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布魯氏菌免疫磁珠qPCR檢測方法的建立及應(yīng)用

發(fā)布時間:2021-06-14 06:51
  為建立高效、快速和準(zhǔn)確檢測布魯氏菌病原的免疫磁珠qPCR方法,本研究根據(jù)GenBank已經(jīng)發(fā)表的布魯氏菌流產(chǎn)株BRS 19 ku外膜蛋白(Omp19)基因組序列來設(shè)計qPCR方法所需要的引物和探針,利用免疫磁珠富集濃縮樣品中少量的布魯氏菌病原,建立了布魯氏菌免疫磁珠qPCR檢測方法。采用qPCR方法對免疫磁珠分離的布魯氏菌的敏感性、特異性、穩(wěn)定性及臨床應(yīng)用進(jìn)行了研究。結(jié)果顯示,免疫磁珠qPCR方法檢測布魯氏菌的最低檢測限為1×103CFU/mL。該方法可以擴(kuò)增不同種型布魯氏菌,對其他細(xì)菌沒有發(fā)生交叉反應(yīng)。該方法的批內(nèi)和批間的變異系數(shù)均低于10%,具有較高穩(wěn)定性。免疫磁珠qPCR方法與常規(guī)qPCR的符合率為94.74%,具有良好的吻合性。上述結(jié)果表明,本研究建立的免疫磁珠qPCR方法檢測布魯氏菌具有較高的敏感性、特異性和穩(wěn)定性,為布魯氏菌病的準(zhǔn)確診斷檢測和流行病學(xué)調(diào)查提供技術(shù)支撐。 

【文章來源】:中國獸醫(yī)科學(xué). 2020,50(10)北大核心CSCD

【文章頁數(shù)】:6 頁

【部分圖文】:

布魯氏菌免疫磁珠qPCR檢測方法的建立及應(yīng)用


布魯氏菌單克隆抗體純化的SDS-PAGE分析

方法,疫苗,布魯氏菌,單克隆抗體


中國獸醫(yī)科學(xué)第50卷圖2免疫磁珠qPCR方法的特異性檢測Figure2SpecificresultsofimmunomagneticbeadqPCRmethodS1:M5疫苗;S2:A19疫苗;S3:S2疫苗;S4:大腸桿菌;S5:小腸耶爾森氏菌;S6:金黃色葡萄球菌;S7:沙門菌。S1:M5vaccine;S2:A19vaccine;S3:S2vaccine;S4:E.coli;S5:Y.ente-rocolitica;S6:S.aureus;S7:Salmonel.圖3免疫磁珠qPCR方法的敏感性檢測Figure3SensitivitytestofimmunomagneticbeadqPCRmethod圖1布魯氏菌單克隆抗體純化的SDS-PAGE分析Figure1SDS-PAGEanalysisofBrucellamonoclonalanti-bodypurificationM:蛋白分子質(zhì)量Marker;1~2:流穿液;3~5:洗滌液;6~8:純化后布魯氏菌單克隆抗體。M:ProteinmolecularweightMarker;1—2:Flowthroughsolution;3—5:Washingsolution;6—8:PurifiedBrucellamonoclonalantibody.次和3個不同批次的免疫磁珠qPCR方法進(jìn)行重復(fù)性試驗,每份樣品做3次重復(fù),以評價該方法的重復(fù)性。1.11免疫磁珠qPCR方法的臨床應(yīng)用用建立的免疫磁珠qPCR方法對田間采集95份病原學(xué)樣品(棉拭子)進(jìn)行檢測,與常規(guī)qPCR方法[11]的實驗結(jié)果相比較,按照符合率的計算公式得出的結(jié)果,以評價該方法的臨床應(yīng)用價值。2結(jié)果2.1布魯氏菌單克隆抗體純化選取流穿液樣品、洗滌液樣品和洗脫液樣品進(jìn)行SDS-PAGE鑒定純化效果,其結(jié)果純化后基本上無雜蛋白,布魯氏菌單克隆抗體得到較好的純化(見圖1)。2.2免疫磁珠qPCR方法的特異性檢測免疫磁珠qPCR方法對M5疫苗、A19疫苗和S2疫苗檢測結(jié)果為陽性,說明該方法可用于多

敏感性,方法,濃度,疫苗


中國獸醫(yī)科學(xué)第50卷圖2免疫磁珠qPCR方法的特異性檢測Figure2SpecificresultsofimmunomagneticbeadqPCRmethodS1:M5疫苗;S2:A19疫苗;S3:S2疫苗;S4:大腸桿菌;S5:小腸耶爾森氏菌;S6:金黃色葡萄球菌;S7:沙門菌。S1:M5vaccine;S2:A19vaccine;S3:S2vaccine;S4:E.coli;S5:Y.ente-rocolitica;S6:S.aureus;S7:Salmonel.圖3免疫磁珠qPCR方法的敏感性檢測Figure3SensitivitytestofimmunomagneticbeadqPCRmethod圖1布魯氏菌單克隆抗體純化的SDS-PAGE分析Figure1SDS-PAGEanalysisofBrucellamonoclonalanti-bodypurificationM:蛋白分子質(zhì)量Marker;1~2:流穿液;3~5:洗滌液;6~8:純化后布魯氏菌單克隆抗體。M:ProteinmolecularweightMarker;1—2:Flowthroughsolution;3—5:Washingsolution;6—8:PurifiedBrucellamonoclonalantibody.次和3個不同批次的免疫磁珠qPCR方法進(jìn)行重復(fù)性試驗,每份樣品做3次重復(fù),以評價該方法的重復(fù)性。1.11免疫磁珠qPCR方法的臨床應(yīng)用用建立的免疫磁珠qPCR方法對田間采集95份病原學(xué)樣品(棉拭子)進(jìn)行檢測,與常規(guī)qPCR方法[11]的實驗結(jié)果相比較,按照符合率的計算公式得出的結(jié)果,以評價該方法的臨床應(yīng)用價值。2結(jié)果2.1布魯氏菌單克隆抗體純化選取流穿液樣品、洗滌液樣品和洗脫液樣品進(jìn)行SDS-PAGE鑒定純化效果,其結(jié)果純化后基本上無雜蛋白,布魯氏菌單克隆抗體得到較好的純化(見圖1)。2.2免疫磁珠qPCR方法的特異性檢測免疫磁珠qPCR方法對M5疫苗、A19疫苗和S2疫苗檢測結(jié)果為陽性,說明該方法可用于多

【參考文獻(xiàn)】:
期刊論文
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[3]免疫磁珠-PCR試紙條快速檢測食品中牛源成分方法的建立[J]. 趙良娟,李宗夢,王淞,張宏偉,鄭文杰.  食品研究與開發(fā). 2018(03)
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碩士論文
[1]基于免疫磁珠—PCR的單增李斯特菌檢測方法的建立及p60單鏈抗體的制備[D]. 韓笑.山東農(nóng)業(yè)大學(xué) 2018
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本文編號:3229296

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