禽致病性大腸桿菌信號分子AI-2受體檢測方法建立及其靶蛋白鑒定
【圖文】:
圖 1:細(xì)菌密度感應(yīng)(QS)信號的四個典型傳導(dǎo)路線[17]Fig 1: Canonical bacterial quorum-sensing (QS) circuitsA:革蘭氏陽性菌 QS 系統(tǒng)的 AIP 分子雙組分信號傳導(dǎo);B:革蘭氏陽性菌 QS 系統(tǒng)的 AIP 結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子傳導(dǎo);C:在革蘭氏陰性菌 QS 系統(tǒng)的 LuxI/LuxR 型小分子傳導(dǎo)系統(tǒng);D:在革蘭氏陰性菌 QS 系統(tǒng)的雙組分信號傳遞。革蘭氏陽性菌產(chǎn)生的自誘導(dǎo)物是一種小肽,被稱為自誘導(dǎo)肽(Autoinducingpeptides, AIPs)。革蘭氏陽性菌的 QS 系統(tǒng)通過對 AIPs 的產(chǎn)生、識別和生理反應(yīng)的控制,來實現(xiàn)其調(diào)控作用。在許多革蘭氏陽性菌中,寡肽信號分子 AIPs 是由膜上的雙組分信號轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)識別(圖 1A)[19-21]。革蘭氏陽性菌的 QS 系統(tǒng)的 AIPs 通常是先形成前體(proAIPs),而編碼 proAIPs的基因大多分散在基因組中[19, 22-27]。AIPs 在胞內(nèi)產(chǎn)生,隨即被傳遞并外排出胞膜。當(dāng) AIP 的胞外濃度高時(發(fā)生于 HCD),它會與胞膜上一種雙組分組氨酸激酶受體結(jié)合。通常,AIP 結(jié)合后激活受體的激酶活性,使其磷酸化,并將磷酸基團(tuán)傳遞給胞質(zhì)內(nèi)的相應(yīng)調(diào)控分子。這種一系列的磷酸化反應(yīng)能夠調(diào)節(jié)與激活 QS 系統(tǒng)中的基因轉(zhuǎn)錄(圖 1A)。在某些革蘭氏陽性細(xì)菌的 QS 中,AIPs 會被輸送回進(jìn)細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì),進(jìn)而與胞質(zhì)中的轉(zhuǎn)錄因子相互作用,以調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子的活性,進(jìn)而調(diào)節(jié)基因表達(dá)的變
圖 2:革蘭氏陰性菌不同菌種產(chǎn)生的 AHL 同系物Fig 2: Homoserine lactone autoinducers produced by different Gram-negative bacteria注:LuxI、LuxM、RhlI、LasL 均為 LuxR 的同源蛋白當(dāng)前已有一些 AHL 介導(dǎo)的群體感應(yīng)系統(tǒng)被研究的很深入,如綠膿桿菌的LasI/LasR-RhlI/RhlR 系統(tǒng)被證實控制毒力因子基因的表達(dá)和生物被膜的形成[54-57],根瘤農(nóng)桿菌的 TraI/TraR 系統(tǒng)控制著向植物宿主傳送致癌 Ti 質(zhì)粒[44, 58, 59],玉米細(xì)菌性枯萎病菌的 EsaI/EsaR 系統(tǒng)控制多糖的合成、粘附和對宿主細(xì)胞的定植[60, 61]。2.2 細(xì)菌種間的密度感應(yīng)系統(tǒng)—LuxS/AI-2 型密度感應(yīng)系統(tǒng)雖然 LuxI/LuxR 型系統(tǒng)已在大多數(shù)革蘭氏陰性被證實,但對某些弧菌(如哈維弧菌和霍亂弧菌)的研究發(fā)現(xiàn)它們的 QS 系統(tǒng)不符合 LuxI/LuxR 型系統(tǒng)的特性。這兩種弧菌(哈維弧菌和霍亂弧菌)既沒有 LuxI 同源基因,也不存在 LuxR 同源基因。然而,哈維弧菌和霍亂弧菌卻存在群體感應(yīng)系統(tǒng)所需的組件,,并且兩者高度類似[62-66],這提示可能存在其他類型的 QS 系統(tǒng)。起初,人們在對哈維弧菌的生物發(fā)光研究中首次發(fā)現(xiàn)了 AI-2[67]。進(jìn)一步研究表明 AI-2 廣泛存在于革蘭氏陽性和革蘭氏陰性細(xì)菌以及在
【學(xué)位授予單位】:安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2015
【分類號】:S852.61
【相似文獻(xiàn)】
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本文編號:2538939
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