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本氏煙鈣調素類似蛋白Nbrgs-CaM抑制轉錄后基因沉默的機理研究

發(fā)布時間:2017-04-15 17:19

  本文關鍵詞:本氏煙鈣調素類似蛋白Nbrgs-CaM抑制轉錄后基因沉默的機理研究,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:轉錄后基因沉默(Post transcriptional gene silencing, PTGS)是植物抵抗病毒侵染的一種機制,病毒為了成功侵染寄主植物會編碼RNA沉默抑制子。中國番茄黃化曲葉病毒(Tomato yellow leaf curl China virus, TYLCCNV)伴隨的衛(wèi)星分子Beta (Tomato yellow leaf curl China Betasatellite, TYLCCNB)編碼的唯一蛋白pCl是一個重要的致病因子和RNA沉默抑制子。βC1可以上調本氏煙中的鈣調素類似蛋白基因Nbrgs-CaM來抑制RNA沉默途徑中的重要基因NbRDR6的表達,從而抑制RNA沉默。Nbrgs-CaM被證實是一個植物內源的RNA沉默抑制子,并在βCl抑制次級小型干擾RNAs (Small interfering RNAs, siRNAs)的產生及誘導雙生病毒的致病性中起了重要作用。植物病毒利用Nbrgs-CaM來反擊寄主的防御反應,但是Nbrgs-CaM抑制RNA沉默的具體作用尚不清楚。本文圍繞著Nbrgs-CaM與本氏煙沉默抑制子(Suppressor of Gene Silencing 3, NbSGS3)的互作開展深入的研究。NbSGS3在細胞內呈顆粒狀分布,這種顆粒狀結構被稱為SGS3/RDR6小體(SGS3/RDR6 bodies)。對NbSGS3序列進行分析,發(fā)現(xiàn)它具有三個典型的結構域。為了明確它的哪一個結構域對于這種顆粒狀的定位是必需的,我們分別構建了NbSGS3的各個結構域缺失突變體的亞細胞定位表達載體(pCHF3-NbSGS3-dZF-GFP, pCHF3-NbSGS3-dXS-GFP, pCHF3-NbSGS3-d2CC-GFP)。通過浸潤H2B-RFP本氏煙,觀察它們的亞細胞定位模式,我們發(fā)現(xiàn)NbSGS3的ZF和2CC結構域對于它的亞細胞定位很重要。為了探究NbSGS3的關鍵定位結構域是否也是它與Nbrgs-CaM的互作結構域,我們構建了NbSGS3的各個結構域缺失突變體的BiFC表達載體(2YN/2YC-NbSGS3-dZF, 2YN/2YC-NbSGS3-dXS,2YN/2YC-NbSGS3-d2CC)。通過在H2B-RFP本氏煙上共表達這些突變體蛋白,分析它們與Nbrgs-CaM蛋白在細胞內的互作情況,結果顯示NbSGS3的ZF和2CC結構域對于它與Nbrgs-CaM的互作也是必需的。對Nbrgs-CaM的序列進行分析,發(fā)現(xiàn)它具有四個功能結構域。為了探究Nbrgs-CaM的哪個結構域決定了它與NbSGS3的互作,我們構建了Nbrgs-CaM的各個結構域缺失突變體的BiFC表達載體(2YN/2YC-NbCaM-dX,2YN/2YC-NbCaM-dEFI,2YN/2YC-NbCaM-dEFII,2YN/2YC-NbCaM-dEFIV)。在H2B-RFP本氏煙上研究Nbrgs-CaM不同結構域的缺失突變體與NbSGS3蛋白的互作情況,結果顯示Nbrgs-CaM的EFI和EFII兩個結構域對于它與NbSGS3的互作是必需的。為了明確Nbrgs-CaM與NbSGS3的互作結構域EFI和EFII對于Nbrgs-CaM的PTGS抑制子活性是否同樣重要,我們將Nbrgs-CaM及其各個結構域缺失突變體構建到pCambia2300-Flag的重組表達載體上(pCambia2300-NbCaM-dX-Flag, pCambia2300-NbCaM-dEFI-Flag, pCambia2300-NbCaM-dEFII-Flag,pCambia2300-NbCaM-dEFIV-Flag)。分別在野生型本氏煙和16c本氏煙上進行RNA沉默抑制子鑒定實驗,結果均顯示Nbrgs-CaM與NbSGS3互作所必需的EFI和EFII兩個結構域對于Nbrgs-CaM的沉默抑制子功能也是必需的。我們還發(fā)現(xiàn)Nbrgs-CaM的過量表達能夠降低NbSGS3蛋白的積累量。這些結果說明Nbrgs-CaM可以與NbSGS3互作并降解NbSGS3蛋白的表達從而抑制RNA沉默。
【關鍵詞】:中國番茄黃化曲葉病毒 βC1蛋白 鈣調素類似蛋白Nbrgs-CaM 基因沉默抑制子3 NbSGS3 轉錄后基因沉默
【學位授予單位】:浙江大學
【學位級別】:碩士
【學位授予年份】:2016
【分類號】:S432.41
【目錄】:
  • 致謝6-8
  • 摘要8-10
  • Abstract10-16
  • 1 緒論16-30
  • 1.1 雙生病毒的發(fā)生情況與危害程度16
  • 1.2 雙生病毒的分類和基因組結構16-20
  • 1.2.1 菜豆金色花葉病毒屬(Begomovirus)18-19
  • 1.2.2 玉米線條病毒屬(Mastrevirus)19
  • 1.2.3 甜菜曲頂病毒屬(Curtovirus)19-20
  • 1.2.4 番茄偽曲頂病毒屬(Topocuvirus)20
  • 1.2.5 伊朗甜菜曲頂病毒屬(Becurtovirus)20
  • 1.2.6 蕪菁曲頂病毒屬(Turncurtovirus)20
  • 1.2.7 彎葉畫眉草條紋病毒屬(Eragrovirus)20
  • 1.3 菜豆金色花葉病毒屬病毒betasatellite的研究進展20-21
  • 1.4 雙生病毒與RNA沉默21-28
  • 1.4.1 RNA沉默機制21-22
  • 1.4.2 RNA沉默途徑中的抗病毒侵染的核心蛋白22-23
  • 1.4.3 雙生病毒誘發(fā)的RNA沉默23-24
  • 1.4.4 雙生病毒編碼的RNA沉默抑制子24-28
  • 1.5 基因沉默抑制子SGS3的研究進展28
  • 1.6 鈣調素類似蛋白Rgs-CaM的研究進展28-29
  • 1.7 本項目的研究目的和研究意義29-30
  • 2 實驗方法30-49
  • 2.1 常規(guī)DNA克隆技術30-37
  • 2.1.1 PCR技術30-33
  • 2.1.2 PCR產物的回收33
  • 2.1.3 加A反應33-34
  • 2.1.4 連接34
  • 2.1.5 感受態(tài)細胞的制備34-35
  • 2.1.6 轉化35
  • 2.1.7 菌落PCR篩選35-36
  • 2.1.8 重組質粒的提取36
  • 2.1.9 重組質粒的酶切驗證36-37
  • 2.1.10 重組克隆的測序鑒定37
  • 2.2 重組質粒導入根癌農桿菌及接種37-38
  • 2.2.1 根癌農桿菌感受態(tài)細胞的制備37
  • 2.2.2 重組質粒電擊轉化根癌農桿菌37-38
  • 2.2.3 農桿菌的浸潤接種38
  • 2.3 植物總DNA提取以及Southern blot分析38-43
  • 2.3.1 CTAB法大量抽提植物DNA的方法38-40
  • 2.3.2 CTAB法小量抽提植物DNA的方法40
  • 2.3.3 Southern印跡分析40-43
  • 2.4 植物總RNA小量提取、RT-PCR、RT-qPCR、Northern雜交43-46
  • 2.4.1 植物總RNA的小量提取43-44
  • 2.4.2 反轉錄RT-PCR及RT-qPCR44-45
  • 2.4.3 Northern印跡雜交45-46
  • 2.5 植物總蛋白的提取、蛋白的SDS-PAGE及Western blot雜交46-49
  • 2.5.1 植物總蛋白的提取46
  • 2.5.2 蛋白的SDS-PAGE46-47
  • 2.5.3 Western blot分析技術47-49
  • 3 Nbrgs-CaM與NbSGS3互作結構域及Nbrgs-CaM抑制子結構域鑒定49-68
  • 3.1 材料與方法49-55
  • 3.1.1 實驗材料49
  • 3.1.2 載體的構建49-51
  • 3.1.3 農桿菌介導的浸潤與接種51
  • 3.1.4 GFP熒光記錄及樣品采集51-52
  • 3.1.5 Western blot分析GFP蛋白的表達量52
  • 3.1.6 Northern blot分析52-55
  • 3.2 結果與分析55-66
  • 3.2.1 ZF和2CC結構域對NbSGS3亞細胞定位很重要55-57
  • 3.2.2 ZF和2CC結構域對于NbSGS3與Nbrgs-CaM的互作很重要57-59
  • 3.2.3 EFⅠ和EFⅡ是Nbrgs-CaM與NbSGS3的互作結構域59-61
  • 3.2.4 在野生型本氏煙中鑒定Nbrgs-CaM缺失突變體的抑制子活性61-63
  • 3.2.5 在16C本氏煙中鑒定Nbrgs-CaM缺失突變體的抑制子活性63-65
  • 3.2.6 Nbrgs-CaM蛋白介導NbSGS3蛋白的降解65-66
  • 3.3 討論66-68
  • 4 全文小結68-69
  • 附文 TYLCCNB編碼的pC1蛋白與NbPsbP的互作機理研究69-90
  • 1 緒論69-71
  • 2 材料與方法71-75
  • 2.1 實驗材料71
  • 2.2 NbPsbP沉默載體的構建71-72
  • 2.3 常溫包埋樣品制備以及電鏡觀察細胞結構72
  • 2.4 雙分子熒光互補實驗(Bimolecular fluorescence complementation,BiFC)72-73
  • 2.4.1 重組質粒電擊轉化農桿菌72
  • 2.4.2 農桿菌接種72-73
  • 2.4.3 激光共聚焦顯微鏡觀察互作結果73
  • 2.5 酵母雙雜交實驗73-74
  • 2.5.1 酵母雙雜交驗證兩種已知蛋白的互作73-74
  • 2.5.2 酵母蛋白的提取74
  • 2.6 NbPsbP總蛋白的提取及Western blot74
  • 2.7 NbPsbP總RNA提取、RT-PCR、RT-qPCR及Northern blot74-75
  • 3 結果與分析75-90
  • 3.1 TYLCCNB編碼的βC1蛋白可以引起本氏煙葉綠體變形75-77
  • 3.2 TYLCCNB編碼的βC1蛋白與NbPsbP蛋白互作77-81
  • 3.2.1 BiFC驗證βCl蛋白與NbPsbP蛋白的互作77-79
  • 3.2.2 酵母雙雜交驗證pC1蛋白與NbPsbP蛋白的互作79-81
  • 3.3 NbPsbP定位于葉綠體81-83
  • 3.4 雙生病毒10Aβ的侵染顯著上調NbPsbP mRNA的表達量83-84
  • 3.5 βC1轉基因本氏煙中NbPsbP mRNA表達量上調84-85
  • 3.6 NbPsbP基因對10Aβ病毒致病性的影響85-88
  • 3.6.1 NbPsbP基因沉默表型和沉默水平85-86
  • 3.6.2 沉默NbPsbP基因會減輕10Aβ癥狀并減少病毒的積累量86-88
  • 3.7 討論88-90
  • 參考文獻90-97
  • 附錄A:本論文所用縮寫詞及中英文對照97-99
  • 附錄B:本論文所用病毒縮寫及中英文對照99-100
  • 附錄C:常用緩沖液及培養(yǎng)基配方100-105

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本文編號:308885

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