非洲豬瘟病毒LFD-RPA快速檢測(cè)方法的建立
發(fā)布時(shí)間:2021-08-07 07:02
本研究根據(jù)非洲豬瘟病毒(ASFV)B646L基因保守序列設(shè)計(jì)nfo RPA特異性引物和探針,建立了ASFV核酸LFD-RPA快速檢測(cè)法。結(jié)果表明,該方法特異性強(qiáng),與豬圓環(huán)病毒2型(PCV2)、豬瘟病毒(CSFV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、口蹄疫病毒(FMDV)、豬A型塞內(nèi)卡病毒(SVA)等病原核酸無交叉反應(yīng);最低可以檢測(cè)到1.57×102copies/μL重組質(zhì)粒pUC-B646L;檢測(cè)時(shí)間短,其中RPA擴(kuò)增20 min,LFD檢測(cè)10~20 min。應(yīng)用該法及OIE推薦的熒光PCR法對(duì)24個(gè)模擬樣品進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果一致。對(duì)50份已知的臨床樣品核酸進(jìn)行檢測(cè),陽性符合率為73.3%。上述結(jié)果表明,本研究建立的LFD-RPA快速檢測(cè)方法操作簡(jiǎn)便,為ASFV現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)提供了技術(shù)支持。
【文章來源】:中國(guó)獸醫(yī)科學(xué). 2020,50(08)北大核心CSCD
【文章頁數(shù)】:5 頁
【部分圖文】:
不同引物組合的PCR擴(kuò)增結(jié)果
LFD-RPA特異性檢測(cè)結(jié)果
酸和35份陰性核酸共50份臨床樣品核酸進(jìn)行檢測(cè),以驗(yàn)證該法與熒光PCR法的符合率。2結(jié)果2.1引物的篩選對(duì)設(shè)計(jì)合成的3條正向引物和3條反向引物采用普通PCR法進(jìn)行篩選,結(jié)果表明,9種引物組合均出現(xiàn)擴(kuò)增條帶,其中引物組合F1/R3擴(kuò)增條帶最清晰(圖1),擴(kuò)增片段大小約216bp,與預(yù)期相符,可用于后續(xù)試驗(yàn)。采用的引物及探針序列見表1。2.2LFD-RPA反應(yīng)體系的建立設(shè)定反應(yīng)溫度分別為37℃、38℃、39℃、40℃、41℃、42℃,LFD-RPA檢測(cè)結(jié)果顯示,上述反應(yīng)溫度條件下均可觀察到陽性檢測(cè)線,其中39℃時(shí)條帶顏色相對(duì)較清晰(圖2),確定最佳反應(yīng)條件為39℃孵育20min。2.3LFD-RPA特異性試驗(yàn)分別以重組質(zhì)粒pUC-B646L以及ASFV、PCV2、CSFV、PRRSV、FMDV、SVA核酸為模板進(jìn)行LFD-RPA檢測(cè),結(jié)果(圖3)顯示,只有陽性質(zhì)粒pUC-B646L和ASFVDNA檢測(cè)線和控制線均出現(xiàn)條帶,判為陽性;而其他核酸模板及陰性對(duì)照、水對(duì)照僅控制線有條帶,檢測(cè)線無條帶,判為陰性。結(jié)果表明,所建立的方法可以特異性檢測(cè)ASFVDNA,與PCV2、CSFV、PRRSV、FMDV、SVA等病原核酸無交叉反應(yīng)。2.4LFD-RPA靈敏度試驗(yàn)將重組質(zhì)粒pUC-B646L進(jìn)行10倍稀釋,分別以10-3~10-9稀釋度pUC-B646L為模板進(jìn)行LFD-RPA檢測(cè),結(jié)果顯示,所建立方法可檢測(cè)的最低限為10-7稀釋度,對(duì)應(yīng)濃度為1.57×102copies/L(圖4);而實(shí)時(shí)熒光PCR法檢測(cè)低限為10-9稀釋度(圖5),比所建立的LFD-RPA法靈敏度高100倍。2.5模擬樣品及臨床樣品的核酸檢測(cè)分別采用LFD-RPA和實(shí)時(shí)熒光PCR對(duì)24份模擬樣品(18份陽性、6份陰性)進(jìn)行檢測(cè),所建立的LFD-RPA方法檢測(cè)結(jié)果與實(shí)時(shí)熒光PCR完全一致,可準(zhǔn)確檢測(cè)到其中18份模擬陽性樣品。此外,用所建立方法對(duì)50份已知的臨床樣品核酸進(jìn)行檢測(cè),?
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]非洲豬瘟病毒熒光RPA快速檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用[J]. 林彥星,曹琛福,曾少靈,花群俊,楊俊興,黃超華,史衛(wèi)軍,花群義. 中國(guó)獸醫(yī)科學(xué). 2019(09)
[2]非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(RPA)檢測(cè)方法的建立[J]. 哈登楚日亞,樊曉旭,趙永剛,王淑娟,張志誠(chéng),戈勝強(qiáng),李林,吳曉東,王志亮. 中國(guó)畜牧獸醫(yī). 2017(11)
[3]非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光RPA快速檢測(cè)方法的建立[J]. 李林,劉拂曉,樊曉旭,李金明,鄒艷麗,劉珊,包靜月,吳曉東,王志亮. 中國(guó)動(dòng)物檢疫. 2017(08)
[4]非洲豬瘟病毒RPA等溫檢測(cè)方法的建立[J]. 王建昌,王金鳳,劉立兵,孫曉霞,袁萬哲. 中國(guó)動(dòng)物檢疫. 2016(07)
本文編號(hào):3327318
【文章來源】:中國(guó)獸醫(yī)科學(xué). 2020,50(08)北大核心CSCD
【文章頁數(shù)】:5 頁
【部分圖文】:
不同引物組合的PCR擴(kuò)增結(jié)果
LFD-RPA特異性檢測(cè)結(jié)果
酸和35份陰性核酸共50份臨床樣品核酸進(jìn)行檢測(cè),以驗(yàn)證該法與熒光PCR法的符合率。2結(jié)果2.1引物的篩選對(duì)設(shè)計(jì)合成的3條正向引物和3條反向引物采用普通PCR法進(jìn)行篩選,結(jié)果表明,9種引物組合均出現(xiàn)擴(kuò)增條帶,其中引物組合F1/R3擴(kuò)增條帶最清晰(圖1),擴(kuò)增片段大小約216bp,與預(yù)期相符,可用于后續(xù)試驗(yàn)。采用的引物及探針序列見表1。2.2LFD-RPA反應(yīng)體系的建立設(shè)定反應(yīng)溫度分別為37℃、38℃、39℃、40℃、41℃、42℃,LFD-RPA檢測(cè)結(jié)果顯示,上述反應(yīng)溫度條件下均可觀察到陽性檢測(cè)線,其中39℃時(shí)條帶顏色相對(duì)較清晰(圖2),確定最佳反應(yīng)條件為39℃孵育20min。2.3LFD-RPA特異性試驗(yàn)分別以重組質(zhì)粒pUC-B646L以及ASFV、PCV2、CSFV、PRRSV、FMDV、SVA核酸為模板進(jìn)行LFD-RPA檢測(cè),結(jié)果(圖3)顯示,只有陽性質(zhì)粒pUC-B646L和ASFVDNA檢測(cè)線和控制線均出現(xiàn)條帶,判為陽性;而其他核酸模板及陰性對(duì)照、水對(duì)照僅控制線有條帶,檢測(cè)線無條帶,判為陰性。結(jié)果表明,所建立的方法可以特異性檢測(cè)ASFVDNA,與PCV2、CSFV、PRRSV、FMDV、SVA等病原核酸無交叉反應(yīng)。2.4LFD-RPA靈敏度試驗(yàn)將重組質(zhì)粒pUC-B646L進(jìn)行10倍稀釋,分別以10-3~10-9稀釋度pUC-B646L為模板進(jìn)行LFD-RPA檢測(cè),結(jié)果顯示,所建立方法可檢測(cè)的最低限為10-7稀釋度,對(duì)應(yīng)濃度為1.57×102copies/L(圖4);而實(shí)時(shí)熒光PCR法檢測(cè)低限為10-9稀釋度(圖5),比所建立的LFD-RPA法靈敏度高100倍。2.5模擬樣品及臨床樣品的核酸檢測(cè)分別采用LFD-RPA和實(shí)時(shí)熒光PCR對(duì)24份模擬樣品(18份陽性、6份陰性)進(jìn)行檢測(cè),所建立的LFD-RPA方法檢測(cè)結(jié)果與實(shí)時(shí)熒光PCR完全一致,可準(zhǔn)確檢測(cè)到其中18份模擬陽性樣品。此外,用所建立方法對(duì)50份已知的臨床樣品核酸進(jìn)行檢測(cè),?
【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
[1]非洲豬瘟病毒熒光RPA快速檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用[J]. 林彥星,曹琛福,曾少靈,花群俊,楊俊興,黃超華,史衛(wèi)軍,花群義. 中國(guó)獸醫(yī)科學(xué). 2019(09)
[2]非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(RPA)檢測(cè)方法的建立[J]. 哈登楚日亞,樊曉旭,趙永剛,王淑娟,張志誠(chéng),戈勝強(qiáng),李林,吳曉東,王志亮. 中國(guó)畜牧獸醫(yī). 2017(11)
[3]非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光RPA快速檢測(cè)方法的建立[J]. 李林,劉拂曉,樊曉旭,李金明,鄒艷麗,劉珊,包靜月,吳曉東,王志亮. 中國(guó)動(dòng)物檢疫. 2017(08)
[4]非洲豬瘟病毒RPA等溫檢測(cè)方法的建立[J]. 王建昌,王金鳳,劉立兵,孫曉霞,袁萬哲. 中國(guó)動(dòng)物檢疫. 2016(07)
本文編號(hào):3327318
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