<正>目的:1、本實驗通過靜電滴注法,制備PLGA及加入不同比例HA的細胞微載體,找到最佳制備條件。2、rBMSCs與細胞微載體共培養(yǎng)體系中,加入普通生長因子及重組生長因子,檢測rBMSCs成骨活性的變化。方法:1、光鏡下觀察,通過調(diào)節(jié)電壓、針頭內(nèi)徑及距離等條件制備出相應微載體的形狀及大小。2

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圖2.2rBMSCs胞增長曲線

圖2.2rBMSCs胞增長曲線骨誘導分化檢測2.3所示，可見經(jīng)成骨誘導液誘導培養(yǎng)后，rBMSCs細胞內(nèi)明顯的時間增長，鈣鹽沉積增多。說明rBMSCs在一定體外培養(yǎng)條件下化的潛能。

圖2.3rBMSCs成骨誘導茜紅染色（×100）圖片加標尺

圖2.2rBMSCs胞增長曲線2.3.3成骨誘導分化檢測如圖2.3所示，可見經(jīng)成骨誘導液誘導培養(yǎng)后，rBMSCs細胞內(nèi)明顯的鈣鹽沉積，且隨誘導時間增長，鈣鹽沉積增多。說明rBMSCs在一定體外培養(yǎng)條件下具有向成骨細胞分化的潛能。

圖2.3rBMSCs成脂誘導油紅O染色（×200）圖片加標尺

第2章兔骨髓間充質(zhì)干胞（rBMSCs）的分離、培養(yǎng)及定誘導分化檢測2.4所示，可見經(jīng)過成脂誘導液誘導培養(yǎng)后，rBMSCs細胞油紅O染色變成紅色。說明rBMSCs在一定體外培養(yǎng)條件下潛能。

圖2.2DOPA-IGF1表達和純化結果SDS-PAGE電泳結果：

圖2.2DOPA-IGF1表達和純化結果SDS-PAGE電泳結果：1ProteinMarker；2誘導前；3誘導后；4上清；5沉淀；6-9洗滌；10洗脫

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