銅對大鼠腦微血管內(nèi)皮細胞的氧化應(yīng)激損傷
【圖文】:
線的回歸方程得到細胞數(shù),細胞活力=(試驗組細胞數(shù)/對照組細胞數(shù))×100%。1.5氧化應(yīng)激指標(biāo)的檢測BMEC經(jīng)不同濃度的CuCl2處理12h后,進行消化收集和超聲破碎,用BCA法測定蛋白濃度,余下按SOD、CAT、NOS分型試劑盒說明書操作檢測。1.6統(tǒng)計學(xué)分析數(shù)據(jù)用x—±s表示,應(yīng)用SPSS軟件對數(shù)據(jù)進行單因素方差統(tǒng)計分析。2結(jié)果2.1原代培養(yǎng)BMEC免疫熒光鑒定結(jié)果見圖1,Ⅷ因子陽性細胞百分數(shù)達到98%。圖1原代培養(yǎng)BMEC免疫熒光鑒定圖(100×)A.明場視野;B.FITC標(biāo)記的Ⅷ因子抗體在胞質(zhì)呈綠色熒光;C.DAPI襯染的胞核呈藍色熒光;D.同一視野熒光雙標(biāo)合并145中國獸醫(yī)學(xué)報2017年1月第37卷第1期ChinJVetSciJan.2017Vol.37No.1
2.2銅對BMEC細胞活力的影響以細胞數(shù)目為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),,求得回歸方程y=7×10-6x+0.19(R2=0.990)。經(jīng)不同濃度的CuCl2處理后的BMEC存活率變化見圖3,與對照組相比,隨著銅濃度的升高,BMEC的存活率均極顯著降低(P<0.01),且整體呈下降趨勢。圖2BMEC-MTS標(biāo)準(zhǔn)曲線圖3BMEC的細胞活力變化(n=4,**示與對照組相比P<0.01)2.3銅對BMEC氧化應(yīng)激的影響經(jīng)不同濃度的CuCl2處理12h后,BMEC的SOD活力、CAT活力和iNOS活力變化見表1。隨著Cu2+濃度的升高,與對照組相比,細胞內(nèi)SOD活力在60μmol/L和120μmol/L濃度組均顯著升高(P<0.05),隨后均顯著降低(P<0.05),細胞內(nèi)CAT活力均顯著降低(P<0.01),細胞內(nèi)iNOS活力均顯著升高(P<0.05)。表1不同銅濃度對BMEC氧化應(yīng)激的影響(n=4)U/mg組別SODCATiNOS對照組86.04±3.80143.74±4.747.78±0.1430μmol/LCu2+88.30±1.79126.38±8.08**7.97±0.11*60μmol/LCu2+93.76±3.28*101.04±8.37**8.31±0.24**120μmol/LCu2+100.22±6.10**104.57±7.41**8.36±0.25**1
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本文編號:2570933
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