本試驗(yàn)旨在研究飼糧中添加殼聚糖對仔鵝生長性能、屠宰性能、養(yǎng)分利用及腸道發(fā)育、腸道微生物組成等的影響,以確定仔鵝飼糧中殼聚糖適宜添加量,并初步探討其作用機(jī)理。選取360只14日齡健康、體重相近的揚(yáng)州鵝公鵝,隨機(jī)分為5個(gè)組,每組6個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)12只鵝。對照組(A組)飼喂基礎(chǔ)飼糧,試驗(yàn)組(B、C、D、E)分別飼喂添加 250 mg/kg、500 mg/kg、1000 mg/kg、2000 mg/kg殼聚糖的試驗(yàn)飼糧,試驗(yàn)期56 d。從殼聚糖對仔鵝生長性能、屠宰性能、營養(yǎng)物質(zhì)的利用、腸道發(fā)育、腸道微生物等方面的影響來探討其應(yīng)用效果,并篩選出添加效果較好的劑量。試驗(yàn)結(jié)果表明:1.飼糧添加500 mg/kg殼聚糖顯著提高42、56和70日齡仔鵝體重,各階段平均日采食量、平均日增重(P0.05),顯著降低各階段料重比(P0.05)。添加1000mg/kg和2000mg/kg殼聚糖時(shí),仔鵝體重、平均日采食量、日增重呈下降趨勢(P0.05),同時(shí)料重比升高(P0.05)。2.飼糧添加500 mg/kg殼聚糖顯著提高仔鵝心臟指數(shù)、肝臟指數(shù)、脾臟指數(shù)、空腸指數(shù)、回腸指數(shù)和盲腸指數(shù)(P0.05),降低腹脂率和肌肉中脂肪含量(P0.05)。3.飼糧添加250、500mg/kg殼聚糖組粗脂肪表觀利用率顯著高于試驗(yàn)2000 mg/kg組(P0.05),同時(shí)干物質(zhì)表觀利用率顯著高于對照組(P0.05)。4.飼糧添加500mg/kg殼聚糖顯著提高各腸段長度和重量,并顯著提高十二指腸、空腸及回腸的絨毛高度、肌層厚度,降低隱窩深度(P0.05),而添加1000和2000 mg/kg殼聚糖時(shí),十二指腸、空腸及回腸絨毛長度變短、隱窩深度升高(P0.05)。5.添加500mg/kg殼聚糖增加腸道微生物區(qū)系中厚壁菌門、鏈球菌屬、消化球菌屬、瘤胃球菌屬的相對豐度,降低擬桿菌門、變形菌門、巨單胞菌屬的相對豐度。添加500 mg/kg殼聚糖與對照組物種相似性較低,隨著添加劑量的增加(1000、2000 mg/kg)與對照組菌群相似性較高,達(dá)到0.34。綜上所述,飼糧中殼聚糖使用量為250mg/kg、500mg/kg,顯著提高仔鵝平均日采食量、平均日增重,飼料干物質(zhì)和粗脂肪利用率以及各腸段長度重量,并顯著降低仔鵝腹脂率,同時(shí)增加有益菌數(shù)量,尤以添加500 mg/kg的結(jié)果較為顯著;當(dāng)飼糧中殼聚糖使用量為1000mg/kg、2000mg/kg,仔鵝生長發(fā)育遲緩,腹脂率和有害菌數(shù)量增加。綜合本試驗(yàn)研究結(jié)果,建議仔鵝生產(chǎn)應(yīng)用中殼聚糖使用量為 500 mg/kg。
【學(xué)位單位】：揚(yáng)州大學(xué)
【學(xué)位級別】：碩士
【學(xué)位年份】：2018
【中圖分類】：S835.5
【部分圖文】：

２．１基因組ＤＮＡ提取結(jié)果??按照上述方法提取腸道微生物總ＤＮＡ，并用ＤＮＡ定量儀測定其濃度，１％??的瓊脂糖電泳檢測結(jié)果如圖５－１所示，得到的目的片段大小在２０００ｂｐ左右，且??Ａ、Ｃ、Ｅ組ＤＮＡ的含量較高，完整性保存較好。Ｅ組呈現(xiàn)拖尾現(xiàn)象，說明有部??分ＤＮＡ降解，但降解程度較小。??圖５－丨菌群總ＤＮＡ瓊脂糖電泳??備注：１－Ａ１?２－Ａ２?３－Ａ３?４－Ｂ１?５－Ｂ２?６－Ｂ３?７－Ｃ１?８－Ｃ２?９－Ｃ３??１０－Ｄ１?１１－Ｄ２?１２－Ｄ３?１３－Ｅｌ?１４－Ｅ２?１５－Ｅ３??２．２?ＰＣＲ擴(kuò)增結(jié)果??微生物總的ＤＮＡ經(jīng)１６ＳｒＲＮＡＶ３區(qū)引物擴(kuò)增后采用２％濃度的瓊脂糖凝膠??進(jìn)行電泳檢測，結(jié)果如圖５－２所示，擴(kuò)增效果較好，均可得到約１５０?ｂｐ的ＰＣＲ??產(chǎn)物，可以用于后續(xù)分析。??

為研宄樣品的物種組成多樣性，對所有樣品的有效序列進(jìn)行聚類分析，以??９７％的一致性將序列聚類成為ＯＴＵｓ，然后對ＯＴＵｓ的代表序列進(jìn)行物種注釋。??如圖５－３所示，所有樣品共得到２７３３６０序列，其中Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ組總序列??即為有效序列分別為６１０５８．、４４９３６、５８７０６、６３２０３、４５４５７用于０ＴＵ聚類后續(xù)??分析；分類的Ｔａｇｓ數(shù)目分別為５８２７７、４３２３５、５６９８６、６００７２、４３７５１可用于構(gòu)??建ＯＴＵｓ并獲得注釋信息；每個(gè)腸道樣品的ＯＴＵ數(shù)目表現(xiàn)出較高的豐度和多樣??性，所有樣品得到共得到５０３４個(gè)ＯＴＵｓ，單個(gè)樣品得到的ＯＴＵｓ數(shù)目分別為９０８、??１３１８、１０４２、８５８、９１８；特殊序列頻數(shù)為１，無法被聚類到ＯＴＵｓ，不用于后續(xù)??分析。??７００００??ｍｍ?ｍ?圓圍？??ＳＩＫＤ０?ＩＩ?ｐｉ?？怠序列教??Ｍ?■〇〇?＿丨?■分類序列??列?ＩＩ?ＩＩ?ＩＩ?ＩＩ?ＩＩ?數(shù)??＾?３００００?ＩＩ?ＩＩ?ＩＢ?＊?鐘＿??ｍｍ?ＩＩ?＾?ｉ?＊．ｏ；ｕ教??－Ｉ?Ｉ?Ｉ?Ｉ?Ｉ??Ａ?Ｂ?Ｃ?Ｄ?Ｅ??圖５－３樣品序列與ＯＴＵ數(shù)目統(tǒng)計(jì)??２．４物種分布??

：ｉｉ：）ｙ?；：?：；ｂ＾??圖５－２菌群１６ｓ?ｒＲＮＡ?Ｖ３區(qū)ＰＣＲ擴(kuò)增??備注：１－Ａ１?２－Ａ２?３－Ａ３?４－Ｂ１?５－Ｂ２?６－Ｂ３?７－Ｃ１?８－Ｃ２?９－Ｃ３??１０－Ｄ１?１１－Ｄ２?１２－Ｄ３?１３－Ｅｌ?１４－Ｅ２?１５－Ｅ３??２．３測序收獲水平??為研宄樣品的物種組成多樣性，對所有樣品的有效序列進(jìn)行聚類分析，以??９７％的一致性將序列聚類成為ＯＴＵｓ，然后對ＯＴＵｓ的代表序列進(jìn)行物種注釋。??如圖５－３所示，所有樣品共得到２７３３６０序列，其中Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ組總序列??即為有效序列分別為６１０５８．、４４９３６、５８７０６、６３２０３、４５４５７用于０ＴＵ聚類后續(xù)??分析；分類的Ｔａｇｓ數(shù)目分別為５８２７７、４３２３５、５６９８６、６００７２、４３７５１可用于構(gòu)??建ＯＴＵｓ并獲得注釋信息；每個(gè)腸道樣品的ＯＴＵ數(shù)目表現(xiàn)出較高的豐度和多樣??性，所有樣品得到共得到５０３４個(gè)ＯＴＵｓ，單個(gè)樣品得到的ＯＴＵｓ數(shù)目分別為９０８、??１３１８、１０４２、８５８、９１８；特殊序列頻數(shù)為１，無法被聚類到ＯＴＵｓ，不用于后續(xù)??分析。??７００００??ｍｍ?ｍ?圓圍？??ＳＩＫＤ０?ＩＩ?ｐｉ?？怠序列教??Ｍ?■〇〇?＿丨?
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本文編號：2848266