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藥用真菌豬苓菌核cDNA文庫構(gòu)建及部分生物信息學分析

發(fā)布時間:2020-11-02 01:19
   豬苓[Polyporus umbellatus(Pers.)Fr.]是一種藥用真菌,具有利尿去水腫的作用;它的生長經(jīng)歷有三個階段:菌核、菌絲、子實體,其中菌核為藥用部分,本論文通過研究豬苓菌核的表達序列標簽(EST),為深入研究豬苓菌核的形成機制,分析物種在基因組學上的差異提供理論依據(jù)。以采自陜西省佛坪縣的三年生豬苓菌核為原材料,通過EASY spin植物快速提取試劑盒提取總RNA,經(jīng)電泳檢測條帶清晰,OD260/280在2.0-2.1之間,產(chǎn)量符合反轉(zhuǎn)錄的要求;利用SMART法成功構(gòu)建了豬苓菌核的cDNA文庫,原始文庫滴度為6.55×106pfu/ml,重組率為94.26%,插入片段長度均大于100bp,擴增文庫滴度為1.821×1010pfu/ml,符合一個質(zhì)量較好的文庫標準。隨機選取500個單克隆進行單方向測序,獲得高質(zhì)量序列共371條,平均長度為383bp;經(jīng)聚類拼接后得到包含127條ESTs的共46個重疊群和244個單拷貝序列,形成了共290條單基因簇,文庫的冗余度為21.83%;參照植物基因功能目錄對照與nr數(shù)據(jù)庫已知功能序列相似性高的序列推測其蛋白質(zhì)具有的功能共分為11類,分別為蛋白質(zhì)合成、疾病/防御、代謝、信號轉(zhuǎn)導、能量、轉(zhuǎn)運、細胞生長/分裂、轉(zhuǎn)錄、細胞結(jié)構(gòu)、胞內(nèi)途徑及次生代謝。僅有160條序列獲得一條或一條以上GO功能基因注釋;其中被注釋為細胞組分(Cellular component)的包括9種功能;被注釋為生物學過程(Biological process)的包括15種功能;被注釋為分子功能(Molecular function)的包括3種功能。將所得序列提交到KEGG數(shù)據(jù)庫進行比對,共有116個基因獲得了 Knumber,其中有98個基因被帶入到通路中,涉及到的通路共153條;其中基因參與最多的通路為代謝(metabolic pathway),共有22個基因參加;根據(jù)與nr數(shù)據(jù)庫中已知蛋白質(zhì)序列高同源性為原則,選取10條與nt/nr數(shù)據(jù)庫內(nèi)已登陸基因高同源性序列,并對其高同源性基因及其編碼蛋白進行分析,預(yù)測未知基因及蛋白質(zhì)的功能與結(jié)構(gòu)。
【學位單位】:延邊大學
【學位級別】:碩士
【學位年份】:2018
【中圖分類】:S567.3
【部分圖文】:

地圖,中國豬,資源分布,地圖


圖1中國豬苓資源分布地圖??Figl?.The?distribution?of?Polyporus?umbellatus?in?China??3有關(guān)豬苓在分子生物學領(lǐng)域的研究概況??近年來有關(guān)豬苓的遺傳多樣性、種群差異結(jié)構(gòu)、功能基因克隆分析等多物學研宄正在逐步開展。??劉開輝等[5-7]對三種不同形態(tài)豬苓菌核的rDNA?(18s?rDNA和ITS1-5-ITS2)和p-tubl進行擴增測序比對,結(jié)果表明三種形態(tài)的豬苓菌核的rD

豬苓菌核


圖2兩種方法提取豬苓菌核總RNA??Fig2?Total?RNAs?from?sclerotium?of?P.?umbellatus?using?two?methods??如圖2所示,試劑盒法所提取的總RNA,28s與18s十分清晰,亮度比約為??2:1,且5s處的條帶比較清晰,說明RNA的完整性比較好,未發(fā)生降解;而Trizol??改良法所提取的總RNA,?5s處的條帶要明顯亮于28s與18s,且出現(xiàn)了拖尾現(xiàn)象,??說明RNA的完整性很差,己經(jīng)發(fā)生了降解。??表1不同方法提取豬苓菌核純度與產(chǎn)置比較??Table?1?Comparison?of?quality?and?efficiency?of?extracted?total?RNA?by?different?method??方法?樣品編號?^?產(chǎn)量(Hg/g)???Methods?Samples?‘⑷?80?Productivity??試劑盒法?1?2.06?2.46??EASY?Spin?Plant?RNA?kit?2?2?09?3?31??method??Trizol?改良法?3?2.24?6.43??Improved?Trizol?method?4?2.26?6.94??純的RNA樣品OD26G/280應(yīng)在1.7-2.2之間,若RNA樣品的OD26〇/28〇比值太??小,表明有蛋白質(zhì)或酚污染?,當OD260/280大于2.2時,說明RNA己經(jīng)水解成單核??酸了如表中所示,采用試劑盒法所提取的RNA樣品OD值均在2.0-2.1之間,??說明RNA純度較好;采用Trizol改良法所提取的RNA樣品OD值均大于2.2

分級分離


LD-PCR所得到的ds-cDNA經(jīng)蛋白酶K消化,Sfi?I酶切及CHROMA??SPIN-400分級分離后,得到16管修飾后的產(chǎn)物,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測得到如??圖4所示:??■物..丨....???|????:?—??BHH??1-16?修飾后的?ds-cDNA,Ml?DL15000?Marker,?M2?DL?2000?Marker??圖4?cDNA分級分離??Fig?4?The?Fractionation?of?cDNA??如圖4所示,第9-12管的cDNA片段長度均大于750bp,合并這四管的產(chǎn)物??并進行純化。??3.4原始文庫滴度與重組率檢測??原始文庫經(jīng)稀釋100倍后進行倒板培養(yǎng),分別進行滴度的測定及藍白斑篩選??(表?2):??7??
【參考文獻】

相關(guān)期刊論文 前10條

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相關(guān)碩士學位論文 前1條

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本文編號:2866371

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