結核分枝桿菌H37Ra熱休克蛋白16.3敲除菌株的構建及其對小鼠骨髓來源巨噬細胞功能的影響
發(fā)布時間:2025-01-04 06:43
目的:構建H37Ra Hsp16.3基因敲除菌株以及回補菌株,研究Hsp16.3在H37Ra菌株中的功能,并觀察該基因敲除菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞炎性細胞因子表達,趨化功能以及抗原呈遞功能的影響。方法:1.通過同源重組技術構建Hsp X基因敲除菌株(MUT);向MUT菌株電轉化p MV261-Hsp X質粒構建Hsp X基因敲除回補菌株(COMP)。2.通過對比野生型菌株(WT)、COMP和MUT菌株的菌落特征和生長速率來觀察Hsp16.3的缺失對H37Ra菌株的影響。3.構建體外WT、COMP和MUT菌株感染巨噬細胞的潛伏感染模型。在該模型構建成功后繼續(xù)培養(yǎng)24h和48h,Real-time PCR檢測巨噬細胞炎性細胞因子i NOS、IL-6和TNF-α基因表達水平,Western-blot檢測i NOS的蛋白表達水平,ELISA檢測IL-6和TNF-α蛋白表達水平。4.通過transwell實驗檢測Hsp16.3對巨噬細胞趨化功能的影響,Real-time PCR檢測趨化因子CCL2、CCL3、CCL4、CCL5和CCL12基因表達水平,FCM檢測F4/80+CCR1+、F4/80...
【文章頁數(shù)】:88 頁
【學位級別】:碩士
【文章目錄】:
中英文縮略詞表
中文摘要
英文摘要
前言
第一部分
1 材料與方法
1.1 主要實驗材料和試劑
1.1.1 質粒與菌株
1.1.2 引物
1.1.3 培養(yǎng)基及緩沖液配置
1.1.4 試劑耗材
1.1.5 儀器耗材
1.2 實驗方法
1.2.1 培養(yǎng)方法及保存
1.2.2 p0004s-AES質粒構建
1.2.3 phAE159-AES質粒構建
1.2.4 制備噬菌體
1.2.5 噬菌體裂解液轉染待敲除菌株
1.2.6 制備結核分枝桿菌電轉化態(tài)
1.2.7 電擊轉化結核分支桿菌感受態(tài)細胞
1.2.8 HspX基因缺失菌株以及回補菌株的鑒定
1.2.8.1 菌株蛋白制備
1.2.8.2 Western-blot檢測菌株Hsp16.3 的表達
1.2.8.2.1 試劑配置
1.2.8.2.2 實驗步驟
1.2.9 生長曲線的測定
1.2.10 菌落形態(tài)觀察
1.3 統(tǒng)計學方法
2 結果
2.1 HspX基因敲除菌株的構建
2.1.1 基因敲除相關引物設計序列定位
2.1.2 PCR擴增左右臂
2.1.3 噬菌粒的構建
2.1.4 構建分枝桿菌噬菌體
2.1.5 結核分枝桿菌H37Ra HspX基因敲除菌株(MUT)的構建
2.2 PCR驗證結核分枝桿菌H37Ra HspX基因敲除菌株
2.3 結核分枝桿菌H37Ra HspX基因回補菌株(COMP)的構建
2.4 菌株Hsp16.3表達的檢測
2.5 菌株生長曲線測定
2.6 MUT菌株菌落形態(tài)
3 討論
第二部分
1 材料與方法
1.1 主要實驗材料和試劑
1.1.1 實驗動物
1.1.2 實驗試劑
1.1.3 實驗儀器
1.2 方法
1.2.1 小鼠骨髓來源巨噬細胞的誘導及培養(yǎng)
1.2.2 CD4+T細胞提取及刺激
1.2.3 制作巨噬細胞細胞爬片
1.2.4 吞噬率檢測
1.2.5 體外潛伏感染模型的構建
1.2.6 熒光定量PCR檢測細胞因子基因表達水平
1.2.6.1 總RNA的提取
1.2.6.2 RNA逆轉錄為cDNA
1.2.6.3 實時熒光定量PCR引物設計列表
1.2.6.4 實時熒光定量PCR檢測體系及其條件
1.2.7 ELISA檢測巨噬細胞培養(yǎng)上清液中的細胞因子
1.2.7.1 樣品及試劑準備
1.2.7.2 檢測
1.2.8 Western-blot檢測巨噬細胞蛋白表達
1.2.9 流式細胞術檢測巨噬細胞相關分子表達水平
1.2.10 transwell實驗
1.3 統(tǒng)計學分析
2 結果
2.1 BMDM的誘導成熟
2.2 小鼠骨髓來源巨噬細胞對 MUT 菌株的吞噬率檢測
2.3 小鼠骨髓來源巨噬細胞在不同MOI下受感染情況
2.4 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞炎性細胞因子m RNA表達的影響
2.5 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞炎性細胞因子表達的影響
2.6 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞趨化功能的影響
2.7 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞抗原提呈功能的影響
2.7.1 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞吞噬體-溶酶體的影響
2.7.2 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞MHCⅡ表達的影響
2.7.3 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞CIITA及其轉錄因子表達的影響
2.7.4 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞和CD4+T細胞共培養(yǎng)體系中IFN-γ和IL-10 表達的影響
2.7.5 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞p-STAT1/p-STAT3表達的影響
2.8 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞胞內殺傷功能的影響
3 討論
結論
參考文獻
綜述
參考文獻
致謝
作者簡介
本文編號:4023058
【文章頁數(shù)】:88 頁
【學位級別】:碩士
【文章目錄】:
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前言
第一部分
1 材料與方法
1.1 主要實驗材料和試劑
1.1.1 質粒與菌株
1.1.2 引物
1.1.3 培養(yǎng)基及緩沖液配置
1.1.4 試劑耗材
1.1.5 儀器耗材
1.2 實驗方法
1.2.1 培養(yǎng)方法及保存
1.2.2 p0004s-AES質粒構建
1.2.3 phAE159-AES質粒構建
1.2.4 制備噬菌體
1.2.5 噬菌體裂解液轉染待敲除菌株
1.2.6 制備結核分枝桿菌電轉化態(tài)
1.2.7 電擊轉化結核分支桿菌感受態(tài)細胞
1.2.8 HspX基因缺失菌株以及回補菌株的鑒定
1.2.8.1 菌株蛋白制備
1.2.8.2 Western-blot檢測菌株Hsp16.3 的表達
1.2.8.2.1 試劑配置
1.2.8.2.2 實驗步驟
1.2.9 生長曲線的測定
1.2.10 菌落形態(tài)觀察
1.3 統(tǒng)計學方法
2 結果
2.1 HspX基因敲除菌株的構建
2.1.1 基因敲除相關引物設計序列定位
2.1.2 PCR擴增左右臂
2.1.3 噬菌粒的構建
2.1.4 構建分枝桿菌噬菌體
2.1.5 結核分枝桿菌H37Ra HspX基因敲除菌株(MUT)的構建
2.2 PCR驗證結核分枝桿菌H37Ra HspX基因敲除菌株
2.3 結核分枝桿菌H37Ra HspX基因回補菌株(COMP)的構建
2.4 菌株Hsp16.3表達的檢測
2.5 菌株生長曲線測定
2.6 MUT菌株菌落形態(tài)
3 討論
第二部分
1 材料與方法
1.1 主要實驗材料和試劑
1.1.1 實驗動物
1.1.2 實驗試劑
1.1.3 實驗儀器
1.2 方法
1.2.1 小鼠骨髓來源巨噬細胞的誘導及培養(yǎng)
1.2.2 CD4+T細胞提取及刺激
1.2.3 制作巨噬細胞細胞爬片
1.2.4 吞噬率檢測
1.2.5 體外潛伏感染模型的構建
1.2.6 熒光定量PCR檢測細胞因子基因表達水平
1.2.6.1 總RNA的提取
1.2.6.2 RNA逆轉錄為cDNA
1.2.6.3 實時熒光定量PCR引物設計列表
1.2.6.4 實時熒光定量PCR檢測體系及其條件
1.2.7 ELISA檢測巨噬細胞培養(yǎng)上清液中的細胞因子
1.2.7.1 樣品及試劑準備
1.2.7.2 檢測
1.2.8 Western-blot檢測巨噬細胞蛋白表達
1.2.9 流式細胞術檢測巨噬細胞相關分子表達水平
1.2.10 transwell實驗
1.3 統(tǒng)計學分析
2 結果
2.1 BMDM的誘導成熟
2.2 小鼠骨髓來源巨噬細胞對 MUT 菌株的吞噬率檢測
2.3 小鼠骨髓來源巨噬細胞在不同MOI下受感染情況
2.4 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞炎性細胞因子m RNA表達的影響
2.5 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞炎性細胞因子表達的影響
2.6 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞趨化功能的影響
2.7 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞抗原提呈功能的影響
2.7.1 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞吞噬體-溶酶體的影響
2.7.2 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞MHCⅡ表達的影響
2.7.3 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞CIITA及其轉錄因子表達的影響
2.7.4 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞和CD4+T細胞共培養(yǎng)體系中IFN-γ和IL-10 表達的影響
2.7.5 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞p-STAT1/p-STAT3表達的影響
2.8 MUT菌株對小鼠骨髓來源巨噬細胞胞內殺傷功能的影響
3 討論
結論
參考文獻
綜述
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本文編號:4023058
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