胞內(nèi)鈣重分布在鉛所誘導(dǎo)的大鼠腎小管上皮細(xì)胞凋亡中的作用
本文關(guān)鍵詞:胞內(nèi)鈣重分布在鉛所誘導(dǎo)的大鼠腎小管上皮細(xì)胞凋亡中的作用
更多相關(guān)文章: 鉛 細(xì)胞凋亡 細(xì)胞內(nèi)鈣分布 腎小管上皮細(xì)胞
【摘要】:鉛是環(huán)境中一種常見的污染物,能夠通過多種方式進(jìn)入機(jī)體并對機(jī)體造成損傷;鉛對機(jī)體的損傷呈多系統(tǒng)性和多器官性。其中,腎臟是鉛毒性損傷的重要靶器官之一,而腎小管是鉛腎毒性損傷的靶部位。前期研究表明,氧化應(yīng)激所誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡在鉛染毒所致原代大鼠腎小管上皮細(xì)胞毒性損傷中發(fā)揮主導(dǎo)作用;同時,鉛誘導(dǎo)大鼠腎小管上皮細(xì)胞凋亡過程中伴隨胞漿鈣超載。作為重要的凋亡信號,胞漿鈣受制于線粒體與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的調(diào)控;二者均為重要的胞內(nèi)鈣庫,在胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)調(diào)控中發(fā)揮重要作用。因此,鉛誘導(dǎo)大鼠腎小管上皮細(xì)胞胞漿鈣水平升高的來源及胞內(nèi)鈣重分布對凋亡的影響有待于研究。本研究以原代培養(yǎng)的大鼠腎小管上皮細(xì)胞為體外染毒模型,采用胞漿Ca2+特異性探針Fluo-4-AM,線粒體Ca2+特異性探針dihydro-Rhod-2-AM和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)Ca2+特異性探針Mag-Fluo-4-AM結(jié)合共聚焦顯微技術(shù)分別檢測鉛暴露對胞漿、線粒體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)不同區(qū)域Ca2+水平的影響。其次,腎小管細(xì)胞分別經(jīng)含鈣和無鈣兩種培養(yǎng)體系進(jìn)行不同時間(0,1,2 h)鉛暴露,采用流式細(xì)胞術(shù)檢測其對胞漿鈣水平的影響。細(xì)胞經(jīng)胞漿鈣螯合劑BAPTA-AM預(yù)孵育30 min,進(jìn)行鉛染毒,檢測胞漿鈣與線粒體鈣水平的變化。細(xì)胞進(jìn)行鉛與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣釋放通道受體(IP3R)特異性抑制劑2-APB共孵育12 h,檢測其對鉛所誘導(dǎo)胞內(nèi)鈣重分布的影響。同時,采用放射免疫分析法、免疫印跡分析法和定量PCR法分別檢測鉛染毒對IP3含量、IP3R兩種亞型IP3R-1與IP3R-2蛋白表達(dá)及基因轉(zhuǎn)錄水平的影響。最后,分別檢測BAPTA-AM與2-APB對鉛所誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞凋亡的影響。結(jié)果表明:在鉛暴露過程中,胞漿鈣超載主要來源于細(xì)胞內(nèi);胞漿鈣超載伴隨線粒體鈣超載和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣水平降低,而2-APB可顯著改變鉛所致的這種胞內(nèi)不同區(qū)域鈣分布。BAPTA-AM僅一定程度緩解鉛所誘導(dǎo)的線粒體鈣水平升高,表明線粒體鈣超載主要來源于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)。鉛染毒導(dǎo)致腎小管上皮細(xì)胞胞內(nèi)IP3含量升高,IP3R-1與IP3R-2基因轉(zhuǎn)錄和蛋白表達(dá)量均顯著升高。此外,2-APB和BAPTA-AM均可顯著抑制鉛誘導(dǎo)的大鼠腎小管上皮細(xì)胞凋亡?傊,在鉛暴露過程中,IP3-IP3R介導(dǎo)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣釋放是大鼠腎小管上皮細(xì)胞胞漿鈣超載與線粒體鈣超載的主要原因;胞內(nèi)鈣重分布參與調(diào)控細(xì)胞凋亡,而內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣釋放在這其中發(fā)揮主導(dǎo)作用。
【關(guān)鍵詞】:鉛 細(xì)胞凋亡 細(xì)胞內(nèi)鈣分布 腎小管上皮細(xì)胞
【學(xué)位授予單位】:山東農(nóng)業(yè)大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2015
【分類號】:R114
【目錄】:
- 中文摘要10-11
- Abstract11-13
- 1 前言13-22
- 1.1 鉛的污染狀況及毒性研究進(jìn)展13-14
- 1.1.1 鉛的理化性質(zhì)13
- 1.1.2 鉛的污染狀況13-14
- 1.1.3 鉛的腎毒性研究進(jìn)展14
- 1.2 細(xì)胞凋亡研究進(jìn)展14-17
- 1.2.1 死亡受體通路15
- 1.2.2 線粒體通路15-16
- 1.2.3 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)通路16-17
- 1.3 鈣離子信號與細(xì)胞凋亡17-22
- 1.3.1 胞內(nèi)鈣離子正常分布狀況18
- 1.3.2 胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)的維持18-20
- 1.3.3 鈣穩(wěn)態(tài)失衡與細(xì)胞凋亡20-22
- 2 材料與方法22-37
- 2.1 實驗動物22
- 2.2 主要試劑22-23
- 2.3 主要儀器23-24
- 2.4 實驗所用溶液的配制24-27
- 2.4.1 磷酸鹽緩沖液的配制24
- 2.4.2 含鈣及無鈣DMEM-F12細(xì)胞培養(yǎng)基的配制與除菌24-25
- 2.4.3 醋酸鉛溶液的配制25
- 2.4.4 2-APB的配制25
- 2.4.5 BAPTA-AM的配制25
- 2.4.6 10 × Western Blot蛋白質(zhì)電泳緩沖液的配制25
- 2.4.7 10 × Western Blot蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)印緩沖液的配制25
- 2.4.8 30 %丙烯酰胺/甲叉雙丙烯酰胺溶液(Acr/Bic)的配制25-26
- 2.4.9 10%SDS溶液的配制26
- 2.4.10 10%過硫酸銨(APS)溶液的配制26
- 2.4.11 10 × TBS溶液的配制26
- 2.4.12 1 × TBST工作液的配制26
- 2.4.13 5 % Western Blot封閉緩沖液的配制26
- 2.4.14 鼠尾膠原的制備26-27
- 2.4.15 HCl和NaOH溶液配制27
- 2.5 試驗方法27-37
- 2.5.1 SD大鼠腎小管上皮細(xì)胞原代培養(yǎng)及傳代培養(yǎng)27
- 2.5.2 試驗分組27
- 2.5.3 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡27-28
- 2.5.4 胞漿鈣離子濃度的檢測28-29
- 2.5.5 線粒體鈣離子濃度的檢測29-30
- 2.5.6 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣離子濃度的檢測30-31
- 2.5.7 IP_3含量的檢測31
- 2.5.8 蛋白質(zhì)免疫印跡試驗(Western Blot)31-33
- 2.5.9 熒光定量PCR33-36
- 2.5.10 統(tǒng)計學(xué)分析36-37
- 3 結(jié)果與分析37-59
- 3.1 鉛誘導(dǎo)大鼠腎小管上皮細(xì)胞胞漿鈣超載37-40
- 3.2 鉛暴露誘導(dǎo)大鼠腎小管上皮細(xì)胞不同區(qū)域鈣分布紊亂40-42
- 3.3 鉛暴露對大鼠腎小管上皮細(xì)胞線粒體鈣及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣水平的影響42-45
- 3.4 鉛誘導(dǎo)線粒體鈣超載的來源45-49
- 3.5 2-APB對鉛暴露所誘導(dǎo)胞內(nèi)鈣分布紊亂的影響49-53
- 3.6 鉛暴露對大鼠腎小管上皮細(xì)胞內(nèi)IP_3含量的影響53-54
- 3.7 鉛暴露對胞內(nèi)IP_3R-1 和IP_3R-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平的影響54-57
- 3.7.1 鉛暴露對IP_3R-1 和IP_3R-2 的mRNA表達(dá)水平的影響54-55
- 3.7.2 鉛暴露對IP_3R-1 和IP_3R-2 蛋白表達(dá)水平的影響55-57
- 3.8 2-APB或BAPTA-AM對鉛所誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的影響57-59
- 4 討論59-64
- 4.1 鉛暴露誘導(dǎo)大鼠腎小管上皮細(xì)胞鈣分布紊亂59-60
- 4.2 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)與鈣分布紊亂60-61
- 4.3 IP_3R通道介導(dǎo)的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣釋放61-62
- 4.4 鈣分布紊亂與細(xì)胞凋亡62-64
- 5 結(jié)論64-65
- 參考文獻(xiàn)65-74
- 致謝74
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