miR165/166對番茄形態(tài)建成的調控及對擬南芥逆境脅迫的響應
發(fā)布時間:2022-02-16 10:57
MicroRNA (miRNA)是一類長約22個核苷酸的內源性單鏈RNA分子,其本身并不具有開放閱讀框(Open Reading Frame, ORF)。研究發(fā)現miRNA廣泛存在于動物、植物以及微生物等生物體基因組中,在進化上具有保守性。miRNA具有調控生物體新陳代謝、生長發(fā)育、疾病發(fā)生、細胞程序性死亡等多方面的功能,是生物體內一類重要的小分子RNA。 miR165/166作為一類保守的植物miRNA,在擬南芥中主要通過與其靶基因HD-ZIPIII轉錄因子共同作用,調控分生組織的維持和發(fā)育、莖和葉片極性建成、果實形成等過程。已有研究報道HD-ZIPI基因家族參與植物逆境脅迫的響應過程,但有關HD-ZIPIII基因家族在植物逆境脅迫過程中的作用卻少有報道。因此,本文以番茄為材料,探究miR165/166在番茄形態(tài)建成中的功能;以擬南芥作為材料,探究miR165/166對逆境脅迫的響應。主要研究結果如下:1、番茄miR165/166組織特異性表達分析表明,miR165/166在花芽中表達量最多,然后依次是紅果、綠果、轉紅果、根、葉和莖,在花器官中表達量最少。2、通過葉盤轉化法獲得穩(wěn)定遺...
【文章來源】:山西農業(yè)大學山西省
【文章頁數】:48 頁
【學位級別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
第一章 前言
1. MicroRNA簡介
1.1 miRNA的生物合成
1.2 植物miRNA的調控機制
2. 植物miRNA的功能多樣性
2.1 miRNA參與植物生長發(fā)育
2.2 miRNA參與信號傳導過程
2.3 miRNA參與植物疾病過程
2.4 miRNA參與植物逆境脅迫的響應
3. miR165/166及其靶基因HD-ZIPⅢ的研究進展
4. miRNA減低表達新方法—STTM技術
5. 研究目的和意義
第二章 試驗材料與方法
1. 試驗材料、儀器及試劑
1.1 材料及培養(yǎng)條件
1.2 試驗儀器及試劑
1.3 主要溶液及試劑的配制
2 試驗方法
2.1 STTM165/166轉基因番茄的篩選及PCR鑒定
2.2 番茄不同組織中miR165/166及其靶基因表達的qRT-PCR檢測
2.3 番茄幼莖石蠟切片
2.4 擬南芥干旱脅迫
2.5 擬南芥鹽脅迫
第三章 結果與分析
1. 番茄miR165/166組織特異性表達分析
2. STTM165/166轉基因番茄的PCR鑒定
3. 轉基因番茄中STTM165/166、miR165/166及其靶基因的表達分析
4. STTM165/166轉基因番茄的表型
4.1 STTM165/166對番茄植株生長發(fā)育的影響
4.2 STTM165/166對番茄維管組織極性的影響
5. STTM165/166轉基因擬南芥對逆境脅迫的響應
5.1. miR165/166及其靶基因啟動子區(qū)逆境脅迫相關順式作用元件
5.2 PEG脅迫對miR165/166及其靶基因表達的影響
5.3 PEG脅迫對POD酶活性及MDA含量的影響
5.5 土壤干旱脅迫對擬南芥表型及葉綠素含量的影響
5.6 鹽脅迫對擬南芥表型的影響
第四章 討論
1 miR165/166在番茄種的表達特性
2 miR165/166及其靶基因對植物形態(tài)建成的調控
3 miR165/166在植物逆境脅迫響應中的作用
第五章 結論
參考文獻
Abstract
致謝
【參考文獻】:
期刊論文
[1]MicroRNA828負調控缺磷脅迫誘導的番茄花青素生物合成[J]. 賈小云,劉慧,沈潔,李芳,丁娜,孫巖,高昌勇,李潤植. 中國農業(yè)科學. 2015(15)
[2]植物HD-Zip轉錄因子的生物學功能[J]. 王宏,李剛波,張大勇,藺經,盛寶龍,韓金龍,常有宏. 遺傳. 2013(10)
[3]Short Tandem Target Mimic:A Long Journey to the Engineered Molecular Landmine for Selective Destruction/Blockage of MicroRNAs in Plants and Animals[J]. Guiliang Tang,Xiaoqing Tang. Journal of Genetics and Genomics. 2013(06)
[4]Effects of Water Stress on the Protective Enzyme Activities and Lipid Peroxidation in Roots and Leaves of Summer Maize[J]. GE Ti-da1, SUI Fang-gong1, BAI Li-ping2, LU Yin-yan1 and ZHOU Guang-sheng2 1 Department of Agronomy, Laiyang Agricultural College, Laiyang 265200, P.R.China 2 Laboratory of Quantitative Vegetation Ecology, Institute of Botany, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100093, P.R.China. Agricultural Sciences in China. 2006(04)
[5]Identification and characterization of new plant microRNAs using EST analysis[J]. George P.COBB1,Todd A.ANDERSON. Cell Research. 2005(05)
[6]植物葉綠素含量測定——丙酮乙醇混合液法[J]. 張憲政. 遼寧農業(yè)科學. 1986(03)
碩士論文
[1]鹽脅迫條件下青楊和旱柳miRNA表達變化研究[D]. 周婧.中國林業(yè)科學研究院 2010
本文編號:3627840
【文章來源】:山西農業(yè)大學山西省
【文章頁數】:48 頁
【學位級別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
第一章 前言
1. MicroRNA簡介
1.1 miRNA的生物合成
1.2 植物miRNA的調控機制
2. 植物miRNA的功能多樣性
2.1 miRNA參與植物生長發(fā)育
2.2 miRNA參與信號傳導過程
2.3 miRNA參與植物疾病過程
2.4 miRNA參與植物逆境脅迫的響應
3. miR165/166及其靶基因HD-ZIPⅢ的研究進展
4. miRNA減低表達新方法—STTM技術
5. 研究目的和意義
第二章 試驗材料與方法
1. 試驗材料、儀器及試劑
1.1 材料及培養(yǎng)條件
1.2 試驗儀器及試劑
1.3 主要溶液及試劑的配制
2 試驗方法
2.1 STTM165/166轉基因番茄的篩選及PCR鑒定
2.2 番茄不同組織中miR165/166及其靶基因表達的qRT-PCR檢測
2.3 番茄幼莖石蠟切片
2.4 擬南芥干旱脅迫
2.5 擬南芥鹽脅迫
第三章 結果與分析
1. 番茄miR165/166組織特異性表達分析
2. STTM165/166轉基因番茄的PCR鑒定
3. 轉基因番茄中STTM165/166、miR165/166及其靶基因的表達分析
4. STTM165/166轉基因番茄的表型
4.1 STTM165/166對番茄植株生長發(fā)育的影響
4.2 STTM165/166對番茄維管組織極性的影響
5. STTM165/166轉基因擬南芥對逆境脅迫的響應
5.1. miR165/166及其靶基因啟動子區(qū)逆境脅迫相關順式作用元件
5.2 PEG脅迫對miR165/166及其靶基因表達的影響
5.3 PEG脅迫對POD酶活性及MDA含量的影響
5.5 土壤干旱脅迫對擬南芥表型及葉綠素含量的影響
5.6 鹽脅迫對擬南芥表型的影響
第四章 討論
1 miR165/166在番茄種的表達特性
2 miR165/166及其靶基因對植物形態(tài)建成的調控
3 miR165/166在植物逆境脅迫響應中的作用
第五章 結論
參考文獻
Abstract
致謝
【參考文獻】:
期刊論文
[1]MicroRNA828負調控缺磷脅迫誘導的番茄花青素生物合成[J]. 賈小云,劉慧,沈潔,李芳,丁娜,孫巖,高昌勇,李潤植. 中國農業(yè)科學. 2015(15)
[2]植物HD-Zip轉錄因子的生物學功能[J]. 王宏,李剛波,張大勇,藺經,盛寶龍,韓金龍,常有宏. 遺傳. 2013(10)
[3]Short Tandem Target Mimic:A Long Journey to the Engineered Molecular Landmine for Selective Destruction/Blockage of MicroRNAs in Plants and Animals[J]. Guiliang Tang,Xiaoqing Tang. Journal of Genetics and Genomics. 2013(06)
[4]Effects of Water Stress on the Protective Enzyme Activities and Lipid Peroxidation in Roots and Leaves of Summer Maize[J]. GE Ti-da1, SUI Fang-gong1, BAI Li-ping2, LU Yin-yan1 and ZHOU Guang-sheng2 1 Department of Agronomy, Laiyang Agricultural College, Laiyang 265200, P.R.China 2 Laboratory of Quantitative Vegetation Ecology, Institute of Botany, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100093, P.R.China. Agricultural Sciences in China. 2006(04)
[5]Identification and characterization of new plant microRNAs using EST analysis[J]. George P.COBB1,Todd A.ANDERSON. Cell Research. 2005(05)
[6]植物葉綠素含量測定——丙酮乙醇混合液法[J]. 張憲政. 遼寧農業(yè)科學. 1986(03)
碩士論文
[1]鹽脅迫條件下青楊和旱柳miRNA表達變化研究[D]. 周婧.中國林業(yè)科學研究院 2010
本文編號:3627840
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