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SIGLRs和SICaMs在調(diào)控番茄低溫抗性中的機制研究

發(fā)布時間:2021-03-06 18:16
  低溫脅迫嚴(yán)重影響了番茄(Solanum lycopericum)等喜溫作物的產(chǎn)量和品質(zhì),極大地限制了蔬菜的周年生產(chǎn)和供應(yīng)?朔苑褳榇淼拇笞谑卟嗽诙杭竟(jié)設(shè)施栽培中的低溫脅迫障礙是當(dāng)下亟待解決的問題;诖,剖析蔬菜作物對低溫的應(yīng)答機制,挖掘低溫響應(yīng)的關(guān)鍵因子,進而通過基因編輯、植物生長調(diào)節(jié)劑、環(huán)境調(diào)控等手段,誘導(dǎo)蔬菜作物的低溫抗性,對提高蔬菜產(chǎn)量、品質(zhì)和經(jīng)濟效益,保障周年生產(chǎn)和供應(yīng)具有十分重要的科學(xué)意義和現(xiàn)實意義。本論文以番茄為研究對象,利用遺傳學(xué)、分子生物學(xué)、植物生理學(xué)、生物化學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)等手段,明確了冷馴化及后續(xù)低溫過程中的關(guān)鍵因子及其響應(yīng)動態(tài)變化;篩選了冷馴化誘導(dǎo)的番茄低溫抗性過程中類谷氨酸受體(Glutamate receptor-like,GLRs)家族中關(guān)鍵作用基因;探討了 GLR3.3和GLR3.5以及關(guān)鍵因子H2O2和GSH的相互關(guān)系;篩選了低溫過程中鈣調(diào)素(Calmodulin,CaMs)家族中的關(guān)鍵作用基因,并利用轉(zhuǎn)錄組分析了低溫過程中的差異基因及其功能。主要研究結(jié)果如下:第一,明確了冷馴化能夠誘導(dǎo)番茄的低溫抗性,且與H202和GSH積累有關(guān)。進一步細化了冷馴... 

【文章來源】:浙江大學(xué)浙江省 211工程院校 985工程院校 教育部直屬院校

【文章頁數(shù)】:131 頁

【學(xué)位級別】:博士

【部分圖文】:

SIGLRs和SICaMs在調(diào)控番茄低溫抗性中的機制研究


圖1.1楦物中可能的低溫感受器模型(Liuetal.,2018)

效果圖,低溫脅迫,番茄,效果


低溫脅迫處理5天后,未馴化組植株嚴(yán)重萎蔫,光系統(tǒng)II最大光化學(xué)效率Fv/Pm??下降到0.25左右,膜脂受到嚴(yán)重損傷,電解質(zhì)嚴(yán)重滲漏,相對電導(dǎo)率高達80%??(圖2.1A,?B,C)。而經(jīng)過冷馴化的番茄幼苗較未馴化組植株相比,表現(xiàn)出較高??的低溫抗性,4°C低溫脅迫處理5天后,植株并未萎蔫,Fv/Fw提高,而相對電??導(dǎo)率顯著降低(圖2.1A,?B,?C)。這些結(jié)果表明,冷馴化顯著提高了番茄的低溫??抗性,降低了低溫對植物光系統(tǒng)的損傷,緩解了低溫造成的膜脂傷害。??21??

時間曲線,低溫脅迫,動態(tài)變化


本實驗室前人已報道H202在冷馴化提高番茄低溫抗性中起重要作用。為了??細化冷馴化過程中h2〇2積累的變化,測定了對照組、冷馴化組以及未馴化組h2o2??含量的時間曲線(圖2.2A)。結(jié)果表明,當(dāng)植株處于正常生長環(huán)境時,H2〇2含量??基本保持穩(wěn)定。冷馴化姐植株,從冷馴化處理的第一天起,H202即開始積累,到??冷馴化處理的第三天到達峰值,隨后低溫脅迫過程中,H202含量趦于穩(wěn)定。而未??馴化組植株在4°C低溫下,H202含量持續(xù)上升,4°C處理5天后,未馴化組植株??H202含量較冷馴化組高出73.8%?(圖2.2A)。同時,利用qRT-PCR技術(shù),我們??分析了?NADP丨丨氧化酶編碼基因在冷馴化及后續(xù)低溫脅迫過程中的動態(tài)??變化(圖2.2?B)。結(jié)果表明,冷馴化顯著提高了番茄葉片中/^CW/的表達。且??無論是否經(jīng)過冷馴化,4°C低溫脅迫均提高了葉片中的表達,且在4°C處??理3天時達到峰值,而后的表達量下降到與對照組接近的水平(圖2.2??B)。值得注意的是

【參考文獻】:
期刊論文
[1]鈣提高水稻幼苗抗旱性的研究[J]. 盧少云,黎用朝,郭振飛,李寶盛,李明啟.  中國水稻科學(xué). 1999(03)

博士論文
[1]PhyA、HY5和PIF4在光質(zhì)調(diào)控番茄低溫抗性中的機制研究[D]. 王峰.浙江大學(xué) 2017

碩士論文
[1]谷氧還蛋白GRX在番茄溫度脅迫響應(yīng)中的作用[D]. 郭勰.浙江大學(xué) 2016



本文編號:3067572

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