殼聚糖/藻酸鹽納米膜在促進小鼠全層損傷皮膚創(chuàng)面愈合中的作用
發(fā)布時間:2021-03-02 13:23
目的評價復合生物材料殼聚糖/藻酸鹽納米膜作為組織工程的細胞支架材料,通過促進小鼠骨髓間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)在其表面的粘附、遷移、增殖及分化,從而加速皮膚創(chuàng)面修復的效果。方法實驗動物為BALB/c小鼠,8周齡,于各小鼠背部制備皮膚缺損創(chuàng)面模型。實驗先分2組,實驗組小鼠背部創(chuàng)面以殼聚糖/藻酸鹽納米膜覆蓋,對照組不予該納米膜覆蓋創(chuàng)面,直接粘貼手術(shù)貼巾,并分別圍繞創(chuàng)緣皮下注射等量綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)標記的骨髓間充質(zhì)干細胞(GFP-MSCs),在術(shù)后進行小動物活體成像觀察綠色熒光蛋白信號強度,用流式細胞儀檢測陽性GFP-MSCs比例,并取創(chuàng)面新生組織行冰凍切片觀察GFP-MSCs生長情況;再分別設置空白對照組、納米膜組、MSCs注射組和納米膜+MSCs注射組,觀察術(shù)后各組小鼠創(chuàng)面愈合情況。結(jié)果實驗組小鼠術(shù)后第7天的創(chuàng)面GFP信號強度[(25.97±6.98)×104]明顯高于對照組[(6.00±2.84)×104,P<0.05];流式細胞儀檢測創(chuàng)面GFP-MSCs水平,術(shù)后第5天實驗組陽性...
【文章來源】:第三軍醫(yī)大學學報. 2015,37(21)北大核心
【文章頁數(shù)】:6 頁
【文章目錄】:
1 材料與方法
1.1實驗材料
1. 2 實驗儀器
1. 3 殼聚糖/ 藻酸鹽超薄游離納米膜的制備
1. 4 透射電鏡觀察納米膜層層自組裝結(jié)構(gòu)
1. 5 實驗動物及分組
1. 6 小鼠背部全層皮膚損傷模型制備
1. 7 GFP-MSCs在創(chuàng)面接種培養(yǎng)
1. 8 小動物活體成像觀察GFP-MSCs熒光信號強度
1. 9 流式細胞儀檢測
1. 10 冰凍切片組織學檢查
1. 11 創(chuàng)面愈合觀察
1. 12 統(tǒng)計學方法
2 結(jié)果
2. 1 透射電鏡觀察殼聚糖/ 藻酸鹽納米膜結(jié)構(gòu)
2. 2小動物活體成像檢測及GFP-MSCs熒光信號定量分析
2. 3 流式細胞儀檢測創(chuàng)面組織GFP-MSCs百分比
2. 4 冰凍切片組織學檢查
2. 5 各組小鼠在不同時間點創(chuàng)面愈合情況觀察及殘余創(chuàng)面比率統(tǒng)計
3 討論
【參考文獻】:
期刊論文
[1]OPN誘導小鼠MSCs向表皮細胞分化促進創(chuàng)面愈合的研究[J]. 王文平,李薇,陳亮,王珍祥,李世榮. 第三軍醫(yī)大學學報. 2015(07)
本文編號:3059337
【文章來源】:第三軍醫(yī)大學學報. 2015,37(21)北大核心
【文章頁數(shù)】:6 頁
【文章目錄】:
1 材料與方法
1.1實驗材料
1. 2 實驗儀器
1. 3 殼聚糖/ 藻酸鹽超薄游離納米膜的制備
1. 4 透射電鏡觀察納米膜層層自組裝結(jié)構(gòu)
1. 5 實驗動物及分組
1. 6 小鼠背部全層皮膚損傷模型制備
1. 7 GFP-MSCs在創(chuàng)面接種培養(yǎng)
1. 8 小動物活體成像觀察GFP-MSCs熒光信號強度
1. 9 流式細胞儀檢測
1. 10 冰凍切片組織學檢查
1. 11 創(chuàng)面愈合觀察
1. 12 統(tǒng)計學方法
2 結(jié)果
2. 1 透射電鏡觀察殼聚糖/ 藻酸鹽納米膜結(jié)構(gòu)
2. 2小動物活體成像檢測及GFP-MSCs熒光信號定量分析
2. 3 流式細胞儀檢測創(chuàng)面組織GFP-MSCs百分比
2. 4 冰凍切片組織學檢查
2. 5 各組小鼠在不同時間點創(chuàng)面愈合情況觀察及殘余創(chuàng)面比率統(tǒng)計
3 討論
【參考文獻】:
期刊論文
[1]OPN誘導小鼠MSCs向表皮細胞分化促進創(chuàng)面愈合的研究[J]. 王文平,李薇,陳亮,王珍祥,李世榮. 第三軍醫(yī)大學學報. 2015(07)
本文編號:3059337
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