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植物促生菌Pseudomonas monteilii PN1對對硝基酚降解及其聯(lián)合苜蓿對污染土壤的修復(fù)

發(fā)布時間:2017-03-24 23:04

  本文關(guān)鍵詞:植物促生菌Pseudomonas monteilii PN1對對硝基酚降解及其聯(lián)合苜蓿對污染土壤的修復(fù),,由筆耕文化傳播整理發(fā)布。


【摘要】:近年來,硝基酚類化合物作為原材料或中間體被廣泛應(yīng)用于化工生產(chǎn)中,工業(yè)廢水的不達標(biāo)排放以及有機磷殺蟲劑等的大量使用使硝基酚類物質(zhì)的污染日益嚴(yán)重,不僅破壞了環(huán)境還對人類健康以及哺乳動物的生存產(chǎn)生了惡劣的影響。由于硝基酚類物質(zhì)比較穩(wěn)定,易被土壤吸附難以移動,在自然界中極難降解,而一些微生物經(jīng)過長期的接觸馴化,具有了一定的降解硝基酚的能力,也具備了與植物聯(lián)合修復(fù)對硝基酚污染土壤的潛力,所以生物修復(fù)成為越來越多的學(xué)者研究的課題,生物修復(fù)法不僅高效快速,經(jīng)濟實用,而且避免了污染物的二次轉(zhuǎn)移,具有廣闊的開發(fā)應(yīng)用前景。本研究從長春市周邊一個噴灑農(nóng)藥的農(nóng)田土樣中分離篩選出一株高效的對硝基酚(P-Nitrophenol,簡稱PNP)降解菌,能以PNP作為唯一碳源和氮源進行生長和繁殖,經(jīng)16S rDNA序列分析鑒定為假單胞菌,命名為PN1,PN1能夠降解PNP的濃度范圍為0~200 mg/L,而且降解過程中表現(xiàn)出較高的疏水性和良好的通透性。同時PN1還具有卡那霉素和氯霉素抗性以及Cd2+、Pb2+、Zn2+和Cr6+四種重金屬耐性,其最低抑制濃度(MIC)分別為700、500、800和100 mg/L。根據(jù)PN1具有的抗生素抗性,對其進行了綠色熒光蛋白標(biāo)記,且標(biāo)記后的PN1的質(zhì)粒具有良好的穩(wěn)定性。然后將PN1-gfp投入實驗室模擬的含污染物PNP的土壤微宇宙中,探究其在復(fù)雜的環(huán)境中能否正常發(fā)揮其降解功能,結(jié)果證明,復(fù)雜的外界環(huán)境雖然延長了PN1-gfp的適應(yīng)期,但PN1-gfp仍能在160個小時之后將141.61 mg/L的PNP完全降解,并發(fā)出的穩(wěn)定的綠色熒光,說明PN1-gfp具備生物修復(fù)實際污染土壤的潛力。其次對PN1-gfp的植物促生特性進行了探究,證明其能夠分泌植物生長激素吲哚乙酸(IAA)、產(chǎn)生鐵載體來獲取鐵離子,溶解難溶性的有機磷、產(chǎn)生1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸(ACC)脫氨酶來降低乙烯的含量,是一株具有多種促生功能的植物促生菌(PGPR)。然后在MS固體培養(yǎng)基中進行苜蓿的生長實驗,未浸菌的苜蓿的最大PNP耐受濃度為20 mg/L。當(dāng)PNP濃度為20 mg/L時,對于接菌的苜蓿,由于PN1-gfp對PNP的降解減輕了毒害作用,植株的長勢遠遠好于未接菌的苜蓿,且PN1-gfp對莖的促進作用較為明顯。最后在溫室中進行盆栽試驗,苜蓿在土壤中生長的最適PNP濃度為100mg/kg,且經(jīng)30天的培養(yǎng)后,PNP的自然降解率約為18.1%,加入植物的作用后,根際和非根際土壤的PNP降解率分別為31.0%和29.9%,再加入PN1-gfp的降解及促生作用后,根際和非根際土壤的PNP降解率分別為89.0%和85.8%,對于經(jīng)PN1-gfp處理過的苜蓿盆栽,根際土壤中的生物量明顯大于非根際土壤,在植株內(nèi)部,生物量的大小順序為根㧐葉㧐莖。
【關(guān)鍵詞】:PNP 生物降解 微宇宙 植物促生菌 土壤修復(fù)
【學(xué)位授予單位】:吉林大學(xué)
【學(xué)位級別】:碩士
【學(xué)位授予年份】:2016
【分類號】:X172;X53
【目錄】:
  • 摘要4-6
  • abstract6-10
  • 第1章 緒論10-16
  • 1.1 硝基酚類化合物的性質(zhì)10-11
  • 1.2 硝基酚類化合物的土壤污染修復(fù)方法11-12
  • 1.3 植物促生菌的研究及應(yīng)用現(xiàn)狀12-14
  • 1.4 論文的立題依據(jù)和主要內(nèi)容14-15
  • 1.5 技術(shù)路線15-16
  • 第2章 PNP降解菌的分離與鑒定及其降解特性研究16-25
  • 2.1 材料與方法16-17
  • 2.1.1 實驗設(shè)備16-17
  • 2.1.2 主要試劑及培養(yǎng)基17
  • 2.1.3 試劑配制17
  • 2.2 實驗方法17-20
  • 2.2.1 對硝基酚降解菌的分離篩選17-18
  • 2.2.2 降解菌的鑒定18-19
  • 2.2.3 菌株對PNP的降解特性研究19-20
  • 2.2.4 菌株的重金屬和抗生素耐性20
  • 2.3 結(jié)果與討論20-24
  • 2.3.1 PNP降解菌的分離與鑒定20-21
  • 2.3.2 分光光度法測定PNP濃度21
  • 2.3.3 不同初始PNP濃度對菌株生長的特性的影響21-22
  • 2.3.4 PN1的疏水性和通透性分析22-23
  • 2.3.5 PN1的重金屬及抗生素耐性分析23-24
  • 2.4 結(jié)論24-25
  • 第3章 PN1的熒光蛋白標(biāo)記及微宇宙實驗25-31
  • 3.1 材料與方法25-26
  • 3.1.1 實驗設(shè)備25
  • 3.1.2 主要試劑及培養(yǎng)基25-26
  • 3.1.3 試劑配制26
  • 3.2 實驗方法26-28
  • 3.2.1 PN-1 的熒光蛋白標(biāo)記26-27
  • 3.2.2 標(biāo)記假單胞菌PN1的穩(wěn)定性檢測27
  • 3.2.3 標(biāo)記假單胞菌PN1在微宇宙中的存活及降解活性27
  • 3.2.4 分析方法27-28
  • 3.3 結(jié)果與討論28-30
  • 3.3.1 熒光蛋白標(biāo)記結(jié)果及質(zhì)粒的穩(wěn)定性檢測28-29
  • 3.3.2 土壤微宇宙實驗29-30
  • 3.4 結(jié)論30-31
  • 第4章 PN1-gfp與苜蓿聯(lián)合修復(fù)PNP污染的土壤31-46
  • 4.1 材料與方法31-33
  • 4.1.1 實驗設(shè)備31
  • 4.1.2 培養(yǎng)基31-32
  • 4.1.3 試劑配制及種子的處理32-33
  • 4.2 實驗方法33-36
  • 4.2.1 PN1-gfp的植物促生特性鑒定33-34
  • 4.2.2 PN1-gfp的MS固體培養(yǎng)基試驗34-35
  • 4.2.3 PN1-gfp的盆栽試驗35-36
  • 4.2.4 分析方法36
  • 4.3 結(jié)果與討論36-45
  • 4.3.1 PN1-gfp的植物促生特性分析36-38
  • 4.3.2 PN1-gfp的MS固體培養(yǎng)基試驗分析38-41
  • 4.3.3 PN1-gfp的盆栽試驗分析41-45
  • 4.4 結(jié)論45-46
  • 第5章 結(jié)論與建議46-48
  • 5.1 結(jié)論46-47
  • 5.2 建議47-48
  • 參考文獻48-54
  • 攻讀碩士期間所取得的科研成果54-55
  • 致謝55

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