目的探明腦泰方Ⅱ號含藥血清對LPS誘導(dǎo)的HAPI小膠質(zhì)細(xì)胞形態(tài)、M1/M2型極化標(biāo)記分子及炎性因子的影響。方法建立LPS誘導(dǎo)的HAPI細(xì)胞炎癥模型,將培養(yǎng)的細(xì)胞分為:空白組、LPS模型組、腦泰方Ⅱ號組、米諾環(huán)素組。高內(nèi)涵觀察細(xì)胞形態(tài)與數(shù)量的變化,Real-time PCR檢測M1型標(biāo)志分子MHCⅡ、iNOS、MCP-1、CD11b,M2型標(biāo)志分子Arg1、Mrc1、Ym1,促炎性因子IL-1β、IL-6、IL-12、TNF-α,抗炎性因子IL-4、IL-10、TGF-βmRNA水平。結(jié)果與正常組比較,LPS模型組細(xì)胞胞體變大,并呈多極化或阿米巴型,突觸變粗變短;其M1型標(biāo)記分子與促炎性因子的mRNA水平顯著升高(P<0.01);而M2型標(biāo)記分子Mrc1與抗炎性因子IL-4、TGF-β的mRNA水平顯著降低(P<0.01)。經(jīng)腦泰方Ⅱ號干預(yù)后,細(xì)胞胞體脹大部分恢復(fù),突觸變長,且細(xì)胞數(shù)量增多;M1型標(biāo)記分子MHCⅡ、iNOS、CD11b與促炎性因子的mRNA水平顯著降低(P<0.01), M2型標(biāo)記分子與抗炎性因子的mRNA水平顯著升高(P<0.01)。與米諾環(huán)素組...

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【文章目錄】：
1 材料
    1.1 細(xì)胞株
    1.2 動物
    1.3 倫理審查
    1.4 藥物與試劑
    1.5 主要儀器及設(shè)備
2 方法
    2.1 細(xì)胞培養(yǎng)
    2.2 含藥血清的制備
    2.3 細(xì)胞分組及處理
    2.4 免疫熒光染色
    2.5 qRT-PCR法檢測各分子mRNA水平
    2.6 統(tǒng)計(jì)方法
3 結(jié)果
    3.1 腦泰方Ⅱ號對LPS誘導(dǎo)的HAPI細(xì)胞形態(tài)的影響
    3.2 腦泰方Ⅱ號對M1型標(biāo)志分子MHCⅡ、iNOS、MCP-1、CD11b mRNA水平的調(diào)節(jié)作用
    3.3 腦泰方Ⅱ號對促炎性因子IL-1β、IL-6、IL-12、TNF-α mRNA水平的影響
    3.4 腦泰方Ⅱ號對M2型標(biāo)志分子Arg1、Mrc1、Ym1 mRNA水平的影響
    3.5 腦泰方Ⅱ號對抗炎性因子IL-10、IL-4、TGF-β mRNA水平的干預(yù)作用
4 討論



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