BioDeNO x 體系中Fe Ⅱ (EDTA)-NO的生物還原及N 2 O控逸研究
發(fā)布時間:2023-03-26 14:15
BioDeNOx是一種新的煙氣治理技術(shù),綜合了化學(xué)吸收和生物反硝化技術(shù),具有投資少、費用低、流程短、操作簡便等優(yōu)點,已得到了越來越多的關(guān)注。在BioDeNOx煙氣脫硝過程中,N20是一種主要的中間產(chǎn)物,研究表明N20能夠加劇溫室效應(yīng),破壞臭氧層,促進酸雨的形成等。因此研究BioDeNOx脫硝體系中FeⅡ(EDTA)-NO的生物還原及還原過程中N20的控逸,對于實現(xiàn)BioDeNOx的綠色應(yīng)用具有重要意義。 本研究以馴化后的污泥為接種污泥,研究了FeⅡ(EDTA)-NO生物還原及還原過程中N2O的生成、累積和轉(zhuǎn)化情況;同時利用PCR-DGGE技術(shù)研究分析FeⅡ(EDTA)-NO生物還原體系中微生物群落結(jié)構(gòu)的變化情況,取得了以下主要研究結(jié)論: 1)基于FeⅡ(EDTA)-NO對微生物具有一定的毒性,采取分階段馴化的方式,經(jīng)馴化后的污泥具有良好的FeⅡ(EDTA)-NO生物還原特性,最大去除濃度為5mmol·L-1,當(dāng)濃度超過5mmol·L-1, FeⅡ(EDTA)-NO去除率明顯低;FeⅡ(EDTA)-NO降解過程中,污泥生物量基本保持不變,經(jīng)研究發(fā)現(xiàn)其降解符合Michaels-menten...
【文章頁數(shù)】:98 頁
【學(xué)位級別】:碩士
【文章目錄】:
摘要
ABSTRACT
第一章 緒論
1.1 NOx的排放現(xiàn)狀及減排緊迫性
1.2 NOx治理技術(shù)的研究現(xiàn)狀
1.2.1 氣相反應(yīng)脫硝技術(shù)
1.2.2 吸附法
1.2.3 等離子體法
1.2.4 吸收法
1.2.5 生物法
1.2.6 絡(luò)合吸收-生物還原法
1.3 N2O危害及研究現(xiàn)狀
1.4 變性梯度凝膠電泳Bio-DGGE的原理和應(yīng)用
1.4.1 原理
1.4.2 應(yīng)用
1.5 課題研究意義及研究內(nèi)容
1.5.1 課題研究意義與目的
1.5.2 課題研究內(nèi)容
1.5.3 課題創(chuàng)新之處
1.5.4 課題來源
第二章 實驗材料與方法
2.1 實驗試劑與儀器
2.1.1 實驗試劑
2.1.2 實驗儀器
2.2 分析測試方法
2.2.1 FⅡ(EDTA)-NO濃度測定方法
2.2.2 N2O的測定
2.2.3 污泥生物量測定方法
2.3 污泥馴化與培養(yǎng)
2.3.1 污泥來源
2.3.2 基礎(chǔ)營養(yǎng)液配方
2.3.3 污泥的馴化和培養(yǎng)實驗
2.3.4 FeⅡ(EDTA)-NO溶液
2.3.5 FeⅡ(EDTA)-NO的生物還原實驗
2.4 微生物群落結(jié)構(gòu)與優(yōu)勢菌屬研究
2.4.1 DNA提取
2.4.2 PCR擴增
2.4.3 DGGE分析
2.4.4 割膠回收DNA片段和PCR擴增
2.4.5 16S rDNA測序及同源性比較
第三章 FeⅡ(EDTA)-NO的生物還原研究
3.1 污泥馴化
3.1.1 馴化第一階段
3.1.2 馴化第二階段
3.2 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中污泥生物量變化研究
3.2.1 污泥生物量隨時間變化規(guī)律
3.3 FeⅡ(EDTA)-NO生物降解速率研究
3.3.1 碳源對還原速率Vmax的影響
3.3.2 pH對還原速率Vmax的影響
3.3.3 溫度對還原速率Vmax的影響
3.4 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原中N2O產(chǎn)生途徑研究
3.4.1 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中N2O變化圖
3.4.2 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中氮素變化
3.5 本章小結(jié)
第四章 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中N2O的控逸研究
4.1 碳源對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.2 C/N對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.3 pH值對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.4 溫度對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.5 FⅡEDTA濃度對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.6 SO3
2-對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.7 本章小結(jié)
第五章 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中微生物群落結(jié)構(gòu)鑒定與分析
5.1 污泥馴化穩(wěn)定期間微生物群落結(jié)構(gòu)研究
5.1.1 不同馴化時間段下樣品的采集
5.1.2 樣品基因組DNA提取和PCR擴增
5.1.3 樣品DGGE分析
5.1.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
5.2 不同碳源條件下微生物群落結(jié)構(gòu)變化
5.2.1 不同碳源條件下的污泥樣品采集
5.2.2 樣品基因組DNA的提取和PCR擴增
5.2.3 樣品Bio-DGGE條帶分析
5.2.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
5.3 不同C/N比條件下微生物群落結(jié)構(gòu)變化
5.3.1 不同C/N條件下樣品采集
5.3.2 樣品基因組DNA的提取和PCR擴增
5.3.3 樣品Bio-DGGE條帶分析
5.3.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
5.4 不同pH值條件下微生物群落結(jié)構(gòu)變化
5.4.1 不同pH條件下樣品采集
5.4.2 樣品基因組DNA的提取和PCR擴增
5.4.3 樣品Bio-DGGE條帶分析
5.4.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
第六章 結(jié)論與建議
6.1 結(jié)論
6.2 建議和展望
參考文獻
致謝
攻讀學(xué)位期間發(fā)表的學(xué)術(shù)論文目錄
本文編號:3771115
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【學(xué)位級別】:碩士
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摘要
ABSTRACT
第一章 緒論
1.1 NOx的排放現(xiàn)狀及減排緊迫性
1.2 NOx治理技術(shù)的研究現(xiàn)狀
1.2.1 氣相反應(yīng)脫硝技術(shù)
1.2.2 吸附法
1.2.3 等離子體法
1.2.4 吸收法
1.2.5 生物法
1.2.6 絡(luò)合吸收-生物還原法
1.3 N2O危害及研究現(xiàn)狀
1.4 變性梯度凝膠電泳Bio-DGGE的原理和應(yīng)用
1.4.1 原理
1.4.2 應(yīng)用
1.5 課題研究意義及研究內(nèi)容
1.5.1 課題研究意義與目的
1.5.2 課題研究內(nèi)容
1.5.3 課題創(chuàng)新之處
1.5.4 課題來源
第二章 實驗材料與方法
2.1 實驗試劑與儀器
2.1.1 實驗試劑
2.1.2 實驗儀器
2.2 分析測試方法
2.2.1 FⅡ(EDTA)-NO濃度測定方法
2.2.2 N2O的測定
2.2.3 污泥生物量測定方法
2.3 污泥馴化與培養(yǎng)
2.3.1 污泥來源
2.3.2 基礎(chǔ)營養(yǎng)液配方
2.3.3 污泥的馴化和培養(yǎng)實驗
2.3.4 FeⅡ(EDTA)-NO溶液
2.3.5 FeⅡ(EDTA)-NO的生物還原實驗
2.4 微生物群落結(jié)構(gòu)與優(yōu)勢菌屬研究
2.4.1 DNA提取
2.4.2 PCR擴增
2.4.3 DGGE分析
2.4.4 割膠回收DNA片段和PCR擴增
2.4.5 16S rDNA測序及同源性比較
第三章 FeⅡ(EDTA)-NO的生物還原研究
3.1 污泥馴化
3.1.1 馴化第一階段
3.1.2 馴化第二階段
3.2 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中污泥生物量變化研究
3.2.1 污泥生物量隨時間變化規(guī)律
3.3 FeⅡ(EDTA)-NO生物降解速率研究
3.3.1 碳源對還原速率Vmax的影響
3.3.2 pH對還原速率Vmax的影響
3.3.3 溫度對還原速率Vmax的影響
3.4 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原中N2O產(chǎn)生途徑研究
3.4.1 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中N2O變化圖
3.4.2 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中氮素變化
3.5 本章小結(jié)
第四章 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中N2O的控逸研究
4.1 碳源對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.2 C/N對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.3 pH值對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.4 溫度對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.5 FⅡEDTA濃度對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.6 SO3
2-對N2O累積及轉(zhuǎn)化率的影響
4.7 本章小結(jié)
第五章 FeⅡ(EDTA)-NO生物還原過程中微生物群落結(jié)構(gòu)鑒定與分析
5.1 污泥馴化穩(wěn)定期間微生物群落結(jié)構(gòu)研究
5.1.1 不同馴化時間段下樣品的采集
5.1.2 樣品基因組DNA提取和PCR擴增
5.1.3 樣品DGGE分析
5.1.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
5.2 不同碳源條件下微生物群落結(jié)構(gòu)變化
5.2.1 不同碳源條件下的污泥樣品采集
5.2.2 樣品基因組DNA的提取和PCR擴增
5.2.3 樣品Bio-DGGE條帶分析
5.2.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
5.3 不同C/N比條件下微生物群落結(jié)構(gòu)變化
5.3.1 不同C/N條件下樣品采集
5.3.2 樣品基因組DNA的提取和PCR擴增
5.3.3 樣品Bio-DGGE條帶分析
5.3.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
5.4 不同pH值條件下微生物群落結(jié)構(gòu)變化
5.4.1 不同pH條件下樣品采集
5.4.2 樣品基因組DNA的提取和PCR擴增
5.4.3 樣品Bio-DGGE條帶分析
5.4.4 樣品DGGE割膠條帶測序結(jié)果分析
第六章 結(jié)論與建議
6.1 結(jié)論
6.2 建議和展望
參考文獻
致謝
攻讀學(xué)位期間發(fā)表的學(xué)術(shù)論文目錄
本文編號:3771115
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