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利用Gateway技術構建組織特異啟動子及在誘導型多能干細胞分化研究中的應用

發(fā)布時間:2018-10-18 17:22
【摘要】:胚胎干細胞是來源于早期胚胎內(nèi)細胞團(Inner cell mass,ICM)或桑椹胚的一種多潛能細胞[1],能在體外自我更新,在適當?shù)臈l件下可以分化為成體的各種類型的組織細胞[2],是當前生物學研究的熱點,在發(fā)育生物學、遺傳學、毒理學和藥物篩選研究等領域中發(fā)揮著日益重要的作用[3]。2007年底,日本和美國兩個科研小組應用病毒將Oct4、Sox2、c-Myc和Klf4[4](或者是Nanog和Lin28[5])四個基因轉導至人的成纖維細胞,使其逆向分化為具有胚胎干細胞特性的多潛能干細胞,即為誘導的多潛能干細胞(iPSCs細胞,induced pluripotent stemcells)[6-8]。iPSCs細胞具有和胚胎干細胞類似的生物學特性,通過這個技術建立病人特異的胚胎干細胞系,可以徹底的解決細胞治療中的免疫排斥問題,而且繞開了胚胎干細胞研究一直面臨的倫理和法律等諸多障礙,為疾病發(fā)生發(fā)展的機理研究、疾病特異性藥物的篩選和細胞移植治療提供了很好的研究模型。胚胎干細胞以無限增殖能力和全能性等優(yōu)點,為組織工程種子細胞的重要潛在來源[5]。α平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscle actin,αSMA)是細胞內(nèi)六種肌動蛋白亞類之一,在所有真核細胞中的表達都高度保守[6]。編碼它的基因是相對局限于在血管平滑肌細胞中表達的少數(shù)幾個基因之一,公認是血管平滑肌細胞表型轉化的標志[7]。 大量的實驗證明胚胎干細胞可以特異分化三胚層的細胞類型,為將來的細胞替代治療帶來了希望。然而,目前的胚胎干細胞分化研究都存在一個問題:難于純化目標細胞群。解決的方法主要有以下兩種,例如使用目的細胞特異抗體標記的方法,或者構建組織細胞特異啟動子攜帶報告基因的載體轉染細胞(分化以后所得到的目的細胞會帶有報告基因),最終都可以通過流式細胞分選技術收集目的細胞。后者較前者還具有優(yōu)勢,就是將攜帶報告基因的細胞移植到體內(nèi)后,能夠方便的觀察細胞在體內(nèi)的遷移、分化以及對移植效率進行有效的評估,為移植治療的研究提供了有力的工具,同時利用這種細胞可以進行體外的藥理、毒理和化學生物學等方面的研究。 轉基因就是將外源基因導入生物體或者細胞內(nèi),使宿主的遺傳性狀發(fā)生改變。通過轉基因技術使干細胞攜帶標記基因,可以在體內(nèi)實驗中作為示蹤劑對移植的細胞進行跟蹤;體外實驗中,標記基因便于干細胞的觀察。鑒于胚胎干細胞和轉基因技術的重要性,因此,如何能將外源基因高效地轉入胚胎干細胞并能在不影響其生物學特性的情況下持續(xù)穩(wěn)定表達就顯得十分必要。目前,胚胎干細胞的轉基因方法有很多種[9],包括物理方法(如電穿孔[10])、化學方法(如Lipofectamine2000[11])和病毒轉導[12]等三大類。由于胚胎干細胞呈克隆狀生長,生長環(huán)境比較復雜,通過傳統(tǒng)的轉基因方法很難獲得表達外源基因的均一性細胞群體,較理想的方法多是通過慢病毒載體介導而完成的。傳統(tǒng)的慢病毒質粒構建技術需要進行酶切、連接等過程,操作繁瑣復雜。近年來有科學家建立了一種更為靈活通用的克隆方法—Gateway技術,Gateway技術是利用λ噬菌體特異性結合位點,在Clonase的作用下整合到宿主E.coli的基因組中的一種新的通用型克隆技術[13]。利用Gateway技術構建慢病毒載體,只需要在目的基因兩端加上特異性的15bp大小的att結合位點,通過兩種Clonase作用下的BP和LR結合反應,即可將目的基因導入載體中,其整合率可達到100%。而且去除了酶切、連接過程,可以避免假陽性的出現(xiàn)。因其操作方便,Gateway技術近年來在基因工程中的應用已越來越廣泛[14]。 有鑒于此,本實驗的主要研究思路是,本研究先構建攜帶小鼠αSMA和αMHC基因啟動子的報告基因載體,然后以人誘導型多能干細胞為模型,經(jīng)誘導分化形成類胚體后,進一步添加報告基因載體,再特異性向平滑肌細胞分化,對所得到的熒光細胞進行鑒定和分析,并觀察向平滑肌細胞的分化。因此,本研究主要分為以下兩個部分: 第一部分:利用多位點Gateway技術構建系列慢病毒載體。 第二部分:攜帶組織特異啟動子的慢病毒載體轉導人誘導型多潛能細胞及其誘導分化的實驗研究。 第一部分利用多位點Gateway技術構建αSMA和αMHC基因啟動子慢病毒載體 1.1目的 利用Gateway技術構建αSMA和αMHC基因啟動子慢病毒載體,將載體質粒線性化后瞬時轉染C2C12細胞系,并且用免疫熒光染色檢測基因的表達。目的在于通過操作簡便的Gateway技術快速、高效的構建系列的慢病毒載體。 1.2方法 1.2.1利用Gateway技術中涉及到的LR結合反應,將入門克隆PDONRTM221-dTomato/PDONRTM221-hrGFP和PDONRTML4-EF1-α-R1與目的載體2K7puro進行連接,構建2K7puro/EF1-α-dTomato和2K7puro/EF1-α-hrGFP載體質粒。 1.2.2通過LR反應將pUp-αSMA和pDown-hrGFP(含att位點的hrGFP入門克隆)連接到目的載體pDEST-puromycin,得到pLVpuro/α-SMA-hrGFP的表達載體;經(jīng)PCR和測序鑒定,將載體質粒瞬時轉染C2C12細胞系,并且用免疫熒光染色檢測基因的表達。 1.3結果 1.3.1將攜帶報告基因的入門克隆pDONRTM221-reporter gene和攜帶啟動子的pDONRTML4-promoter-R1與目的載體2K7puro進行連接,成功構建pLVpuro/αSMA-hrGFP gene和pLVpuro/αMHC-hrGFP gene的表達載體,測序結果表明啟動子序列正確,將表達載體轉化入大腸桿菌后,得到單細菌克隆。 1.3.2將pLVpuro/αSMA-hrGFP gene的表達載體質粒線性化后瞬時轉染C2C12細胞系,細胞48h至72h后,hrGFP報告基因和免疫熒光檢測證實C2C12細胞內(nèi)的熒光表達。 1.4結論 1.4.1成功構建αSMA以及αMHC基因啟動子的2K7puro/promoter-reporter gene的慢病毒表達載體。 1.4.2pLVpuro/αSMA-hrGFP gene和pLVpuro/αMHC-hrGFP gene的表達載體質粒線性化后瞬時轉染C2C12細胞系,細胞48h至72h后,證實構建的報告基因載體可以反映αSMA以及αMHC基因的表達情況。 第二部分:攜帶組織特異啟動子的慢病毒載體轉導人誘導型多潛能細胞及其誘導分化的實驗研究。 2.1目的 用攜帶特異啟動子的pLVpuro/αSMA-hrGFP慢病毒載體轉導人iPSCs細胞,轉導后第7天開始使用嘌呤霉素篩選,即可獲得攜帶載體質粒的純化的人iPSCs細胞,然后加入誘導試劑促進人ES細胞向平滑肌分化,以獲得表達αSMA的綠色熒光細胞,并進行相關的鑒定分析。 2.2方法 2.2.1FSK-iPSCs細胞生物學特性的分析:對iPSCs細胞的分子標記及體內(nèi)外分化能力進行檢測。 2.2.2利用pLVpuro/αSMA-hrGFP慢病毒載體轉導hrGFP進入iPSCs細胞 2.2.3抗生素篩選純化轉導后的FSK-iPSCs細胞 2.2.4轉導pLVpuro/αSMA-hrGFP的FSK-iPSCs細胞體外分化約5天后,通過流式細胞儀分選其CD4陽性細胞后繼續(xù)向血管平滑肌細胞定向誘導分化,并觀察其熒光表達情況。 2.3結果 2.3.1FSK-iPSCs細胞生物學特性:iPS細胞表達Oct4、SSEA-1,,在體內(nèi)外可以分化為三胚層的細胞類型。 2.3.2包裝pLVpuro/αSMA-hrGFP慢病毒并轉染成功,抗生素篩選后得到陽性細胞克隆。 2.3.3轉導pLVpuro/αSMA-hrGFP的FSK-iPSCs體外分化后,通過流式細胞儀分選到CD4陽性細胞。 2.3.4分選到的CD4陽性細胞向血管平滑肌分化后,獲得表達αSMA的綠色熒光細胞。 2.4結論 2.4.1FSK-iPSCs細胞具有與人ES細胞相似的生物學特性 2.4.1成功利用pLVpuro/αSMA-hrGFP慢病毒慢病毒轉導FSK-iPSCs細胞,轉導后定向分化為血管平滑肌并表達αSMA,證實構建的報告基因載體可以反映αSMA的表達情況,為以后分化機理和移植治療的研究提供了很好的工具。
[Abstract]:......
【學位授予單位】:中山大學
【學位級別】:碩士
【學位授予年份】:2012
【分類號】:R329

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本文編號:2279850

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