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益生菌對新生大鼠壞死性小腸結腸炎的影響研究

發(fā)布時間:2017-05-02 18:04

  本文關鍵詞:益生菌對新生大鼠壞死性小腸結腸炎的影響研究,,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:壞死性小腸結腸炎(NEC)是新生動物和嬰兒常見的急性胃腸道疾病,以回腸末端的病變最為嚴重,發(fā)病率和死亡率均很高。本病盡管經過幾十年的研究,但其發(fā)病機制尚不清楚,確診困難。為了探究益生菌對壞死性小腸結腸炎的影響,本試驗建立了新生大鼠壞死性小腸結腸炎動物模型,并觀測了補充益生菌對NEC新生大鼠腸壁中細胞因子IL-6、CXCL1、TNF-α、 PAF和ITF的影響。方法:96只新生Wistar大鼠,隨機分成3組:對照組、NEC組和益生菌組。于試驗的第4 d,取大鼠回腸末端腸管觀察其病理組織學變化;通過實時定量PCR法和ELISA法檢測回盲部腸組織中IL-6、CXCL1、TNF-α、PAF口ITF的表達水平。結果:NEC組的病理組織學評分極顯著高于對照組(P0.01),益生菌組的病理組織學評分極顯著低于NEC組(P0.01)。NEC組的IL-6和CXCL1 mRNA相對表達量極顯著高于對照組(P0.01),益生菌組IL-6和CXCL1 mRNA相對表達量極顯著低于NEC組(P0.01)并且益生菌組與對照組間IL-6和CXCL1 mRNA相對表達量無差異性(P0.05);NEC組TNF-α mRNA相對表達量顯著高于對照組(P0.05),但益生菌組與NEC組或對照組間mRNA相對表達量無顯著差異(P0.05);在三個試驗組間,PAF mRNA相對表達量差異不顯著(P0.05);NEC組和益生菌組ITF mRNA相對表達量極顯著低于對照組(P0.01),但益生菌組和NEC組間ITF mRNA相對表達量無差異性(P0.05)。NEC組IL-6、CXCL1和TNF-α的蛋白含量極顯著或顯著高于對照組(P0.0 1或P0.05),益生菌組IL-6、CXCL1和TNF-α的蛋白含量極顯著或顯著低于NEC組(P0.01或P0.05);NEC組和益生菌組PAF的蛋白含量極顯著低于對照組(P0.01),但益生菌組和NEC組間PAF的蛋白含量無差異性(P0.05);在三個試驗組間,ITF的蛋白水平差異不顯著(P0.05)。結論:益生菌可通過調節(jié)腸壁IL-6、CXCL1和TNF-α的基因mRNA和蛋白的表達,降低腸壁的炎癥反應,但對ITF和PAF的影響不明顯,其作用機理有待于進一步研究。
【關鍵詞】:益生菌 壞死性小腸結腸炎 大鼠 炎性細胞因子 腸三葉因子
【學位授予單位】:揚州大學
【學位級別】:碩士
【學位授予年份】:2015
【分類號】:S857.31;R722
【目錄】:
  • 摘要3-4
  • Abstract4-11
  • 符號說明11-12
  • 第一部分 文獻綜述12-24
  • 第一章 壞死性小腸結腸炎的研究進展12-19
  • 1 NEC的病因12-14
  • 1.1 早產12-13
  • 1.2 腸道致病菌定植13
  • 1.3 喂養(yǎng)不當13-14
  • 1.4 腸壁缺血、缺氧和再灌注損傷14
  • 2 NEC的致病因子及相關因子14-16
  • 2.1 白介素614-15
  • 2.2 白介素815
  • 2.3 腫瘤壞死因子α15
  • 2.4 血小板活化因子15-16
  • 2.5 腸三葉因子16
  • 3 NEC的診斷16-17
  • 3.1 診斷標準16-17
  • 3.2 診斷方法17
  • 4 NEC的治療17-19
  • 4.1 保守治療17-18
  • 4.2 外科治療18-19
  • 5 NEC的預防19
  • 第二章 益生菌對NEC防治作用的研究19-24
  • 1 益生菌的菌種19-20
  • 2 益生菌的生理學作用及作用機理20-21
  • 2.1 對致病菌的競爭排斥作用20
  • 2.2 增強腸上皮屏障功能20
  • 2.3 產生抗菌類化學物質20-21
  • 2.4 調節(jié)宿主免疫功能21
  • 3 益生菌對NEC的防治作用21-22
  • 4 課題研究的意義22-24
  • 第二部分 試驗研究24-58
  • 試驗一 新生大鼠壞死性小腸結腸炎模型的建立24-35
  • 1 材料24-26
  • 1.1 試驗動物及分組24
  • 1.2 主要儀器24
  • 1.3 主要試劑24-25
  • 1.4 相關試劑的配制25-26
  • 1.4.1 配方乳的配制25
  • 1.4.2 脂多糖(LPS)的配制25
  • 1.4.3 抗凝管的制備25
  • 1.4.4 10%中性福爾馬林固定液的制備25
  • 1.4.5 2.5%戊二醛固定液的配制25-26
  • 1.4.6 梯度酒精的配制26
  • 1.4.7 0.5%氨水酒精溶液的配制26
  • 1.4.8 0.5%鹽酸酒精溶液的配制26
  • 1.4.9 伊紅染色液的配制26
  • 2 方法26-28
  • 2.1 新生大鼠壞死性小腸結腸炎模型的建立26-27
  • 2.1.1 造模方法26
  • 2.1.2 試驗分組26-27
  • 2.2 樣品的采集與固定27
  • 2.3 石蠟切片的制作27-28
  • 2.3.1 沖洗、脫水和透明27
  • 2.3.2 浸蠟、包埋與修蠟27
  • 2.3.3 切片、烤片27
  • 2.3.4 HE染色27-28
  • 2.4 掃描電鏡28
  • 2.4.1 沖洗28
  • 2.4.2 脫水28
  • 2.4.3 干燥28
  • 2.4.4 粘樣28
  • 2.4.5 鍍金28
  • 2.4.6 觀察28
  • 2.5 數據處理28
  • 3 結果28-33
  • 3.1 增重29
  • 3.2 病理學觀察29-30
  • 3.3 血液學變化30-31
  • 3.4 病理組織學變化31-32
  • 3.5 病理學評分32
  • 3.6 超微結構變化32-33
  • 4 討論33-35
  • 試驗二 益生菌對NEC大鼠腸壁病理組織學的影響35-44
  • 1 材料35
  • 1.1 試驗動物及分組35
  • 1.2 主要儀器35
  • 1.3 主要試劑35
  • 1.4 相關試劑的配制35
  • 1.4.1 益生菌的配制35
  • 1.4.2 其他試劑的配制35
  • 2 方法35-36
  • 2.1 試驗分組36
  • 2.2 樣品的采集和固定36
  • 2.3 石蠟切片的制作36
  • 2.4 掃描電鏡36
  • 2.5 數據處理36
  • 3 結果36-42
  • 3.1 增重36-37
  • 3.2 病理學觀察37-38
  • 3.3 血液學變化38-39
  • 3.4 病理組織學變化39-40
  • 3.5 病理學評分40-41
  • 3.6 超微結構變化41-42
  • 4 討論42-44
  • 試驗三 益生菌對NEC大鼠腸壁中ITF和相關細胞因子表達的影響44-58
  • 1 材料44-45
  • 1.1 試驗動物及分組44
  • 1.2 主要儀器44
  • 1.3 主要試劑44
  • 1.4 相關試劑的配制44-45
  • 1.4.1 0.1% DEPC水的配制44-45
  • 1.4.2 50×TAE的配制45
  • 2 方法45-48
  • 2.1 樣品采集45
  • 2.2 熒光實時定量PCR法檢測腸壁組織中相關基因的mRNA表達45-47
  • 2.2.1 引物設計45-46
  • 2.2.2 總RNA提取46
  • 2.2.3 RNA濃度和完整性檢測46
  • 2.2.4 cDNA合成46-47
  • 2.2.5 cDNA濃度調整47
  • 2.2.6 RT-PCR條件47
  • 2.2.7 基因相對表達量的計算47
  • 2.3 ELISA法檢測腸壁組織中相關因子蛋白的表達量47-48
  • 2.3.1 試驗材料48
  • 2.3.2 方法48
  • 2.4 數據處理48
  • 3 結果48-55
  • 3.1 總RNA提取結果48-49
  • 3.2 引物特異性49-50
  • 3.3 腸壁組織中IL-6、CXCL1、TNF-α、PAF和ITF基因相對表達量的變化50-53
  • 3.3.1 腸壁組織中IL-6 mRNA相對表達量的變化50-51
  • 3.3.2 腸壁組織中CXCL1 mRNA相對表達量的變化51
  • 3.3.3 腸壁組織中TNF-α mRNA相對表達量的變化51-52
  • 3.3.4 腸壁組織中PAF mRNA相對表達量的變化52
  • 3.3.5 腸壁組織中ITF mRNA相對表達量的變化52-53
  • 3.4 腸壁組織中相關基因蛋白的表達情況53-55
  • 3.4.1 腸壁組織中IL-6含量的變化53
  • 3.4.2 腸壁組織中CXCL1含量的變化53-54
  • 3.4.3 腸壁組織中TNF-α含量的變化54
  • 3.4.4 腸壁組織中PAF含量的變化54-55
  • 3.4.5 腸壁組織中ITF含量的變化55
  • 4 討論55-58
  • 全文總結58-59
  • 參考文獻59-68
  • 致謝68-69
  • 攻讀學位期間發(fā)表的學術論文69-70

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本文編號:341414


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