞的破壞。 2.七氟醚及七氟醚加氫化可的松的預(yù)處理可以明顯減少肝缺血再灌注損傷之后肝血管內(nèi)皮細胞表面蛋白多糖復(fù)合物的脫落。
[Abstract]:Objective:. To study the damage degree and mechanism of vascular endothelial proteoglycan complex in liver cells and liver tissues after ischemia reperfusion injury and the effect of sevoflurane pretreatment on them. Materials and methods:. In this study, 35 female rats were randomly divided into 5 groups. Group A, ketamine control group, Ket control group, Ket control group, ketamine experimental group, Ket experimental group, Ket experimental group, sevoflurane control group, sev control group, sevoflurane control group, sevoflurane experimental group, sevoflurane group, sevoflurane group, seflurane group, sevoflurane group and hydrocortisone group. After anesthesia with ketamine and sevoflurane respectively, The experimental group and the sevoflurane plus hydrocortisone group were treated with warm ischemia for 45 minutes. The 1ml venous blood samples were extracted from the femoral vein of the rats in each group, and the liver of each group was isolated. The pre-prepared perfusion solution was perfused at the rate of 30ml/h. During the perfusion period, the effluent samples were collected at 0 ~ 2.5 min, 57.5 min, 157.5 min, 17.5 min, 35 min, 37.5 min, respectively. The collected samples were stored in a refrigerator at -20 鈩

本文編號：1695787