實時熒光定量PCR技術檢測轉(zhuǎn)基因大豆方法的建立 (1)
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第29卷 第8期 陳 穎等:實時熒光定量PCR技術檢測轉(zhuǎn)基因大豆方法的建立
實時熒光定量PCR技術檢測轉(zhuǎn)基因大豆方法的建立
陳 穎1 徐寶梁1 蘇 寧1 王 媛2 王丙武1 葛毅強3
3
1(中國進出口商品檢驗技術研究所,北京,100025) 2(中國農(nóng)業(yè)大學食品學院,北京,100049)
3(科技部中國農(nóng)村技術開發(fā)中心,北京)
綜
述與專題評論
摘 要 采用實時熒光定量PCR技術,,LectinEPSPS公司生產(chǎn)的商
該方法的檢測靈敏度<0101%,是
100倍。熒光定量PCR,轉(zhuǎn)基因大豆,轉(zhuǎn)基因檢測
隨著近年來人們對轉(zhuǎn)基因作物安全性的日益重視,對轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測方法的研究發(fā)展十分迅速,轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品的定性檢測技術已由篩選檢測深入為對目的基因的特異性檢測。與此同時,隨著各國有關GMO(geneti2callymodifiedorganism)標簽法的建立和不斷完善,轉(zhuǎn)基因成分的準確定量檢測也顯得日趨重要,很多國家不但要求對轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品進行定性檢測,還需要對產(chǎn)品中的GMO含量進行定量檢測,以便標識。挪威是世界上第一個要求對轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品進行含量標識的國家,該國對轉(zhuǎn)基因的限量為2%[1];歐盟和瑞士規(guī)定食品中GMO成分超過1%則必須進行標識;日本的限量標識為5%[2,3]。
目前,定量PCR檢測方法是對轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品進行定量標識的主要方法。但傳統(tǒng)PCR定量方法如內(nèi)參照法、競爭法和PCR2ELISA法都是終點檢測,即PCR到達平臺期后進行檢測,PCR經(jīng)過對數(shù)期擴增到達平臺期時,檢測重現(xiàn)性較差。因此,傳統(tǒng)的定量方法也都只能算作半定量、粗略定量的方法。而實時熒光定量PCR技術(real2timefluorescencequantitativePCRdetection)是近幾年興起的分子生物學檢測技術,于1996年由美國Ap2pliedBiosystems公司推出。與常規(guī)PCR相
第一作者:博士,高級工程師。3科技部社會公益研究專項資金項目 收稿時間:2003-04-14,改回時間:2003-07-07
比,該技術實現(xiàn)了PCR
從定性到定量的飛躍,而且,它具有特異性更強、有效解決PCR
污染問題、自動化程度高等特點。
實時熒光定量PCR比常規(guī)PCR多一個寡聚核苷酸探針,該探針與摸板特異性結(jié)合,并帶有一個熒光發(fā)光分子和一個熒光淬滅分子,完整的探針在激光激發(fā)下,發(fā)光分子所產(chǎn)生的熒光被淬滅分子全部吸收,樣品無熒光,而PCR擴增過程中,Taq酶分子在鏈延長的過程中可以通過自身的5’23’核酸外切酶降解與模板結(jié)合的特異性熒光探針,使得熒光發(fā)光分子從探針上切下來而與熒光淬滅分子分開,從而在激光激發(fā)下產(chǎn)生特定波長的熒光,模板每復制一次,就有一個探針被切斷,伴隨一個熒光信號的釋放。所以熒光信號的強弱就代表了模板的數(shù)量。由于被釋放的熒光基團數(shù)目和PCR產(chǎn)物數(shù)量是一對一的關系,因此用該技術可對模板進行準確定量。
本文通過應用熒光定量PCR技術對Roundup2Ready大豆的檢測,旨在建立一種簡便、快速的大豆食品轉(zhuǎn)基因成分及含量的檢測方法,為我國農(nóng)業(yè)轉(zhuǎn)基因生物標識的監(jiān)管提供有力的技術支持。
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綜述與專題評論
食品與發(fā)酵工業(yè) FoodandFermentationIndustries Vol129 No18
1 材料與方法
111 實驗材料11111 樣 品
11211 DNA的提取
按DNA試劑盒所述方法提取樣品
DNA,經(jīng)核酸蛋白分析儀測定濃度后,將其稀釋為終濃度50ng/μL,備用。11212 PCR轉(zhuǎn)基因成分含量分別為5%、2%、1%、
015%、011%、0%的轉(zhuǎn)基因大豆RoundupReady標準品購自Fluka公司(Switzerland)11111
μL,其中L,脫氧核苷酸三磷酸TP(10mmol/L)2μL,引物(20μmol/L)各1μL,模板DNA(50ng/μL)2μL,Taq聚合酶2U,擴增條件為預變性94℃3min;變性94℃45s,退火60℃30s,延伸72℃1min,后
TaqManUni2
versalPCRMasterMix購自美國ABI公司;DNA提取試劑盒WizardGenomicDNAPu2rificationKit購自美國Promega公司。11113 主要儀器與設備
離心機,渦旋振蕩器,恒溫箱,核酸蛋白分析儀(BIO2RAD),定量PCR儀(ABI7700)。112 實驗方法
延伸72℃7min,35個循環(huán)。
11213 實時熒光PCR檢測1121311 擴增用引物
定量檢測所用引物[4]、探針均由上海生工公司合成(見表1)。
擴增產(chǎn)物長度
()
118
表1 轉(zhuǎn)基因大豆定量PCR擴增所用引物和探針
基因名稱
Lectin
基因性質(zhì)內(nèi) 源
引物/探針序列
5’2ctcttcccgagtgggtgagga23’5’2cgattccccaggtatgtcga23’
5’2tgatgtgatatctccactgacg23’5’-tgtatcccttgagccatgttgt23’
CP4EPSPS外 源172
1121312 擴增反應體系及條件
實時定量PCR擴增采用ABI公司提供的試劑盒,反應體系見表2。擴增反應采用2
步法,具體條件為預變性95℃10min。擴增95℃20s,60℃1min,40個循環(huán)。
表2 ABI試劑盒定量擴增體系
試劑名稱
MasterMix
Ready轉(zhuǎn)基因大豆標準品(5%、2%、1%、015%、011%、0%)的測定,計算機自動生成
貯備液濃度
-
加入PCR反應體系的體積/μL
10
引 物
探 針模板DNA
水
μmol/L20μmol/L10
50ng/μL
-
各015
12
補足至總體積為25
11214 定量PCR結(jié)果計算1
121411 標準曲線的制定
通過對不同轉(zhuǎn)基因含量的Roundup66
標準曲線,縱坐標為臨界循環(huán)值Ct,橫坐標
為百分含量。根據(jù)標準曲線所得的線性計算公式,將樣品的Ct值代入公式,即可得到待測樣品的轉(zhuǎn)基因成分的百分含量。1121412 檢測低限的測定
為測定該方法對轉(zhuǎn)基因大豆檢測的檢測低限,取011%的轉(zhuǎn)基因大豆標準品20mg,0%的標準品20mg,充分混勻,得到0105%的轉(zhuǎn)基因標準品;取011%的標準品4mg,0%的標準品36mg,充分混勻,得到0101%的轉(zhuǎn)基因標準品。擴增從015%、011%、0105%與0101%標準品中提取的DNA,得到相應的Ct值。根據(jù)標準曲線判斷定量檢測轉(zhuǎn)基因大豆的檢測低限。
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1121413 檢測方法精密度分析
用已知轉(zhuǎn)基因成分含量為2%、015%、
0105%的大豆標準品樣品,重復檢測10次。根據(jù)相應的標準曲線,得到被檢測樣品的轉(zhuǎn)基因百分含量。通過對所得數(shù)據(jù)的統(tǒng)計學分析,如標準偏差、變異系數(shù)等,評價本檢測方法的精密度。
標準偏差(RSD)=
(2+-n-和臨界循環(huán)值(Ct,cyclethreshold)均可反映擴增的效果。Ct值是指每個反應管內(nèi)的熒光信號(Rn)到達設定的域值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。研究表明,Ct值與該模板的起始拷貝[6],Ct,模板,模板C<時,即
綜述與專題評論
CV)SD/X×100%
其中:d1~dn為樣品1~n次測量所得轉(zhuǎn)基因成分含量,%;X為樣品1~n次測量所得轉(zhuǎn)基因成分的算術平均值,%;n為樣品測量次數(shù);SD為標準偏差。1121414 檢測回收率計算
回收率/%=C1/C2×100%其中:C1———樣品測量所得轉(zhuǎn)基因成分含量的平均值;C2———被測樣品的實際轉(zhuǎn)基因成分含量。
,。由于模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在的線性關系,因此利用已知濃度的標準品即可作出該線性關系的標準曲線,其中橫坐標代表已知濃度的對數(shù),縱坐標代表Ct值。
用不同轉(zhuǎn)基因含量的RoundupReady轉(zhuǎn)基因大豆標準品對轉(zhuǎn)入的外源CP4EPSPS基因[7]進行定量檢測,以獲得標準曲線(見圖1)。通過Ct值檢測軟件自動生成以Ct值為縱坐標,以百分含量的對數(shù)為橫坐標的標準曲線,所測得的標準曲線的方程式為Y=-31176X+261006,相關系數(shù)
R2為01991。這樣,將待測樣品擴增得到的Ct值
(Y值)代入公式,即可得到待測樣品的轉(zhuǎn)基
2結(jié)果與分析
211 大豆內(nèi)源Lectin基因定性
提取出一定數(shù)量的高質(zhì)量DNA是進行轉(zhuǎn)基因成分PCR檢測的前提條件。通過檢測內(nèi)源特異參照基因(內(nèi)源基因),可以判定DNA是否被提取出來,或所提DNA是否適合于進行PCR擴增,從而可以避免檢測結(jié)果的假陰性。因此,對大豆內(nèi)源基因Lectin[5]的檢測即是對被檢測樣品DNA提取質(zhì)量的檢測。
本研究通過采用特異引物首先對轉(zhuǎn)基因大豆中的內(nèi)源基因進行了定性PCR檢測,以確定所提取的DNA是否適合于PCR擴增。PCR電泳顯示:轉(zhuǎn)基因成分含量分別為5%、2%、1%、015%、011%、0%的轉(zhuǎn)基因大豆,均擴增出了118bp片斷(電泳結(jié)果未顯示),該結(jié)果表明,所提取的DNA數(shù)量和質(zhì)量均適合于PCR擴增。212 標準曲線的建立
在定量檢測中標準報告熒光信號(Rn)
因成分的百分含量。
圖1 轉(zhuǎn)基因大豆標準品外源
CP4EPSPS基因量擴增結(jié)果
213 檢測靈敏度
在進行實時熒光PCR定量檢測中,檢測
靈敏度即所謂的檢測低限通常有3種表示方法:絕對檢測低限(能被檢測和定量到的模板起始拷貝最低數(shù))、相對檢測低限(能被檢測和定量到的外源基因的最低百分含量)、實際檢測低限(實際被檢測的DNA數(shù)量)。實時
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綜述與專題評論
食品與發(fā)酵工業(yè) FoodandFermentationIndustries Vol129 No18
熒光PCR檢測的靈敏度主要取決于以下3
方面:用于PCR反應的DNA總量;被檢測作物品種的基因組大小;每個基因組中所含外源基因的數(shù)目,即外源基因的拷貝數(shù)[8]。
本研究中采用相對檢測低限測定轉(zhuǎn)基因大豆Roundup2Ready的檢測靈敏度。通過從不同濃度的轉(zhuǎn)基因大豆標準品中提出DNA進行CP4明,轉(zhuǎn)2的CP40101%(見圖2)。低標識限量的100倍,已經(jīng)完全能滿足轉(zhuǎn)基因檢測的需要。
續(xù)表3
轉(zhuǎn)基因成分檢測值/010501501052301492101054201501901052801513501004101177351601%210211205118829210672011328136
910
平均值
)
1)
CV//1),標準偏差;2)CV:Coeffi2
ofVariation,變異系數(shù)。
從表3中可知,轉(zhuǎn)基因成分含量為
0105%、015%和2%的3種樣品的測定結(jié)果的變異系數(shù)分別為017735%、318559%和614233%,其回收率分別為105150%、10217%、103136%,說明此方法具有良好的準確性和重現(xiàn)性。
3 結(jié)論與討論
311 引物和探針的設計
圖2 轉(zhuǎn)基因大豆外源CP4EPSPS基因定量
檢測靈敏度測定
214 檢測精密度
為確證實驗的準確性和精確性,本實驗選取了轉(zhuǎn)基因成分含量為0105%、015%和2%的3種樣品進行了n=10次的測定,并通
過統(tǒng)計分析得到了采用實時熒光PCR檢測
方法的精密度(如表3所示)。
表3 轉(zhuǎn)基因大豆定量檢測方法精密度
轉(zhuǎn)基因成分檢測值/
01050150105110151130104790154900105280148270
10492015053010573015132010612015179010533015235010486015371
%210210124211127118936211513211682213146119843210311
12345678
實時熒光PCR檢測中引物和探針的設
計是PCR擴增獲得成功的關鍵之一。在設計引物和探針時應盡量遵循以下原則:引物要在探針確定以后再選擇,并盡可能地與探針接近,但不要重疊。保持GC含量在30%~80%之間,但要避免同一堿基重復過多,特別是G,不可超過4個;在引物中3’末端的5個堿基中G和(或)C的總數(shù)不能超過2個,在探針中5’末端的第一個堿基不能是G;無論引物還是探針Tm一般應當在58~60℃之間較為合適。
為了能有效檢測轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品,通過文獻研究[9,10],設計采用了引物與探針的最佳組合,使PCR反應效率高,靈敏度高,重現(xiàn)性好。312 檢測精確度和靈敏度的測定
定量實驗,誤差是不可避免的。設立重復實驗,對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計處理,可以將誤差降低到最小。本研究中通過重復實驗確定了該方法的檢測精密度,所測數(shù)據(jù)經(jīng)t檢驗(顯著性水平α=0105)分析表明,該方法所測數(shù)據(jù)合理。
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通過轉(zhuǎn)基因大豆標準品和非轉(zhuǎn)基因大豆
樣品的混合,測定了該方法對轉(zhuǎn)基因大豆檢測的靈敏度。實驗結(jié)果表明,轉(zhuǎn)基因大豆實時熒光PCR檢測的靈敏度小于0101%?紤]到國際上目前設定的轉(zhuǎn)基因限量是本方法檢測靈敏度的100倍,本研究認為0101%的要。
參
獻
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FoodScienceCH23003Bern,Swizerland.Ei2dgenossischeDrucksachenundMaterialzentrale.1995,R817.02.
3 ECRegulation1998/11391Councilregulation
(EC)No1139/98of26May1998Concerningthe
CompulsoryIndicationoftheLabellingofCertainFoodstuffsProducedfromGeneticallyModifiedOr2ganismsofParticularsotherthanThoseProvidedforinD79/112/EEC1Brussels,Belgium1L159:4~7
4 JankiewiczA,BrollH,ZagonJ1Res
,,209:82
5 R1Cell,
,:1~1 Cal1Biotechnology,1993,
11(:1026~1030
7 BarryGF,KishoreGM,PadgetteSetal1
Glyphosate2tolerant52Enolpyruvateshikimate232PhosphateSynthases,U1S1Patent,56270612A9.1997
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9 VaitilingomM,PijnenburgH,GendreFetal,J
AgricFoodChem,1999,47:5261~5266
10 KnutGB,ArneHJ.EurFoodResTechnol,
2001,213:432~438
綜述與專題評論
Real2timeQuantitativePolymeraseChainReaction
MethodsforGeneticallyModifiedSoybeanChenYing1 XuBaoliang1 SuNing1
WangYuan2 WangBingwu1 GeYiqiang3
1(ChinaImportandExportCommodityInspectionTechnologyInstitute,Beijing,100025)
2(ChinaAgriculturalUniversity,Beijing,100094)
3(ChinaAgriculturalTechnologyDevelopmentCentral,Beijing,100045)
ABSTRACT Aquantitativemethodwasdevelopedtodetecttransgenic“Roundup2Ready”soy2bean(Monsanto)byreal2timequantitativePCR1SpecialprimersandprobeswereusedtoamplifytheendogenousgenelectinandexogenousgeneCP4EPSPS1Thedetectionlimitofthismethodwas0101%whichwas100timeslowerthanthelowestinternationallabelingthreshold1Thesta2tisticalanalysisshowedthattheaccuracyandprecisionofthismethodwasinagreementwithoth2erquantitativeGMOdetectionsystems1Keywords real2timequantitativePCR,“Roundup2Ready”soybean,GMO
detection
信息窗
吃適量的巧克力有助于心臟健康
美國加里福尼亞大學的研究人員指出:富含黃酮醇的巧克力與改善血管功能之間有著某種潛在的聯(lián)系。從醫(yī)學角度來講,血管功能、膽固醇含量及血壓都是心血管健康的重要指標。21名健康人參加該實驗,他們被隨機分為2組,每天分別吃下46g富含黃酮醇(約含259mg黃酮醇)和不含黃酮醇的巧克力。2周后當研究人員化驗他們血液中黃酮醇含量時,發(fā)現(xiàn)巧克力中的黃酮醇均被吸收到血液中。
黃酮醇對健康有益的研究結(jié)果還有以下幾點:(1)黃酮醇能放松血管周圍的肌肉,使血流順暢;(2)黃酮醇能維持或增強氮氧化合物在血管功能中的效用;(3)黃酮醇對于血小板(起凝血作用)能產(chǎn)生一種類似于阿斯匹林的效用。研究人員認為,只要量適當,每天吃一些巧克力還是有益于身體健康的。
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