酸棗仁皂苷A對脂多糖誘導(dǎo)小膠質(zhì)細胞炎癥發(fā)生的作用機制及神經(jīng)保護作用
發(fā)布時間:2022-12-08 02:30
神經(jīng)退行性疾。∟eurodegenerative disease),例如常見的帕金森。≒arkinson’s disease,PD)、阿爾茲海默。ˋlzheimer disease,AD)、肌萎縮側(cè)索硬化癥(amyotrophic lateral sclerosis,ALS)等,多是由于中樞神經(jīng)特定神經(jīng)元逐漸損傷正常功能或結(jié)構(gòu)所致[1],隨著對該病發(fā)病機制的深入探索,打破了以往禁錮的氧化應(yīng)激、興奮性毒性等發(fā)病原因,認為神經(jīng)炎癥貫穿于神經(jīng)退行性疾病的發(fā)病進程中[2]。其中一個重要的參與者是小膠質(zhì)細胞[3]。當(dāng)受到脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)等刺激時,小膠質(zhì)細胞過度激活釋放各種炎癥介質(zhì),對神經(jīng)元造成損傷。酸棗仁皂苷A(Jujuboside A,Ju A)是養(yǎng)心安神常用中藥酸棗仁的有效活性成分,經(jīng)研究表明,具有對神經(jīng)元的保護和對老年癡呆小鼠的潛在治療作用[4],但Ju A能否通過抑制神經(jīng)炎癥用于治療神經(jīng)退行性疾病目前尚未見相關(guān)報道。目的:研究Ju A對脂多糖誘發(fā)BV-2細胞...
【文章頁數(shù)】:84 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【文章目錄】:
中文摘要
ABSTRACT
英文縮略詞(Abbreviation)
前言
第一部分 JuA對LPS誘發(fā)的BV-2細胞神經(jīng)炎癥的影響
1 實驗材料和儀器
1.1 細胞株
1.2 藥物
1.3 主要試劑
1.4 主要試劑配制
1.5 主要儀器
2 實驗方法
2.1 細胞復(fù)蘇
2.2 細胞傳代和培養(yǎng)
2.3 細胞凍存
2.4 細胞計數(shù)
2.5 細胞分組
2.6 JuA對BV-2細胞存活率的影響(MTT法)
2.7 Griess法檢測JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞NO釋放的影響
2.8 Westernblot法檢測CD11b蛋白的表達
2.9 激光共聚焦觀察JuA對LPS刺激BV-2細胞形態(tài)變化的影響
2.10 RT-PCR檢測BV-2細胞iNOS、TNF-α、IL-1β、COX-2mRNA表達水平
2.11 Westernblot法檢測iNOS、COX-2蛋白表達
2.12 統(tǒng)計學(xué)方法
3 結(jié)果
3.1 JuA對BV-2細胞存活率的影響(MTT法)
3.2 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞NO水平的影響
3.3 JuA對CD11b表達的調(diào)節(jié)作用
3.4 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞形態(tài)變化的影響
3.5 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞TNF-α、IL-1β、iNOS、COX-mRNA表達水平的影響
3.6 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞iNOS、COX-2蛋白表達的影響
4 討論
4.1 LPS與小膠質(zhì)細胞激活
4.2 BV-2細胞炎癥發(fā)生的表現(xiàn)
5 小結(jié)
第二部分 JuA抑制LPS誘發(fā)BV-2細胞神經(jīng)炎癥的作用機制.
1 實驗材料和儀器
1.1 細胞株
1.2 藥物
1.3 主要試劑
1.4 主要試劑配制
1.5 主要儀器
2 實驗方法
2.1 細胞復(fù)蘇、傳代、培養(yǎng)和凍存
2.2 實驗分組及藥物處理
2.3 細胞總蛋白提取
2.4 細胞核蛋白和細胞質(zhì)蛋白分離
2.5 蛋白含量的測定
2.6 SDS-PAGE凝膠電泳
2.7 免疫熒光染色
2.8 統(tǒng)計學(xué)方法
3 結(jié)果
3.1 JuA抑制NF-κB蛋白的表達
3.2 JuA激活Nrf2/ARE通路上調(diào)HO-1蛋白表達
3.3 JuA對BV-2細胞PI3K/Akt調(diào)控Nrf2蛋白的影響
4 討論
4.1 NF-κB與神經(jīng)炎癥
4.2 Nrf2與神經(jīng)炎癥
4.3 Akt與Nrf2
5 小結(jié)
第三部分 JuA對小膠質(zhì)細胞神經(jīng)炎癥引發(fā)的神經(jīng)元損傷的影響
1 實驗材料和儀器
1.1 細胞株
1.2 藥物
1.3 主要試劑
1.4 主要試劑配制
1.5 主要儀器
2 實驗方法
2.1 細胞復(fù)蘇、傳代、培養(yǎng)和凍存
2.2 實驗分組
2.3 JuA對活化的BV-2細胞條件培養(yǎng)液損傷HT-22細胞的影響(MTT法)
2.4 熒光顯微鏡觀察DAPI染色
2.5 流式細胞儀檢測細胞凋亡率(Annexin-V/PI雙染)
2.6 Westernblot法檢測Cleaved-caspase-3、Bax、Bcl-2蛋白的表達
3 結(jié)果
3.1 JuA條件培養(yǎng)液對HT-22細胞存活率的影響
3.2 JuA對L-CM導(dǎo)致的HT-22細胞凋亡的影響
4 討論
4.1 膠質(zhì)細胞與神經(jīng)元細胞體外共培養(yǎng)模型的建立
4.2 凋亡的檢測
5 小結(jié)
總結(jié)
實驗線路圖
參考文獻
綜述
參考文獻
附錄
個人簡歷
碩士期間發(fā)表的科研論文
致謝
本文編號:3713361
【文章頁數(shù)】:84 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【文章目錄】:
中文摘要
ABSTRACT
英文縮略詞(Abbreviation)
前言
第一部分 JuA對LPS誘發(fā)的BV-2細胞神經(jīng)炎癥的影響
1 實驗材料和儀器
1.1 細胞株
1.2 藥物
1.3 主要試劑
1.4 主要試劑配制
1.5 主要儀器
2 實驗方法
2.1 細胞復(fù)蘇
2.2 細胞傳代和培養(yǎng)
2.3 細胞凍存
2.4 細胞計數(shù)
2.5 細胞分組
2.6 JuA對BV-2細胞存活率的影響(MTT法)
2.7 Griess法檢測JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞NO釋放的影響
2.8 Westernblot法檢測CD11b蛋白的表達
2.9 激光共聚焦觀察JuA對LPS刺激BV-2細胞形態(tài)變化的影響
2.10 RT-PCR檢測BV-2細胞iNOS、TNF-α、IL-1β、COX-2mRNA表達水平
2.11 Westernblot法檢測iNOS、COX-2蛋白表達
2.12 統(tǒng)計學(xué)方法
3 結(jié)果
3.1 JuA對BV-2細胞存活率的影響(MTT法)
3.2 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞NO水平的影響
3.3 JuA對CD11b表達的調(diào)節(jié)作用
3.4 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞形態(tài)變化的影響
3.5 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞TNF-α、IL-1β、iNOS、COX-mRNA表達水平的影響
3.6 JuA對LPS誘導(dǎo)BV-2細胞iNOS、COX-2蛋白表達的影響
4 討論
4.1 LPS與小膠質(zhì)細胞激活
4.2 BV-2細胞炎癥發(fā)生的表現(xiàn)
5 小結(jié)
第二部分 JuA抑制LPS誘發(fā)BV-2細胞神經(jīng)炎癥的作用機制.
1 實驗材料和儀器
1.1 細胞株
1.2 藥物
1.3 主要試劑
1.4 主要試劑配制
1.5 主要儀器
2 實驗方法
2.1 細胞復(fù)蘇、傳代、培養(yǎng)和凍存
2.2 實驗分組及藥物處理
2.3 細胞總蛋白提取
2.4 細胞核蛋白和細胞質(zhì)蛋白分離
2.5 蛋白含量的測定
2.6 SDS-PAGE凝膠電泳
2.7 免疫熒光染色
2.8 統(tǒng)計學(xué)方法
3 結(jié)果
3.1 JuA抑制NF-κB蛋白的表達
3.2 JuA激活Nrf2/ARE通路上調(diào)HO-1蛋白表達
3.3 JuA對BV-2細胞PI3K/Akt調(diào)控Nrf2蛋白的影響
4 討論
4.1 NF-κB與神經(jīng)炎癥
4.2 Nrf2與神經(jīng)炎癥
4.3 Akt與Nrf2
5 小結(jié)
第三部分 JuA對小膠質(zhì)細胞神經(jīng)炎癥引發(fā)的神經(jīng)元損傷的影響
1 實驗材料和儀器
1.1 細胞株
1.2 藥物
1.3 主要試劑
1.4 主要試劑配制
1.5 主要儀器
2 實驗方法
2.1 細胞復(fù)蘇、傳代、培養(yǎng)和凍存
2.2 實驗分組
2.3 JuA對活化的BV-2細胞條件培養(yǎng)液損傷HT-22細胞的影響(MTT法)
2.4 熒光顯微鏡觀察DAPI染色
2.5 流式細胞儀檢測細胞凋亡率(Annexin-V/PI雙染)
2.6 Westernblot法檢測Cleaved-caspase-3、Bax、Bcl-2蛋白的表達
3 結(jié)果
3.1 JuA條件培養(yǎng)液對HT-22細胞存活率的影響
3.2 JuA對L-CM導(dǎo)致的HT-22細胞凋亡的影響
4 討論
4.1 膠質(zhì)細胞與神經(jīng)元細胞體外共培養(yǎng)模型的建立
4.2 凋亡的檢測
5 小結(jié)
總結(jié)
實驗線路圖
參考文獻
綜述
參考文獻
附錄
個人簡歷
碩士期間發(fā)表的科研論文
致謝
本文編號:3713361
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