T-2毒素誘導(dǎo)的細胞線粒體毒性作用研究
發(fā)布時間:2023-04-26 21:54
T-2毒素是由鐮刀菌(Fusarium)產(chǎn)生的一種次級代謝產(chǎn)物,也是A類單端孢霉烯族毒素中毒性最強的一種。T-2毒素在自然界中分布非常廣泛,在田間生長的作物如大麥、小麥、燕麥、黑麥和玉米,以及儲存的谷物都是T-2毒素的污染對象。動物在攝入污染了T-2毒素的飼料后能引起多種毒性作用,腸道和肝臟對T-2毒素尤其敏感。T-2毒素能夠降低動物的食欲和增重,引起嚴重的經(jīng)濟損失。T-2毒素還可能通過食物鏈進入人們的餐桌,因此對動物和食品動物消費者的健康都具有較大的威脅。T-2毒素對食品動物的一個重要毒性作用是生長抑制效應(yīng)。動物在長期低劑量攝入T-2毒素污染的飼料后會引起慢性毒性作用,包括食欲不振、生長發(fā)育遲緩、體重降低等,并導(dǎo)致動物飼料利用率明顯降低,給養(yǎng)殖業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟損失。雖然目前對T-2毒素引起的動物生長抑制有一定的研究,但總的來說,T-2毒素對動物生長抑制的作用機制還不清楚。研究表明T-2毒素可能通過改變大腦中五羥色胺(5-hydroxytryptamine,5-HT)水平,降低動物的食欲;或者通過抑制動物腸上皮細胞的增殖,損害腸道微絨毛,導(dǎo)致腸道營養(yǎng)吸收受阻。本實驗室前期對T-2毒素的...
【文章頁數(shù)】:257 頁
【學(xué)位級別】:博士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
縮略語表
1 前言
1.1 立題依據(jù)
1.2 研究進展
1.2.1 單端孢霉烯族毒素概述
1.2.2 T-2毒素概述
1.2.3 T-2毒素分子作用靶點研究進展
1.2.4 T-2毒素誘導(dǎo)線粒體損傷和氧化應(yīng)激研究進展
1.2.5 轉(zhuǎn)錄因子NRF-2的研究進展
1.3 研究內(nèi)容和目標
1.3.1 研究內(nèi)容
1.3.2 研究目標
2 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體氧化應(yīng)激和功能變化研究
2.1 材料與方法
2.1.1 細胞株
2.1.2 主要試劑
2.1.3 溶液配制
2.1.4 主要儀器
2.1.5 細胞培養(yǎng)
2.1.6 CCK-8法檢測T-2毒素對GH3細胞活力影響
2.1.7 細胞內(nèi)氧自由基檢測
2.1.8 ELISA法檢測細胞內(nèi)8-OHdG含量
2.1.9 細胞GSH含量檢測
2.1.10 抗氧化酶SOD活性檢測
2.1.11 細胞線粒體膜電位ΔΨm檢測
2.1.12 細胞mt-DNA拷貝數(shù)檢測
2.1.13 細胞線粒體ATP水平檢測
2.1.14 細胞呼吸鏈復(fù)合物I酶活性檢測
2.1.15 透射電鏡觀察GH3細胞形態(tài)
2.1.16 細胞凋亡檢測
2.1.17 qRT-PCR檢測相關(guān)基因的mRNA表達
2.1.18 統(tǒng)計學(xué)分析
2.2 結(jié)果
2.2.1 GH3細胞的培養(yǎng)
2.2.2 細胞總RNA質(zhì)量鑒定
2.2.3 T-2毒素對GH3細胞毒性
2.2.4 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體氧化應(yīng)激
2.2.5 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體功能變化
2.2.6 T-2毒素激活線粒體依賴的細胞凋亡
2.3 討論
2.3.1 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞氧化應(yīng)激并激活抗氧化系統(tǒng)
2.3.2 線粒體是T-2毒素另一個重要的分子作用靶點
2.3.3 T-2毒素激活GH3細胞線粒體生物合成
2.4 小結(jié)
3 線粒體呼吸鏈核心鐵硫蛋白亞基Ndufs3的功能研究
3.1 材料與方法
3.1.1 細胞株
3.1.2 質(zhì)粒
3.1.3 主要試劑
3.1.4 溶液配制
3.1.5 主要儀器
3.1.6 細胞復(fù)蘇、傳代和凍存
3.1.7 利用siRNA干擾Ndufs3基因表達
3.1.8 Ndufs3過表達實驗
3.1.9 Western blot方法測定蛋白表達水平
3.1.10 qRT-PCR檢測RNA干擾水平
3.1.11 檢測線粒體超氧自由基、ΔΨm和ATP水平
3.1.12 統(tǒng)計學(xué)分析
3.2 結(jié)果與分析
3.2.1 siRNA轉(zhuǎn)染效果和RNA干擾Ndufs3效果評價
3.2.2 敲低Ndufs3增加線粒體超氧自由基產(chǎn)生
3.2.3 敲低Ndufs3抑制線粒體呼吸鏈復(fù)合物I活性
3.2.4 敲低Ndufs3降低細胞線粒體ΔΨm
3.2.5 敲低Ndufs3不改變線粒體ATP水平
3.2.6 通過pcDNA-3.1+載體在GH3細胞中過表達Ndufs
3.2.7 pcDNA3.1+-Ndufs3重組載體構(gòu)建
3.2.8 Ndufs3過表達驗證
3.2.9 過表達Ndufs3不改變線粒體超氧自由基
3.2.10 過表達Ndufs3不影響線粒體ΔΨm
3.2.11 過表達Ndufs3不改變線粒體ATP產(chǎn)生
3.3 討論
3.3.1 Ndufs3能夠維持GH3細胞線粒體功能穩(wěn)定
3.3.2 Ndufs3過表達不能保護線粒體功能
3.4 小結(jié)
4 核呼吸因子2在T-2毒素誘導(dǎo)線粒體功能變化中的作用研究
4.1 材料與方法
4.1.1 細胞株
4.1.2 質(zhì)粒
4.1.3 主要試劑
4.1.4 溶液配制
4.1.5 主要儀器
4.1.6 細胞復(fù)蘇、傳代和凍存
4.1.7 間接免疫熒光試驗
4.1.8 抑制劑篩選調(diào)控NRF-2的信號通路
4.1.9 慢病毒構(gòu)建NRF-2沉默細胞株
4.1.10 染色質(zhì)免疫共沉淀
4.1.11 Western blot和qRT-PCR確定NRF-2干擾效率
4.1.12 ROS、ATP、復(fù)合物I活性和mt-DNA拷貝數(shù)檢測
4.2 結(jié)果與分析
4.2.1 NRF-2在GH3細胞中定位在細胞核
4.2.2 T-2處理GH3細胞后增加NRF-2表達
4.2.3 調(diào)控NRF-2表達的上游信號通路
4.2.4 敲低NRF-2改變GH3細胞線粒體功能
4.2.5 ChIP結(jié)合PCR和高通量測序確定NRF-2靶基因
4.2.6 敲低NRF-2抑制靶基因的表達
4.3 討論
4.3.1 T-2毒素誘導(dǎo)NRF-2核內(nèi)表達
4.3.2 NRF-2參與了T-2毒素誘導(dǎo)的線粒體功能變化
4.3.3 NRF-2控制線粒體靶基因的表達進而影響線粒體功能
4.3.4 NRF-2通過其他形式來影響線粒體
4.3.5 NRF-2可能參與的其他功能
4.4 小結(jié)
5 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞自噬和線粒體自噬
5.1 材料與方法
5.1.1 細胞株
5.1.2 主要試劑
5.1.3 溶液配制
5.1.4 主要儀器
5.1.5 細胞復(fù)蘇、傳代和凍存
5.1.6 通過腺相關(guān)病毒在GH3中穩(wěn)定表達mRFP-GFP-LC
5.1.7 GH3細胞中細胞自噬的觀察
5.1.8 RNA干擾線粒體自噬基因Atg5、Pink1和NIX
5.1.9 GH3細胞中穩(wěn)定表達Mito7-mKeima蛋白
5.1.10 通過Mito7-mKeima確定線粒體自噬
5.1.11 透射電鏡觀察線粒體自噬
5.1.12 qRT-PCR檢測線粒體融合與分裂基因表達
5.1.13 線粒體ATP和細胞凋亡分析
5.1.14 siRNA轉(zhuǎn)染GH3細胞沉默Nrf2基因
5.1.15 統(tǒng)計學(xué)分析
5.2 結(jié)果與分析
5.2.1 AAV病毒包裝和感染GH3細胞
5.2.2 T-2毒素能夠誘導(dǎo)GH3細胞自噬
5.2.3 Atg5介導(dǎo)T-2毒素誘導(dǎo)的GH3細胞自噬
5.2.4 表達Mito7-mKeima的慢病毒包裝和感染GH3細胞
5.2.5 T-2毒素能夠誘導(dǎo)GH3細胞線粒體自噬
5.2.6 Atg5介導(dǎo)T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體自噬
5.2.7 透射電鏡觀察T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體自噬
5.2.8 T-2毒素誘導(dǎo)線粒體自噬關(guān)鍵基因表達
5.2.9 cAMP-PKA-CREB-Nrf2-Pink1調(diào)控GH3細胞線粒體自噬
5.2.10 抑制線粒體自噬降低GH3細胞線粒體功能
5.2.11 抑制線粒體自噬促進T-2毒素誘導(dǎo)的細胞凋亡
5.3 討論
5.3.1 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞自噬和線粒體自噬
5.3.2 cAMP-PKA-CREB-Nrf2-Pink1是調(diào)控線粒體自噬的通路
5.3.3 線粒體自噬保護GH3細胞線粒體功能并降低細胞死亡
5.4 小結(jié)
6 全文創(chuàng)新性總結(jié)
7 單端孢霉烯族毒素引起的線粒體毒性研究進展(綜述)
參考文獻
致謝
附錄
本文編號:3802257
【文章頁數(shù)】:257 頁
【學(xué)位級別】:博士
【文章目錄】:
摘要
Abstract
縮略語表
1 前言
1.1 立題依據(jù)
1.2 研究進展
1.2.1 單端孢霉烯族毒素概述
1.2.2 T-2毒素概述
1.2.3 T-2毒素分子作用靶點研究進展
1.2.4 T-2毒素誘導(dǎo)線粒體損傷和氧化應(yīng)激研究進展
1.2.5 轉(zhuǎn)錄因子NRF-2的研究進展
1.3 研究內(nèi)容和目標
1.3.1 研究內(nèi)容
1.3.2 研究目標
2 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體氧化應(yīng)激和功能變化研究
2.1 材料與方法
2.1.1 細胞株
2.1.2 主要試劑
2.1.3 溶液配制
2.1.4 主要儀器
2.1.5 細胞培養(yǎng)
2.1.6 CCK-8法檢測T-2毒素對GH3細胞活力影響
2.1.7 細胞內(nèi)氧自由基檢測
2.1.8 ELISA法檢測細胞內(nèi)8-OHdG含量
2.1.9 細胞GSH含量檢測
2.1.10 抗氧化酶SOD活性檢測
2.1.11 細胞線粒體膜電位ΔΨm檢測
2.1.12 細胞mt-DNA拷貝數(shù)檢測
2.1.13 細胞線粒體ATP水平檢測
2.1.14 細胞呼吸鏈復(fù)合物I酶活性檢測
2.1.15 透射電鏡觀察GH3細胞形態(tài)
2.1.16 細胞凋亡檢測
2.1.17 qRT-PCR檢測相關(guān)基因的mRNA表達
2.1.18 統(tǒng)計學(xué)分析
2.2 結(jié)果
2.2.1 GH3細胞的培養(yǎng)
2.2.2 細胞總RNA質(zhì)量鑒定
2.2.3 T-2毒素對GH3細胞毒性
2.2.4 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體氧化應(yīng)激
2.2.5 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體功能變化
2.2.6 T-2毒素激活線粒體依賴的細胞凋亡
2.3 討論
2.3.1 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞氧化應(yīng)激并激活抗氧化系統(tǒng)
2.3.2 線粒體是T-2毒素另一個重要的分子作用靶點
2.3.3 T-2毒素激活GH3細胞線粒體生物合成
2.4 小結(jié)
3 線粒體呼吸鏈核心鐵硫蛋白亞基Ndufs3的功能研究
3.1 材料與方法
3.1.1 細胞株
3.1.2 質(zhì)粒
3.1.3 主要試劑
3.1.4 溶液配制
3.1.5 主要儀器
3.1.6 細胞復(fù)蘇、傳代和凍存
3.1.7 利用siRNA干擾Ndufs3基因表達
3.1.8 Ndufs3過表達實驗
3.1.9 Western blot方法測定蛋白表達水平
3.1.10 qRT-PCR檢測RNA干擾水平
3.1.11 檢測線粒體超氧自由基、ΔΨm和ATP水平
3.1.12 統(tǒng)計學(xué)分析
3.2 結(jié)果與分析
3.2.1 siRNA轉(zhuǎn)染效果和RNA干擾Ndufs3效果評價
3.2.2 敲低Ndufs3增加線粒體超氧自由基產(chǎn)生
3.2.3 敲低Ndufs3抑制線粒體呼吸鏈復(fù)合物I活性
3.2.4 敲低Ndufs3降低細胞線粒體ΔΨm
3.2.5 敲低Ndufs3不改變線粒體ATP水平
3.2.6 通過pcDNA-3.1+載體在GH3細胞中過表達Ndufs
3.2.7 pcDNA3.1+-Ndufs3重組載體構(gòu)建
3.2.8 Ndufs3過表達驗證
3.2.9 過表達Ndufs3不改變線粒體超氧自由基
3.2.10 過表達Ndufs3不影響線粒體ΔΨm
3.2.11 過表達Ndufs3不改變線粒體ATP產(chǎn)生
3.3 討論
3.3.1 Ndufs3能夠維持GH3細胞線粒體功能穩(wěn)定
3.3.2 Ndufs3過表達不能保護線粒體功能
3.4 小結(jié)
4 核呼吸因子2在T-2毒素誘導(dǎo)線粒體功能變化中的作用研究
4.1 材料與方法
4.1.1 細胞株
4.1.2 質(zhì)粒
4.1.3 主要試劑
4.1.4 溶液配制
4.1.5 主要儀器
4.1.6 細胞復(fù)蘇、傳代和凍存
4.1.7 間接免疫熒光試驗
4.1.8 抑制劑篩選調(diào)控NRF-2的信號通路
4.1.9 慢病毒構(gòu)建NRF-2沉默細胞株
4.1.10 染色質(zhì)免疫共沉淀
4.1.11 Western blot和qRT-PCR確定NRF-2干擾效率
4.1.12 ROS、ATP、復(fù)合物I活性和mt-DNA拷貝數(shù)檢測
4.2 結(jié)果與分析
4.2.1 NRF-2在GH3細胞中定位在細胞核
4.2.2 T-2處理GH3細胞后增加NRF-2表達
4.2.3 調(diào)控NRF-2表達的上游信號通路
4.2.4 敲低NRF-2改變GH3細胞線粒體功能
4.2.5 ChIP結(jié)合PCR和高通量測序確定NRF-2靶基因
4.2.6 敲低NRF-2抑制靶基因的表達
4.3 討論
4.3.1 T-2毒素誘導(dǎo)NRF-2核內(nèi)表達
4.3.2 NRF-2參與了T-2毒素誘導(dǎo)的線粒體功能變化
4.3.3 NRF-2控制線粒體靶基因的表達進而影響線粒體功能
4.3.4 NRF-2通過其他形式來影響線粒體
4.3.5 NRF-2可能參與的其他功能
4.4 小結(jié)
5 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞自噬和線粒體自噬
5.1 材料與方法
5.1.1 細胞株
5.1.2 主要試劑
5.1.3 溶液配制
5.1.4 主要儀器
5.1.5 細胞復(fù)蘇、傳代和凍存
5.1.6 通過腺相關(guān)病毒在GH3中穩(wěn)定表達mRFP-GFP-LC
5.1.7 GH3細胞中細胞自噬的觀察
5.1.8 RNA干擾線粒體自噬基因Atg5、Pink1和NIX
5.1.9 GH3細胞中穩(wěn)定表達Mito7-mKeima蛋白
5.1.10 通過Mito7-mKeima確定線粒體自噬
5.1.11 透射電鏡觀察線粒體自噬
5.1.12 qRT-PCR檢測線粒體融合與分裂基因表達
5.1.13 線粒體ATP和細胞凋亡分析
5.1.14 siRNA轉(zhuǎn)染GH3細胞沉默Nrf2基因
5.1.15 統(tǒng)計學(xué)分析
5.2 結(jié)果與分析
5.2.1 AAV病毒包裝和感染GH3細胞
5.2.2 T-2毒素能夠誘導(dǎo)GH3細胞自噬
5.2.3 Atg5介導(dǎo)T-2毒素誘導(dǎo)的GH3細胞自噬
5.2.4 表達Mito7-mKeima的慢病毒包裝和感染GH3細胞
5.2.5 T-2毒素能夠誘導(dǎo)GH3細胞線粒體自噬
5.2.6 Atg5介導(dǎo)T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體自噬
5.2.7 透射電鏡觀察T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞線粒體自噬
5.2.8 T-2毒素誘導(dǎo)線粒體自噬關(guān)鍵基因表達
5.2.9 cAMP-PKA-CREB-Nrf2-Pink1調(diào)控GH3細胞線粒體自噬
5.2.10 抑制線粒體自噬降低GH3細胞線粒體功能
5.2.11 抑制線粒體自噬促進T-2毒素誘導(dǎo)的細胞凋亡
5.3 討論
5.3.1 T-2毒素誘導(dǎo)GH3細胞自噬和線粒體自噬
5.3.2 cAMP-PKA-CREB-Nrf2-Pink1是調(diào)控線粒體自噬的通路
5.3.3 線粒體自噬保護GH3細胞線粒體功能并降低細胞死亡
5.4 小結(jié)
6 全文創(chuàng)新性總結(jié)
7 單端孢霉烯族毒素引起的線粒體毒性研究進展(綜述)
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致謝
附錄
本文編號:3802257
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