華蕉(Cavendish,AAA)類香蕉品種間的分子標記研究
發(fā)布時間:2022-12-18 06:52
香蕉(Musa spp)是我國熱帶地區(qū)最大的水果品種,分類上屬芭蕉科(Musaceae)芭蕉屬(Musa L.),是芭蕉屬下食用香蕉的總稱。華蕉(Cavendish, AAA),又稱香牙蕉,是由尖葉蕉(M acuminata, AA)種內自然雜交進化選育而來的三倍體品種。華蕉不像通過雜交育種方式培育出的品種那樣譜系清楚,因而華蕉類品種的名稱多有同一品種多個名稱的情況存在,給華蕉類品種的培育和生產開發(fā)造成了一定程度混亂和困擾。 近幾年來,RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA)分子標記技術已廣泛應用于香蕉的分子育種和種間的多樣性分析,但RAPD標記所具有重復性差、穩(wěn)定性低的缺點,使得IRAPD標記的分析結果在一定程度上具有不確定性。因此,SCAR (sequence characterized amplified regions)分子標記技術在RAPD標記的基礎上發(fā)展起來,不僅克服了RAPD標記的缺點,還具備RAPD標記的優(yōu)點,并在水稻、茶樹等作物不同品種區(qū)分中進行了成功應用,但未見有用于華蕉類品種區(qū)分和多樣性分析方面的研究報道。 本...
【文章頁數(shù)】:57 頁
【學位級別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
1 前言
1.1 香蕉的概況
1.1.1 香蕉的生物學特性
1.1.2 香蕉的起源
1.1.3 我國香蕉種質資源的分布
1.1.4 香蕉的品種與分類
1.2 分子標記的簡介
1.3 RAPD分子標記技術的簡介與在香蕉種質資源中的研究應用
1.3.1 RAPD技術的基本原理
1.3.2 RAPD技術的特點
1.3.3 RAPD標記技術在香蕉中的應用
1.4 SCAR分子標記技術的簡介與應用
1.4.1 SCAR技術的基本原理
1.4.2 SCAR技術的特點
1.4.3 RAPD-SCAR標記技術在不同物種中的應用
1.5 本研究的選題背景與意義
2 實驗材料與方法
2.1 供試品種
2.2 主要的生化試劑
2.3 主要實驗儀器及設備
2.4 主要試劑的配制
2.4.1 提取基因組DNA相關試劑的配制
2.4.2 相關培養(yǎng)基的配制
2.5 實驗方法
2.5.1 基因組DNA的提取(2×CTAB法)
2.5.2 基因組DNA的濃度與純度測定
2.5.3 RAPD反應測序的優(yōu)化
2.5.4 RAPD引物的篩選
2.5.5 RAPD差異性片段的回收
2.5.6 差異性片段與T-載體的連接
2.5.7 大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備(氯化鈣法)
2.5.8 重組質粒的轉化
2.5.9 差異性DNA片段的檢測與測序
2.5.10 SCAR引物設計與PCR驗證
3 結果與分析
3.1 40份華蕉材料基因組DNA的提取
3.2 RAPD反應體系的優(yōu)化
3.2.1 引物濃度的優(yōu)化
3.2.2 RAPD-PCR反應程序中退火溫度的優(yōu)化
3.2.3 華蕉中RAPD-PCR最佳反應系統(tǒng)的建立
3.3 華蕉RAPD差異性片段的分析
3.3.1 RAPD引物的篩選
3.3.2 RAPD差異性條帶的連接、轉化與測序
(1) 差異性片段的回收與純化
(2) 差異性片段的克隆
(3) 差異性片段的轉化驗證
3.4 差異性片段的測序結果
3.5 SCAR標記的建立與分析
3.5.1 SCAR引物的設計
3.5.2 SCAR標記的結果
3.6 華蕉的聚類分析與分類
3.7 36個華蕉品種和4個華蕉測試種的鑒別
4 討論
4.1 香蕉基因組DNA的提取
4.2 華蕉RAPD標記的穩(wěn)定性與重復性
4.3 華蕉SCAR標記的應用
5 結論
參考文獻
致謝
本文編號:3721574
【文章頁數(shù)】:57 頁
【學位級別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
1 前言
1.1 香蕉的概況
1.1.1 香蕉的生物學特性
1.1.2 香蕉的起源
1.1.3 我國香蕉種質資源的分布
1.1.4 香蕉的品種與分類
1.2 分子標記的簡介
1.3 RAPD分子標記技術的簡介與在香蕉種質資源中的研究應用
1.3.1 RAPD技術的基本原理
1.3.2 RAPD技術的特點
1.3.3 RAPD標記技術在香蕉中的應用
1.4 SCAR分子標記技術的簡介與應用
1.4.1 SCAR技術的基本原理
1.4.2 SCAR技術的特點
1.4.3 RAPD-SCAR標記技術在不同物種中的應用
1.5 本研究的選題背景與意義
2 實驗材料與方法
2.1 供試品種
2.2 主要的生化試劑
2.3 主要實驗儀器及設備
2.4 主要試劑的配制
2.4.1 提取基因組DNA相關試劑的配制
2.4.2 相關培養(yǎng)基的配制
2.5 實驗方法
2.5.1 基因組DNA的提取(2×CTAB法)
2.5.2 基因組DNA的濃度與純度測定
2.5.3 RAPD反應測序的優(yōu)化
2.5.4 RAPD引物的篩選
2.5.5 RAPD差異性片段的回收
2.5.6 差異性片段與T-載體的連接
2.5.7 大腸桿菌感受態(tài)細胞的制備(氯化鈣法)
2.5.8 重組質粒的轉化
2.5.9 差異性DNA片段的檢測與測序
2.5.10 SCAR引物設計與PCR驗證
3 結果與分析
3.1 40份華蕉材料基因組DNA的提取
3.2 RAPD反應體系的優(yōu)化
3.2.1 引物濃度的優(yōu)化
3.2.2 RAPD-PCR反應程序中退火溫度的優(yōu)化
3.2.3 華蕉中RAPD-PCR最佳反應系統(tǒng)的建立
3.3 華蕉RAPD差異性片段的分析
3.3.1 RAPD引物的篩選
3.3.2 RAPD差異性條帶的連接、轉化與測序
(1) 差異性片段的回收與純化
(2) 差異性片段的克隆
(3) 差異性片段的轉化驗證
3.4 差異性片段的測序結果
3.5 SCAR標記的建立與分析
3.5.1 SCAR引物的設計
3.5.2 SCAR標記的結果
3.6 華蕉的聚類分析與分類
3.7 36個華蕉品種和4個華蕉測試種的鑒別
4 討論
4.1 香蕉基因組DNA的提取
4.2 華蕉RAPD標記的穩(wěn)定性與重復性
4.3 華蕉SCAR標記的應用
5 結論
參考文獻
致謝
本文編號:3721574
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