本文關(guān)鍵詞：‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控的基因差異及理化特征分析，由筆耕文化傳播整理發(fā)布。

【摘要】：新梢白化茶樹(shù)是一種珍稀的種質(zhì)資源,其葉色變化和特異性成分的機(jī)理成為茶葉科研的熱點(diǎn)和難點(diǎn)�！纂u冠’作為一種可穩(wěn)定遺傳的白化芽葉茶樹(shù),是茶樹(shù)育種的良好材料,對(duì)其生理生化和表達(dá)調(diào)控進(jìn)行研究,有助于了解茶樹(shù)體內(nèi)的代謝變化及遺傳變異,因而具有較高的研究?jī)r(jià)值與實(shí)際意義。本研究以武夷名叢‘白雞冠’茶樹(shù)為材料,從生理、生化和轉(zhuǎn)錄水平進(jìn)行響應(yīng)光調(diào)控及其葉色形成機(jī)理的研究。首先通過(guò)光照和溫度試驗(yàn),明確‘白雞冠’屬于光照敏感型白化類(lèi)型。應(yīng)用新一代高通量測(cè)序技術(shù),構(gòu)建‘白雞冠’茶樹(shù)轉(zhuǎn)錄組和差異基因表達(dá)譜(DGE),對(duì)差異表達(dá)基因(DEGs)進(jìn)行GO功能注釋與KEGG代謝通路分析,富集響應(yīng)光調(diào)控和白化性狀相關(guān)的基因,并利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR (qRT-PCR)技術(shù)驗(yàn)證差異基因表達(dá)譜數(shù)據(jù)、檢測(cè)葉綠素生物合成相關(guān)的基因表達(dá)；應(yīng)用透射電鏡技術(shù)和酶活性試劑盒觀測(cè)葉片葉綠體超微結(jié)構(gòu)和過(guò)氧化物酶活性,探明表型與葉綠體發(fā)育、體內(nèi)抗氧化防御酶的關(guān)系；采用分光光度法、高效液相色譜(HPLC)和氣質(zhì)聯(lián)用(GC-MS)技術(shù)檢測(cè)兒茶素組分及總量、茶多酚、氨基酸總量和香氣組分,探明‘白雞冠’表型與色素、主要呈味物質(zhì)及香氣的關(guān)系。主要研究結(jié)果如下：1.不同光照強(qiáng)度和溫度試驗(yàn)表明,‘白雞冠’屬于光照敏感型白化茶樹(shù),其黃白葉色的形成,需要光照的誘導(dǎo)。2.以‘白雞冠’3天處理組(淡綠色半葉及黃白色半葉,T3d_Z vs. T3d_W)和6天處理組(綠色半葉及黃白色半葉,T6d_Z vs. T6d_W)為材料,基于第二代測(cè)序技術(shù)進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-Seq),構(gòu)建了新梢白化茶樹(shù)轉(zhuǎn)錄組,共獲得16.1G clean reads數(shù)據(jù)量和88788條Unigene。與公共數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)后,共有35703條Unigene得到注釋,約占總Unigene的40.2%。其中,24846條Unigene通過(guò)GO功能注釋到47個(gè)分類(lèi),其中,生物過(guò)程的亞層次中,以細(xì)胞過(guò)程和代謝過(guò)程最多。細(xì)胞組分的亞層次中,注釋到最多的分類(lèi)為細(xì)胞、細(xì)胞部分和細(xì)胞器。分子功能的亞層次中,最有代表性的分類(lèi)是結(jié)合、催化活性和轉(zhuǎn)運(yùn)活性。10213條Unigene通過(guò)KOG數(shù)據(jù)庫(kù)注釋到26個(gè)基因簇,其中一般性功能預(yù)測(cè)簇群代表了最大的類(lèi)群,其次是翻譯后修飾/蛋白翻轉(zhuǎn)／伴侶蛋白,緊接著信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、翻譯和細(xì)胞內(nèi)運(yùn)輸和分泌。此外,脂質(zhì)代謝,細(xì)胞骨架和細(xì)胞壁/細(xì)胞膜生物合成等與細(xì)胞結(jié)構(gòu)密切相關(guān)的途徑均被注釋。8561條Unigene通過(guò)KO注釋到第二層分類(lèi)的31個(gè)通路,代謝途徑主要包括碳水化合物代謝、能量代謝、脂類(lèi)代謝、氨基酸代謝和其他次生代謝產(chǎn)物生物合成等；遺傳信息處理注釋到包括折疊、分類(lèi)和降解、翻譯、轉(zhuǎn)錄、復(fù)制和修復(fù)。環(huán)境信息處理注釋到值得進(jìn)一步深入研究的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和膜運(yùn)輸途徑。1652條Unigene通過(guò)Blast2G0軟件注釋分成25個(gè)轉(zhuǎn)錄因子家族,注釋最多的為MYB轉(zhuǎn)錄因子,AP2結(jié)構(gòu)域,同源異型盒,鋅指蛋白,bZIP家族和bHLH家族。3.差異基因表達(dá)譜(DGE)分析結(jié)果取所有比較組合差異基因集的并集,總共得到6382個(gè)差異基因。3天處理組(T3d_Zvs. T3d_W)具有4072個(gè)顯著性差異表達(dá)基因(上調(diào)1597個(gè),下調(diào)2475個(gè))。6天處理組(T6d_Zvs. T6d_W)的差異基因?yàn)?863個(gè),上調(diào)差異表達(dá)基因比3天處理組多32個(gè),下調(diào)差異表達(dá)基因比3天處理組多759個(gè)。兩個(gè)處理組均表明,下調(diào)差異表達(dá)基因遠(yuǎn)遠(yuǎn)多于上調(diào)差異表達(dá)基因�！纂u冠’綠色半葉對(duì)比黃白色半葉,下調(diào)差異基因GO分類(lèi)表明,前20的GO分類(lèi)主要包括細(xì)胞質(zhì)部分、葉綠體、質(zhì)體、核糖體、核糖體合成、核糖核蛋白復(fù)合物的生物合成、核糖體的結(jié)構(gòu)成分、一翻譯、核糖核蛋白復(fù)合、質(zhì)體部分、葉綠體部分、細(xì)胞成分的生物合成、類(lèi)囊體、結(jié)構(gòu)分子活動(dòng)、細(xì)胞內(nèi)的一部分、細(xì)胞內(nèi)、細(xì)胞成分的組織或生物合成、細(xì)胞內(nèi)的細(xì)胞器、葉綠體被膜以及葉綠體發(fā)育相關(guān)、葉綠素捕光蛋白相關(guān)的基因。上調(diào)基因GO注釋結(jié)果表明,“氧化還原過(guò)程”占生物學(xué)過(guò)程比例最高；細(xì)胞組分分類(lèi)中注釋到細(xì)胞周邊和細(xì)胞壁；氧化還原酶活性、核酸結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子活性、序列特異性DNA結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子的活性在分子功能中占比最大。KEGG代謝通路富集分析表明,3天處理組和6天處理組顯著富集光合作用、卟啉和葉綠素代謝、類(lèi)胡蘿卜素代謝、類(lèi)黃酮合成途徑等與葉色密切相關(guān)的代謝通路。此外,脂肪酸代謝及合成、不飽和脂肪酸的代謝(參與膜流動(dòng)性)、氮代謝和次生代謝途徑也顯著富集,這與研究發(fā)現(xiàn)葉綠體膜結(jié)構(gòu)降解、茶多酚及氨基酸成分顯著變化相符。4.處理組間及處理間GO功能DAG富集分析兩個(gè)處理組共有差異基因?yàn)?779個(gè)(上調(diào)928個(gè),下調(diào)1851個(gè)),共有上調(diào)差異表達(dá)基因富集到與植物細(xì)胞壁密切相關(guān)的植物型細(xì)胞壁組織和木葡聚糖轉(zhuǎn)移酶活性,以及葉綠體被膜功能基因。共有差異表達(dá)基因共鑒定了81個(gè)轉(zhuǎn)錄因子。其中,注釋最多的為HLH/bHLH轉(zhuǎn)錄因子11個(gè)和MYB轉(zhuǎn)錄因子8個(gè)。此外,bZIP轉(zhuǎn)錄因子、乙烯響應(yīng)轉(zhuǎn)錄因子、同源異形盒轉(zhuǎn)錄因子、WRKY轉(zhuǎn)錄因子各3個(gè)、NAC轉(zhuǎn)錄因子2個(gè)和Trihelix轉(zhuǎn)錄因子1個(gè)。這些轉(zhuǎn)錄因子家族多與響應(yīng)環(huán)境變化相關(guān)。其中,HY5(屬于bZIP家族)在光響應(yīng)中起重要作用。處理間特有差異表達(dá)基因?yàn)?31個(gè)(上調(diào)42個(gè),下調(diào)89個(gè)),差異基因多為色素、次生代謝生物合成、光合系統(tǒng)II及過(guò)氧化物酶體相關(guān)基因。3天處理組、6天處理組和處理間(T6d_Z vs. T3d_Z)共有差異基因?yàn)?2個(gè)。與對(duì)照相比,葉綠素生物合成相關(guān)基因谷氨酰-tRNA還原酶(hemA),鎂螯合酶亞基H(CHLH),鎂原卟啉IX甲基酯環(huán)化酶(CRD1),葉綠素酶(E3.1.1.14)均下調(diào)；萜類(lèi)生物合成相關(guān)基因1-脫氧-1D-木酮糖-5-磷酸合酶(DXS)、萜合酶均上調(diào),且DXS在遮蔭條件下明顯升高；類(lèi)黃酮化合物生物合成途徑相關(guān)基因花青素還原酶(E1.3.1.77)、無(wú)色花色素還原酶(LAR),類(lèi)黃酮3’,5’-羥化酶(F3 5 H)均下調(diào)；葉綠體發(fā)育相關(guān)基因鐵氧還蛋白(petF)、Rubisco酶大亞基結(jié)合蛋白(rbcL)均下調(diào)；光系統(tǒng)Ⅱ10kDa蛋白(psbR)、捕光復(fù)合體II的葉綠素a/b結(jié)合蛋白1(LHCB1)上調(diào),psb27蛋白質(zhì)(psb27)、反應(yīng)中心X蛋白(psbX)下調(diào)；過(guò)氧化物酶體相關(guān)基因超氧化物歧化酶(SOD1, Cu-Zn家族)、�；せ蠲妇抡{(diào)。下調(diào)差異表達(dá)基因DAG富集分析表明,最終富集到5個(gè)基因參與光系統(tǒng)II穩(wěn)定、13個(gè)基因參與葉綠體類(lèi)囊體膜功能和7個(gè)基因參與光系統(tǒng)II功能。5. qRT-PCR驗(yàn)證富集通路相關(guān)基因利用qRT-PCR技術(shù)驗(yàn)證差異基因表達(dá)譜(DGE)數(shù)據(jù),結(jié)果表明,3天處理和對(duì)照中,JAZ(茉莉酮酸酯ZIM結(jié)構(gòu)域蛋白)基因與基因表達(dá)譜不相符,其余19個(gè)基因一致；6天處理和對(duì)照中,COP1 (E3泛素蛋白連接酶)、CHLD(鎂螯合酶D亞基)、CHLI(鎂螯合酶I亞基)基因與基因表達(dá)譜不相符。其余基因的表達(dá)趨勢(shì)均與DGE數(shù)據(jù)相符合�？傮w而言,qRT-PCR檢測(cè)結(jié)果與測(cè)序結(jié)果的趨勢(shì)相一致。以‘白雞冠’和‘肉桂’自然條件下生長(zhǎng)的葉片為研究材料,檢測(cè)葉綠素代謝途徑相關(guān)基因的相對(duì)表達(dá)量,結(jié)果表明,葉綠素代謝合成相關(guān)基因POR(原葉綠素酸脂還原酶)在響應(yīng)光調(diào)控和葉色形成中起重要作用。6.光照對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)超微結(jié)構(gòu)及體內(nèi)防御酶的影響研究通過(guò)轉(zhuǎn)錄組及基因表達(dá)譜分析表明,GO功能注釋到的基因功能主要與葉綠體發(fā)育、光合作用和過(guò)氧化物酶體相關(guān),因此,以自然條件下和遮蔭條件下的‘白雞冠’葉片為材料,觀測(cè)葉片葉綠體超微結(jié)構(gòu)和抗氧化防御酶活性,結(jié)果表明,在強(qiáng)光條件下,‘白雞冠’葉綠體數(shù)目少且超微結(jié)構(gòu)異常,光合膜結(jié)構(gòu)降解,體內(nèi)酶活性低；遮蔭后,‘白雞冠’葉片由黃白色轉(zhuǎn)變?yōu)榫G色,葉綠體類(lèi)囊體膜結(jié)構(gòu)重建,恢復(fù)正常形態(tài),基粒片層結(jié)構(gòu)致密發(fā)達(dá),體內(nèi)酶活性顯著上升。7.光照對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)主要色素、呈味物質(zhì)及香氣代謝的影響KEGG代謝通路富集分析富集到的通路主要為卟啉和葉綠素代謝、類(lèi)胡蘿卜素生物合成、黃酮類(lèi)化合物生物合成及萜類(lèi)生物合成途徑,因此,檢測(cè)‘白雞冠’葉色變化前后物質(zhì)差異,結(jié)果表明,‘白雞冠’葉色變化前后色素、呈味物質(zhì)和香氣變化明顯。‘白雞冠’遮蔭轉(zhuǎn)綠后,Ch1a、Ch1b、葉綠素總量、β-胡蘿卜素顯著增加。呈味物質(zhì)主要表現(xiàn)為：6天處理即綠色半葉相比于對(duì)照黃白色半葉,非酯型兒茶素EGC、C和EC含量顯著降低；氨基酸總量也顯著低于對(duì)照,而咖啡堿略有上升,水浸出物略有下降,但二者未呈顯著性變化。香氣測(cè)定表明,處理間(T6d_Zvs. T3d_Z),芳樟醇未檢測(cè)到,但檢出烏龍茶的重要賦香成分橙花叔醇,同時(shí)水楊酸甲酯、香葉基丙酮均有上升。
【關(guān)鍵詞】：茶樹(shù) 白化 葉綠素缺失 葉綠體超微結(jié)構(gòu) 轉(zhuǎn)錄組測(cè)序 差異基因表達(dá)譜 光照敏感型
【學(xué)位授予單位】：福建農(nóng)林大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】：博士
【學(xué)位授予年份】：2015
【分類(lèi)號(hào)】：S571.1
【目錄】：

• 摘要11-15
• ABSTRACT15-21
• 縮略詞表21-22
• 第一章 前言22-36
• 1 新梢白化茶樹(shù)生理生化及其葉色形成機(jī)理研究進(jìn)展22-27
• 1.1 茶樹(shù)新梢白化類(lèi)型22-23
• 1.1.1 根據(jù)茶樹(shù)與生態(tài)環(huán)境的關(guān)系分類(lèi)22
• 1.1.2 根據(jù)茶樹(shù)新梢的顏色分類(lèi)22-23
• 1.2 生理水平研究23
• 1.2.1 顯微及超微結(jié)構(gòu)研究23
• 1.2.2 酶活性研究23
• 1.3 生化水平研究23-24
• 1.4 分子水平研究24-27
• 1.4.1 茶樹(shù)芽葉白化種質(zhì)DNA分子標(biāo)記研究24-25
• 1.4.2 茶樹(shù)新梢白化基因差異表達(dá)研究25-26
• 1.4.3 與品質(zhì)和葉色相關(guān)基因的克隆26
• 1.4.4 茶樹(shù)新梢白化蛋白質(zhì)組學(xué)研究26-27
• 2 植物白化葉色產(chǎn)生機(jī)制27-30
• 2.1 外在因素27
• 2.2 內(nèi)在因素27-30
• 2.2.1 光合色素生物合成途徑中的基因突變27-29
• 2.2.2 葉綠體分化與發(fā)育相關(guān)基因的突變29
• 2.2.3 捕光色素蛋白復(fù)合體相關(guān)的基因突變29-30
• 2.2.4 光敏色素生色團(tuán)生物途徑中基因突變30
• 2.2.5 與光合系統(tǒng)無(wú)直接關(guān)系的基因突變30
• 3 RNA-SEQ和DGE技術(shù)及其在基因差異表達(dá)中的應(yīng)用30-32
• 3.1 RNA-Seq和DGE技術(shù)原理及其優(yōu)勢(shì)31
• 3.2 RNA-Seq和DGE技術(shù)在茶樹(shù)基因差異表達(dá)上的應(yīng)用現(xiàn)狀及前景31-32
• 4 本研究的目的及意義32-33
• 5 研究?jī)?nèi)容33-35
• 5.1 確定‘白雞冠’茶樹(shù)葉色白化的類(lèi)型33
• 5.2 ‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控的轉(zhuǎn)錄組特征分析33
• 5.3 ‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控的基因表達(dá)譜差異分析33
• 5.4 ‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控和葉色白化相關(guān)基因的挖掘33
• 5.5 光照對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)超微結(jié)構(gòu)及體內(nèi)防御酶的影響研究33-34
• 5.6 光照對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)主要呈味物質(zhì)及香氣組分的影響研究34-35
• 6 技術(shù)路線35-36
• 第二章 光照和溫度對(duì)‘白雞冠,茶樹(shù)新梢白化的影響36-47
• 1 材料與方法36-38
• 1.1 試驗(yàn)材料36-37
• 1.2 試驗(yàn)方法37-38
• 1.2.1 葉綠素含量檢測(cè)37-38
• 1.2.2 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析38
• 2 結(jié)果與分析38-45
• 2.1 ‘白雞冠’在自然條件下的表型及葉綠素積累特性38-40
• 2.1.1 自然條件下表型特征38-39
• 2.1.2 自然條件下光合色素分析39-40
• 2.2 光照和溫度對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)白化表型及色素含量的影響40-45
• 2.2.1 光強(qiáng)和溫度對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)表型及色素含量的影響40-43
• 2.2.2 不同遮蔭程度對(duì)‘白雞冠’表型及葉綠素相對(duì)含量的影響43-44
• 2.2.3 半葉法遮蔭對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)白化表型和葉綠素的影響44-45
• 3 討論45-46
• 3.1 光照對(duì)新梢白化茶樹(shù)表型性狀的影響45-46
• 3.2 確定以外界遮蔭進(jìn)行取樣46
• 4 小結(jié)46-47
• 第三章 ‘白雞冠’茶樹(shù)葉片應(yīng)答光照的轉(zhuǎn)錄組分析47-62
• 1 材料與方法47-51
• 1.1 試驗(yàn)材料47
• 1.2 試驗(yàn)方法47-51
• 1.2.1 茶樹(shù)總RNA提取及質(zhì)量檢測(cè)47-48
• 1.2.2 cDNA文庫(kù)構(gòu)建及Illumina高通量測(cè)序48-49
• 1.2.3 數(shù)據(jù)評(píng)估、組裝及功能注釋49-51
• 2 結(jié)果與分析51-60
• 2.1 茶樹(shù)總RNA提取質(zhì)量分析51-52
• 2.2 De novo轉(zhuǎn)錄本測(cè)序和組裝結(jié)果52-53
• 2.3 基因注釋53-60
• 2.3.1 功能注釋結(jié)果統(tǒng)計(jì)53-55
• 2.3.2 GO分類(lèi)55-57
• 2.3.3 KOG注釋57-58
• 2.3.4 KEGG通路注釋58-59
• 2.3.5 轉(zhuǎn)錄因子59-60
• 3 討論60-61
• 4 小結(jié)61-62
• 第四章 ‘白雞冠’茶樹(shù)葉片差異基因表達(dá)譜(DGE)特征分析62-79
• 1 材料與方法62-64
• 1.1 試驗(yàn)材料62
• 1.2 試驗(yàn)方法62-64
• 1.2.1 RNA提取及質(zhì)量檢測(cè)62
• 1.2.2 文庫(kù)構(gòu)建及測(cè)序62
• 1.2.3 數(shù)據(jù)評(píng)估、組裝及功能注釋62-63
• 1.2.4 基因表達(dá)水平分析63
• 1.2.5 差異基因表達(dá)分析63-64
• 1.2.6 上調(diào)和下調(diào)差異表達(dá)基因火山圖64
• 1.2.7 差異基因GO富集分析64
• 1.2.8 差異基因KEGG富集分析64
• 2 結(jié)果與分析64-77
• 2.1 測(cè)序數(shù)據(jù)的產(chǎn)出和表達(dá)譜reads的注釋64-65
• 2.2 樣品間相關(guān)性檢驗(yàn)65-66
• 2.3 不同處理組之間的差異表達(dá)基因分析66-67
• 2.4 上調(diào)和下調(diào)差異表達(dá)基因火山圖67-68
• 2.5 差異表達(dá)基因GO功能富集分析68-73
• 2.5.1 下調(diào)差異基因的GO富集分析68-73
• 2.5.2 上調(diào)差異基因的GO富集分析73
• 2.6 差異基因的KEGG代謝通路富集分析及其表達(dá)模式73-77
• 3 討論77-78
• 3.1 無(wú)參轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)合基因表達(dá)譜測(cè)序的適用性探討77
• 3.2 DGE技術(shù)的高重復(fù)性及其高通量77-78
• 3.3 差異表達(dá)基因及其模式分析78
• 4 小結(jié)78-79
• 第五章 ‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控及葉色相關(guān)基因挖掘79-106
• 1 材料與方法79-81
• 1.1 試驗(yàn)材料79
• 1.2 試驗(yàn)方法79-81
• 1.2.1 茶樹(shù)共有差異表達(dá)基因維恩圖79
• 1.2.2 GO注釋及DAG功能富集79-80
• 1.2.3 實(shí)時(shí)熒光定量PCR驗(yàn)證80-81
• 2 結(jié)果與分析81-104
• 2.1 不同遮蔭處理時(shí)間差異基因集分析81-90
• 2.1.1 不同遮蔭處理時(shí)間差異基因?qū)Ρ?/span>81
• 2.1.2 處理組間共有上調(diào)差異表達(dá)基因GO注釋及其功能富集81-85
• 2.1.3 處理組間共有下調(diào)差異表達(dá)基因GO注釋及其功能富集85-88
• 2.1.4 處理組共有差異表達(dá)基因鑒定轉(zhuǎn)錄因子88-90
• 2.2 處理組與對(duì)照組差異基因集分析90-95
• 2.2.1 處理組與對(duì)照組差異基因?qū)Ρ?/span>90-91
• 2.2.2 處理間(T6d_Z vs.T3d_Z)上調(diào)差異表達(dá)基因GO注釋及其功能富集91
• 2.2.3 處理間(T6d_Z vs.T3d_Z)下調(diào)差異表達(dá)基因GO注釋及其功能富集91-95
• 2.3 響應(yīng)光調(diào)控及葉色相關(guān)基因?qū)崟r(shí)熒光定量PCR驗(yàn)證95-104
• 2.3.1 RNA電泳圖95-96
• 2.3.2 目的基因及內(nèi)參基因擴(kuò)增效率分析96-97
• 2.3.3 熒光定量PCR驗(yàn)證DEGs97-99
• 2.3.4 遮蔭對(duì)‘白雞冠’葉片葉綠素代謝途徑關(guān)鍵基因表達(dá)的影響及其表達(dá)模式99-100
• 2.3.5 ‘白雞冠’不同葉位葉綠素代謝途徑相關(guān)基因表達(dá)模式分析100-104
• 3 討論104-105
• 3.1 響應(yīng)光信號(hào)的轉(zhuǎn)錄因子104-105
• 3.2 富集與細(xì)胞壁重構(gòu)相關(guān)基因105
• 3.3 葉綠素合成途徑基因受抑制105
• 4 小結(jié)105-106
• 第六章 ‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控的生理生化變化106-126
• 1 材料與方法107-112
• 1.1 試驗(yàn)材料107-108
• 1.2 試驗(yàn)方法108-112
• 1.2.1 葉綠體超微結(jié)構(gòu)檢測(cè)108-109
• 1.2.2 茶樹(shù)體內(nèi)防御酶及丙二醛檢測(cè)109-111
• 1.2.3 光合色素測(cè)定111
• 1.2.4 茶樹(shù)主要呈味物質(zhì)測(cè)定111
• 1.2.5 茶樹(shù)香氣成分測(cè)定111-112
• 1.2.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析112
• 2 結(jié)果與分析112-123
• 2.1 光照對(duì)葉綠體超微結(jié)構(gòu)的影響112-115
• 2.2 光照對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)保護(hù)性酶酶活性及MDA變化115-117
• 2.2.1 遮蔭前‘白雞冠’茶樹(shù)保護(hù)性酶酶活性及MDA含量115-116
• 2.2.2 遮蔭處理對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)保護(hù)性酶酶活性及MDA的影響116-117
• 2.3 光照對(duì)‘白雞冠’光合色素的影響117-118
• 2.4 光照對(duì)‘白雞冠’主要呈味物質(zhì)的影響118-120
• 2.4.1 不同季節(jié)‘白雞冠’主要呈味物質(zhì)分析118-119
• 2.4.2 光強(qiáng)對(duì)‘白雞冠’主要呈味物質(zhì)的影響119-120
• 2.5 光強(qiáng)對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)香氣的影響120-123
• 3 討論123-125
• 3.1 光照對(duì)新梢白化茶樹(shù)葉綠體結(jié)構(gòu)的影響123-124
• 3.2 光照對(duì)新梢白化茶樹(shù)體內(nèi)過(guò)氧化物酶的影響124
• 3.3 光照對(duì)新梢白化茶樹(shù)色素積累的影響124
• 3.4 光照對(duì)新梢白化茶樹(shù)主要呈味物質(zhì)的影響124-125
• 3.5 光照對(duì)‘白雞冠’茶樹(shù)香氣成分的影響125
• 4 小結(jié)125-126
• 第七章 總結(jié)與討論126-131
• 7.1 本研究主要研究結(jié)果126-127
• 7.2 討論127-130
• 7.2.1 ‘白雞冠’葉色表型及葉綠體發(fā)育與光合系統(tǒng)Ⅱ密切相關(guān)127-128
• 7.2.2 遮蔭降低光氧化損傷,修復(fù)葉綠體結(jié)構(gòu)128
• 7.2.3 ‘白雞冠’白化表型與光合色素代謝和葉綠體發(fā)育密切相關(guān)128-130
• 7.3 展望130-131
• 參考文獻(xiàn)131-139
• 附錄139-150
• 致謝150-152
• 作者簡(jiǎn)介152-153

  本文關(guān)鍵詞：‘白雞冠’茶樹(shù)響應(yīng)光調(diào)控的基因差異及理化特征分析，由筆耕文化傳播整理發(fā)布。

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本文編號(hào)：254330