本文選題：雞 + PGCs�。� 參考：《揚州大學(xué)》2017年博士論文

【摘要】：PGCs(Primordial germ cells,PGCs)是精子和卵子的祖細胞,能夠?qū)⑦z傳信息從親代傳遞給子代的干細胞,保證了種系間遺傳物質(zhì)的穩(wěn)定傳遞。近年來,通過探究PGCs發(fā)生的具體過程,揭示生殖細胞發(fā)育過程中關(guān)鍵基因的分子作用及其機制已逐漸成為生殖生物學(xué)領(lǐng)域中的研究熱點。研究PGCs分化具有重要意義:(1)對畜牧學(xué)而言,研究動物生殖干細胞分化過程有助于解決畜牧種質(zhì)的選配選育問題;(2)對人類而言,詳細了解生殖分化機理能夠為不孕不育等疾病提供根本解決方法。然而無論是解決哪方面的問題,都需要建立在全面了解生殖過程中細胞發(fā)育事件和相關(guān)基因作用機制的基礎(chǔ)上,只有這樣才能從根本上解決畜牧學(xué)和人類生殖相關(guān)性狀的相關(guān)問題。然而,目前由于對PGCs的發(fā)育調(diào)控機制缺乏深入探索,導(dǎo)致體外誘導(dǎo)效率低下,難以獲得數(shù)量多且質(zhì)量高的PGCs,極大的限制了 PGCs的利用;因此,亟需對PGCs的發(fā)生發(fā)育機理進行深入的研究�；诖�,本課題組前期已經(jīng)對體內(nèi)正常發(fā)育過程中的胚胎干細胞(Embryonic stem cells,ESCs)、PGCs 和精原干細胞(Spermatogonial stem cells,SSCs)進行了全基因組轉(zhuǎn)錄組測序,發(fā)現(xiàn)了一些影響PGCs形成的關(guān)鍵基因和關(guān)鍵信號通路,而C2EIP(Chromosome 2,Expression In PGCs)就是其中一個最具有顯著性差異表達的關(guān)鍵基因;C2EIP在PGCs中高表達,而在ESCs和SSCs中低表達,推測該基因可能參與了 PGCs的發(fā)育調(diào)控。為了系統(tǒng)的研究C2EIP基因的功能。本研究中,我們以家雞為研究對象探索C2EIP在PGCs形成過程中的功能;利用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)研究C2EIP基因的作用以及研究C2EIP在不同細胞中差異表達的影響因素;利用GST-PullDown,質(zhì)譜分析,免疫共沉淀等實驗技術(shù)研究C2EIP的分子調(diào)節(jié)機制。研究結(jié)果如下:(1)C2EIP的發(fā)現(xiàn)、克隆及生物信息學(xué)分析對ESCs、PGCs和SSCs的轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果進一步分析發(fā)現(xiàn)C2EIP在PGCs中特異高表達,在ESCs和SSCs中不表達,RT-PCR驗證結(jié)果與轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果一致;生物信息學(xué)預(yù)測結(jié)果發(fā)現(xiàn)C2EIP主要在細胞質(zhì)中表達,存在磷酸化和糖基化位點;C2EIP CDS序列在不同物種間保守型較差,禽類中保守性較高;C2EIP具有泛素化連接酶E3和磷酸化雷帕霉素靶蛋白復(fù)合體功能,初步推斷C2EIP行使類似酶的功能;(2)CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)介導(dǎo)家雞C2EIP敲除體系建立根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫提供的C2EIPCDS序列,設(shè)計3個gRNA靶位點,命名為gRNA1,gRNA2,和gRNA3并連入改造后的VK001-08載體中,通過SSA活性檢測發(fā)現(xiàn)gRNA3對靶位點的敲除活性(Value:0.6924±0.07)是對照組(Value:0.3724±0.12)的近 2 倍(P0.01),但 gRNA1(Value:0.3813±0.27)和gRNA2(Value:0.3718±0.09)對相應(yīng)靶位點的敲除活性與對照組(Value:0.3912±0.32)之間相比沒有差異(P0.05),即沒有敲除活性;將CRISPR/Cas9-gRNA3轉(zhuǎn)染生長狀態(tài)良好的DF-1細胞后提取DNA,通過T7E1酶切檢測發(fā)現(xiàn)gRNA3在DF-1細胞中對C2EIP的敲除效率為27%,TA克隆測序結(jié)果表明30個測序菌液中有8個菌液出現(xiàn)不同數(shù)目的堿基缺失或增加,初步估計基因敲除效率為26%;將CRISPR/Cas9-gRNA3轉(zhuǎn)染生長狀態(tài)良好的ESCs后進行T7EI酶切檢測發(fā)現(xiàn)敲除效率為20%,同時CRISPR/Cas9-gRNA3能夠在雞胚中順利表達并在心臟表達水平最高,且載體在雞胚中整合后基因敲除效率達15%;(3)體內(nèi)外研究C2EIP在PGCs形成過程中的功能克隆C2EIPCDS全長,并成功構(gòu)建PCDNA3.0-C2EIP過表達載體和C2EIP-N1融合表達載體;C2EIP-N1融合表達載體轉(zhuǎn)染DF-1后觀察綠色熒光蛋白表達位置,發(fā)現(xiàn)C2EIP在細胞質(zhì)中表達;針對C2EIPCDS序列,設(shè)計抗原表位,合成多肽并腹腔免疫小鼠制備單克隆抗體,IFA檢測抗體效價為1:10,且抗體抗原反應(yīng)也發(fā)生在細胞質(zhì)中;通過體內(nèi)和體外兩個水平研究C2EIP在PGCs形成過程中的功能,結(jié)果發(fā)現(xiàn):體外實驗過程中,在過表達組誘導(dǎo)6天后能出現(xiàn)生殖樣細胞,且生殖標(biāo)記基因有顯著性的上調(diào)表達(P0.01),敲除組在相同的情況下則不能。流式細胞分選結(jié)果表明基因敲除后CVH陽性細胞數(shù)量減少(4.8±0.16%),過表達反而增加(18.6±0.13%),熒光定量實驗結(jié)果也顯示C2EIP敲除后PGCs的標(biāo)記基因Cvh的表達(Value:2.8254±0.31)與正常組(Value:3.1425±0.66)相比出現(xiàn)了顯著的下調(diào)(P0.01);體內(nèi)實驗過程中,注射過表達載體后的雞胚發(fā)育與對照相比沒有顯著差異,但是在第4.5天Cvh的表達顯著提高(P0.01)。對4.5天的雞胚進行冰凍切片后利用Cvh和C-KIT特異抗體進行免疫組化實驗,結(jié)果表明注射敲除載體后產(chǎn)生的PGCs數(shù)量顯著的低于正常發(fā)育組和注射過表達載體的實驗組。正常組和過表達組中腎發(fā)育完全可見,而在敲除組中無法觀察到完整的中腎結(jié)構(gòu);(4)探索影響C2EIP差異表達的因素克隆C2EIP啟動子序列并連入EGFP-N1載體構(gòu)建PC2EIP-EGFP表達載體,瞬時轉(zhuǎn)染DF-1后可以觀察到EGFP綠色熒光,這就說明克隆的C2EIP啟動子區(qū)域具有啟動活性;通過5'端逐步缺失技術(shù)克隆C2EIP啟動子不同長度片段,并構(gòu)建PGL3/787(-891～-94bp)、PGL3/588(-682～-94bp)、PGL3/374(-468～-94bp)、PGL3/170(-264～-94bp)載體,并通過雙熒光素酶報告系統(tǒng)發(fā)現(xiàn)C2EIP啟動子核心區(qū)域為-264～-94bp;對啟動子核心區(qū)域進行轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點預(yù)測發(fā)現(xiàn)STAT1、STAT10、Sox17、Sox2和Klf5轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點,對這些位點進行點突變實驗同時構(gòu)建相應(yīng)轉(zhuǎn)錄因子過表達載體,通過雙熒光素報告系統(tǒng)檢測發(fā)現(xiàn)STAT1能夠正向調(diào)節(jié)C2EIP啟動子活性;STAT10,Sox17,Sox2和Klf5負向調(diào)節(jié)C2EIP啟動子活性;在轉(zhuǎn)染了 PGL3/787載體的DF-1細胞的培養(yǎng)基中分別添加TSA和5Azacd,雙熒光素報告系統(tǒng)檢測結(jié)果表明:降低DNA甲基化水平和提高組蛋白乙酰化水平能夠提高C2EIP啟動子活性;(5)研究C2EIP調(diào)節(jié)PGCs形成過程的分子調(diào)控機制構(gòu)建C2EIP的原核融合表達載體,并進行IPTG誘導(dǎo)表達和純化,C2EIP原核融合表達載體能夠在原核表達菌株中順利表達;通過GST-PullDown和質(zhì)譜分析成功獲取與C2EIP蛋白的互作蛋白,分別是:PTCH2,KRT75,H2B-Ⅷ,KRT12,Histone H3,SLC25A6,LYZ,VDAC2,Histone H1,EF-1α,KRT19;通過Western Blot,Co-IP和間接免疫熒光驗證了 GST-Pull Down互作的準(zhǔn)確性并確認C2EIP與PTCH2蛋白在細胞內(nèi)膜發(fā)生互作形成復(fù)合物;通過Co-IP技術(shù)對體外和體內(nèi)不同C2EIP處理下的PTCH2進行沉淀并通過Western Blot檢測PTCH2的磷酸化和泛素化水平變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn):高表達C2EIP能夠降低PTCH2蛋白的磷酸化水平和降低PTCH2蛋白泛素化水平;成功構(gòu)建PTCH2干擾表達載體 shRNA-PTCH2-1,shRNA-PTCH2-2,shRNA-PTCH2-3;同時驗證出shRNA-PTCH2-3對PTCH2蛋白具有較好的抑制效果;通過體內(nèi)和體外驗證實驗發(fā)現(xiàn):抑制 HH 信號通路能夠抑制 PGCs 的形成(RA:3.8±0.23%;RA+shRNA-IHH:12.9±0.08%;P0.01),反之,激活HH信號通路則能夠促進PGCs的形成(RA:3.8±0.23%;RA+shRNA-pTCH2:15.6±0.17%;P0.01),結(jié)合上述實驗結(jié)果分析發(fā)現(xiàn) IHH 與 PTCH2 蛋白結(jié)合,改變PTCH2活性成分表達水平從而調(diào)節(jié)HH信號參與PGCs形成,而C2EIP也可以與PTCH2結(jié)合并通過泛素化和去磷酸化修飾改變PTCH2蛋白的活性成分表達水平,因此可以推斷C2EIP與通過PTCH2激活HH信號通路,調(diào)節(jié)PGCs的形成。
[Abstract]:PGCs ( PGCs ) is the progenitor cell of sperm and ovum , which can transfer the genetic information from the parent to the progeny ' s stem cells , thus ensuring the stable transmission of the genetic material between species . In recent years , it is important to study the mechanism of PGCs . ( 1 ) It was found that C2EIP was highly expressed in PGCs . The results showed that C2EIP was highly conserved among different species . In vivo and in vitro , the expression of the marker gene Cvh of PGCs was significantly lower than that in the normal group ( P0.01 ) . The expression vector shRNA - PTCH2 - 1 , shRNA - PTCH2 - 2 and shRNA - PTCH2 - 3 were successfully constructed by means of Western Blot , Co - IP and indirect immunofluorescence . 3 . 8 鹵 0.23 % ; RA + shRNA - pTCH2 : 15.6 鹵 0.17 % ; P0.01 ) . In combination with the above experimental results , it was found that IHH binds to PTCH2 protein , alters the expression level of PTCH2 active ingredient to modulate the expression level of the HH signal in PGCs , and C2EIP can also bind to PTCH2 and alter the expression level of the active ingredient of PTCH2 protein by ubiquitination and dephosphorylation modification . Therefore , it is concluded that C2EIP can be used to activate the HH signal path through PTCH2 and regulate the formation of PGCs .
【學(xué)位授予單位】：揚州大學(xué)
【學(xué)位級別】：博士
【學(xué)位授予年份】：2017
【分類號】：S831
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本文編號：2045609