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釀酒酵母菌誘導(dǎo)綿羊瘤胃上皮細(xì)胞SBD-1表達(dá)及其信號通路初步研究

發(fā)布時間:2017-07-27 01:11

  本文關(guān)鍵詞:釀酒酵母菌誘導(dǎo)綿羊瘤胃上皮細(xì)胞SBD-1表達(dá)及其信號通路初步研究


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【摘要】:防御素(Defensins)是生物界中發(fā)現(xiàn)的一類富含半胱氨酸的陽離子內(nèi)源性抗菌肽,具有廣譜的抗微生物活性,在生物體的免疫反應(yīng)中發(fā)揮著重要的作用。本研究選用益生性釀酒酵母菌研究其對體外培養(yǎng)的綿羊瘤胃上皮細(xì)胞(Ruminal Epithelial Cells, RECs)p-防御素-1(Sheep-Beta-Defensin-1, SBD-1)表達(dá)的影響及其可能的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。首先建立綿羊RECs培養(yǎng)體系作為體外試驗(yàn)?zāi)P?用不同濃度釀酒酵母菌對體外培養(yǎng)的綿羊RECs刺激2 h后分別進(jìn)行不同時間的誘導(dǎo)培養(yǎng),利用實(shí)時熒光定量逆轉(zhuǎn)錄PCR技術(shù)(Realtime fluorescence quantitative PCR, RT-qPCR)和酶聯(lián)免疫吸附測定(Enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)試驗(yàn)研究接受刺激后RECs SBD-1 mRNA和蛋白表達(dá)的差異,以確定釀酒酵母菌對SBD-1表達(dá)影響的量效和時效關(guān)系。然后選用誘導(dǎo)SBD-1表達(dá)最高的菌液濃度和誘導(dǎo)培養(yǎng)時間進(jìn)行后續(xù)的信號通路初步研究,采用核因子-kB (Nuclear.factor-kappa B, NF-kB)和絲裂原活化蛋白激酶(Mitogen-activated protein kinases, MAPKs)的4種特異性抑制劑通過單獨(dú)或組合對各通路中的關(guān)鍵因子進(jìn)行抑制,利用RT-qPCR技術(shù)檢測抑制前后SBD-1 mRNA的表達(dá)量及其信號通路中各因子在釀酒酵母菌刺激前后(TLR-2、MyD88、NF-kB、P38、 JNK、ERK1/2) mRNA的表達(dá)變化。結(jié)果表明:無論在mRNA還是蛋白水平,釀酒酵母菌均能夠誘導(dǎo)綿羊RECsSBD-1的表達(dá),且菌液濃度為5.2×107CFU·mL-1誘導(dǎo)培養(yǎng)RECs 12 h時,SBD-1的表達(dá)量達(dá)到最高。4種特異性抑制劑無論是單獨(dú)還是組合對各通路進(jìn)行抑制,其抑制效果依次表現(xiàn)為SB202190 PDTC SP600125 PD98059,且信號通路中各因子mRNA在釀酒酵母菌刺激后均有變化。因此,釀酒酵母菌誘導(dǎo)綿羊RECs SBD-1的表達(dá)可能與TLR2-MyD88-NF-kB/MAPKs通路有關(guān),但可能以TLR2-MyD88-MAPKs中的TLR2-MyD88-P38通路為主。
【關(guān)鍵詞】:β-防御素-1 瘤胃上皮細(xì)胞 釀酒酵母菌 實(shí)時熒光定量PCR 酶聯(lián)免疫吸附測定 抑制劑 信號通路 綿羊
【學(xué)位授予單位】:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2016
【分類號】:S826
【目錄】:
  • 摘要4-5
  • Abstract5-10
  • 縮略語表10-11
  • 1 引言11-19
  • 1.1 抗菌肽11
  • 1.2 防御素11-12
  • 1.3 β-防御素12-13
  • 1.3.1 β-防御素的來源和分布12
  • 1.3.2 β-防御素的分子結(jié)構(gòu)特征12-13
  • 1.3.3 β-防御素的生物學(xué)活性13
  • 1.4 益生性酵母菌13-14
  • 1.5 益生菌誘導(dǎo)防御素表達(dá)的研究進(jìn)展14-15
  • 1.6 NF-kB及MAPKs信號通路15-16
  • 1.7 研究目的及意義16-18
  • 1.8 技術(shù)路線18-19
  • 2 試驗(yàn)內(nèi)容19-26
  • 2.1 材料與方法19
  • 2.1.1 試驗(yàn)材料19
  • 2.1.2 儀器與試劑19
  • 2.2 試驗(yàn)方法19-25
  • 2.2.1 綿羊RECs的培養(yǎng)和鑒定19-20
  • 2.2.2 釀酒酵母菌的培養(yǎng)20-21
  • 2.2.3 釀酒酵母菌誘導(dǎo)SBD-1表達(dá)及其信號通路初步研究21-22
  • 2.2.4 綿羊RECs總RNA的提取22-23
  • 2.2.5 總RNA的反轉(zhuǎn)錄23-24
  • 2.2.6 RT-qPCR24-25
  • 2.2.7 RT-qPCR標(biāo)準(zhǔn)曲線建立25
  • 2.2.8 SBD-1 mRNA表達(dá)水平的計(jì)算25
  • 2.2.9 統(tǒng)計(jì)分析25
  • 2.3 ELISA檢測共培養(yǎng)上清中SBD-1蛋白的表達(dá)及標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制25-26
  • 3 結(jié)果26-36
  • 3.1 細(xì)胞培養(yǎng)26
  • 3.2 綿羊RECs的鑒定26-27
  • 3.3 總RNA純度及質(zhì)量分析27-28
  • 3.4 標(biāo)準(zhǔn)品的鑒定28
  • 3.5 RT-qPCR結(jié)果28-30
  • 3.5.1 SBD-1基因和β-actin基因RT-qPCR擴(kuò)增曲線及熔解曲線28-30
  • 3.5.2 SBD-1基因和β-actin基因PCR擴(kuò)增效率曲線30
  • 3.6 釀酒酵母菌對綿羊RECs SBD-1 mRNA相對表達(dá)量的影響30-31
  • 3.7 釀酒酵母菌對綿羊RECs SBD-1 蛋白相對表達(dá)量的影響31-32
  • 3.7.1 ELISA試驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)曲線31-32
  • 3.7.2 釀酒酵母菌誘導(dǎo)RECs培養(yǎng)上清中SBD-1的蛋白表達(dá)檢測結(jié)果32
  • 3.8 釀酒酵母菌誘導(dǎo)SBD-1表達(dá)的信號通路初步研究結(jié)果32-36
  • 4 討論36-40
  • 4.1 釀酒酵母菌誘導(dǎo)綿羊RECs SBD-1的表達(dá)36-37
  • 4.2 釀酒酵母菌誘導(dǎo)綿羊RECs SBD-1表達(dá)的信號通路初步研究37-40
  • 5 結(jié)論40-41
  • 6 展望41-42
  • 致謝42-43
  • 參考文獻(xiàn)43-51
  • 作者簡介51

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本文編號:579176

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