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RNA m6A共轉錄調控組蛋白H3K9me2去甲基化的作用和機制研究

發(fā)布時間:2022-02-04 21:37
  m6A是mRNA和lncRNA上一種廣泛存在的修飾,它從酵母到人等多個物種中都保守存在且其共有基序為RRm6ACH(R=G or A,H=A,C or U)[1-3]。m6A通過其核心甲基化轉移酶復合物METTL3-METTL14共轉錄產(chǎn)生[4-6],并且被去甲基化酶FTO/ALKBH5去除[2,7]。m6A可以被含有YTH結構域的家族蛋白所識別從而調控多種轉錄后過程。m6A的失調會導致多個關鍵的生物學過程失衡[8]。越來越多的證據(jù)證明了轉錄這個過程能夠調控染色質的動態(tài)變化[9,10]。但共轉錄產(chǎn)生的m6A對染色質的直接調節(jié)作用仍然未知。表觀基因組的動態(tài)變化對于基因在發(fā)育和健康生理過程中的正確表達至關重要[11-15]。其中轉錄是這個過程的核心[10,16-20]。轉錄整合了染色質結構和修飾變化帶來的細胞信號,轉錄復合物以及mRNA修飾,如共轉錄發(fā)生的m6A修飾。然而動態(tài)表觀基因組有機整合這幾方面信息的作用和機制尚未闡明,基于此,我們對組蛋白修飾與共轉錄的RNA m6A修飾進行了研究。首先,我們建立了一個篩選組蛋白修飾的報告系統(tǒng),發(fā)現(xiàn)當轉錄本上發(fā)生了m6A修飾時,對應的染色質上抑制型組... 

【文章來源】:南方醫(yī)科大學廣東省

【文章頁數(shù)】:137 頁

【學位級別】:博士

【部分圖文】:

RNA m6A共轉錄調控組蛋白H3K9me2去甲基化的作用和機制研究


圖1-5:?m6A代表性的識別蛋白功能結構域示意圖n37]

示意圖,示意圖,甲基化,位點


??m?(C?一*?丁?transition)?^??Truncation?at?6mA?sites????I?Prepare?cDNA?library??Peaks?of?sequencing?reads?I?Subject?to?sequencing??indicate?regions?of?6mA?y??Detect?individual?6mA?sites??GAC-?■■■■?? ̄ ̄?Mutations??c??ZIZ?Truncations??圖1-6:?MeRIP和miCLIP的示意圖【137]??A:?m6A甲基化在全基因組范圍內檢測方法,MeRIP和miCLIP方法大致過程的示意圖。在??這兩種方法中,細胞RNA被打斷進行片段化并且和識別m6A的抗體孵育。在MeR[P方法??中,甲基化的RNA通過抗體-磁珠復合物直接被免疫共沉淀下來,然后這些結合下來的甲基??化的RNA被蛋白酶K消化下來或者通過游離的m6A單體競爭性洗脫下來。洗脫下來的片??段化的RNA即可進行高通量測序。測序的reads會在m6A位點附近富集,這樣可以對一個??或者多個m6A位點進行預測出大約]00-200nt范圍的m6A?peak。5’端的RNA富集可能是??m6A,也可能是m6Am。(b)在mi-CLIP實驗中,在做免疫共沉淀之前,先把m6A抗體和甲??基化的RNA交聯(lián)起來,這樣通過蛋白酶K消化后,甲基化的RNA會留下一個小的交聯(lián)產(chǎn)??物,在后續(xù)逆轉錄反應時會導致甲基化位點附近發(fā)生截斷或者突變,然后擴增產(chǎn)生的cDNA??進行二代測序,通過檢測測序reads中突變和截斷位點來判斷單個m6A和m6Am位點。??

序列,系統(tǒng)圖,模式圖,序列


?博士學位論文???A??廣?—? ̄?X??^?c〇ntral?QB?atg?p〇"'?S//??|?<g?I?-■?j??1?^?13^?m6A?//'gn?^c?^c?^c?m//??l?w? ̄??J??,nucleosome?#?H3K9me2?modification??Other?histone?modification?^?m6A?^?RNA?—-?■?PCR?primer??圖3-1:?m6A報告系統(tǒng)和對照報告系統(tǒng)的模式圖??A:篩選能相應m6A的表觀修飾的報告系統(tǒng)圖,含有m6Amotif(GGAC)和對照序列(GGTC)??的外源質粒定點整合到宿主細胞基因組中。??Figure?3-1:?The?schematic?of?m6A?reporter?and?control?reporter??A:?Schematic?of?epigenetic?screening?system?to?monitor?response?to?m6A.?Plasmids?with?either??GGAC?(m6A?consensus?motif)?or?GGTC?(control?motif)?were?integrated?into?Flp-In?HEK293?cells.??然后對這兩株單克隆細胞進行檢測(3-2A,?2B),證明其插入序列確實在FRT??定點插入的位置,而排除隨機插入的可能;通過DNA凝膠電泳結果可以看出來,??定點陽性引物在兩個報告組中都能檢測到陽性條帶(3-2A),而表達質粒原始引??物在兩個報告組中均位陰性,說明沒有隨機插入(3-2B);然后對這兩株細胞進??行do

【參考文獻】:
期刊論文
[1]Recruitment and reinforcement: maintaining epigenetic silencing[J]. Chengzhi Wang,Bing Zhu,Jun Xiong.  Science China(Life Sciences). 2018(05)



本文編號:3613986

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