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土壤中干巴菌菌絲體測(cè)定及分析

發(fā)布時(shí)間:2020-11-08 15:51
   干巴菌(Thelephora ganbajun Zang),屬擔(dān)子菌門(Basidiomycota)、革菌科(Thelephoraceae)、革菌屬(Thelephora),是云南省珍稀的野生食用菌,具有較高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值。目前對(duì)于干巴菌的報(bào)道大多集中在形態(tài)結(jié)構(gòu)、干巴菌成分的分析、遺傳差異以及生態(tài)效應(yīng)方面,對(duì)于干巴菌基因和生長(zhǎng)機(jī)理方面的研究甚少。本研究主要運(yùn)用實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)來(lái)測(cè)定干巴菌生長(zhǎng)的不同土壤深度和范圍的菌絲體含量,從而探究干巴菌的生長(zhǎng)和子實(shí)體形成機(jī)理。通過(guò)對(duì)干巴菌單拷貝基因和多拷貝基因測(cè)定土壤菌絲體含量的比較,探討單拷貝基因和多拷貝基因測(cè)定土壤菌絲體的優(yōu)缺點(diǎn)和可行性。本研究應(yīng)用多拷貝基因?qū)崟r(shí)定量PCR方法對(duì)云南常見的外生菌根真菌銅綠菌(Lactarius hatsudake)進(jìn)行了土壤菌絲體含量的測(cè)定,發(fā)現(xiàn)干巴菌與銅綠菌在子實(shí)體形成過(guò)程中土壤的菌絲體含量及分布存在一定的差異性。本研究得出的主要結(jié)果如下:1、目前現(xiàn)有的單拷貝基因引物主要針對(duì)口蘑屬,本研究摸索了其引物對(duì)干巴菌DNA的擴(kuò)增,結(jié)果沒有獲得單一條帶和有效序列,因此現(xiàn)有單拷貝基因引物不適用于干巴菌單拷貝基因的擴(kuò)增。本研究通過(guò)基因組比較,找到了干巴菌的單拷貝基因,在此基礎(chǔ)上設(shè)計(jì)并驗(yàn)證了特異性引物;通過(guò)比對(duì)銅綠菌與相近物種的ITS序列設(shè)計(jì)并驗(yàn)證了特異性引物。上述兩對(duì)特異性引物的成功合成,為土壤中菌絲體含量的實(shí)時(shí)定量測(cè)定提供可實(shí)施的必要條件。2、多拷貝基因與單拷貝基因?qū)崟r(shí)定量PCR測(cè)定方法的結(jié)果有成倍增加和減少的趨勢(shì)大體一致,但也存在一定的差異。兩種基因測(cè)得的干巴菌菌絲體含量,比值在1-29之間。少量樣品比值差異性較大,倍數(shù)在1-3左右,而比值在5-16之間的占總數(shù)的57.14%。如果測(cè)定干巴菌菌絲體含量用來(lái)研究干巴菌菌絲體的分布狀況,也可以考慮使用多拷貝基因來(lái)測(cè)定作為參考。3、根據(jù)實(shí)時(shí)定量PCR測(cè)定土壤菌絲體含量分析比較發(fā)現(xiàn)銅綠菌與干巴菌子實(shí)體形成的過(guò)程存在較大差異,土壤中干巴菌菌絲體分布不具菌塘規(guī)律性,銅綠菌菌絲體在土壤中分布具有一定的規(guī)律性。推斷銅綠菌在子實(shí)體形成過(guò)程中,可能其菌絲侵入植物體根部,吸收根部的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),菌絲體含量逐漸增多并在土壤中逐漸向外延伸,當(dāng)土壤環(huán)境較為適合時(shí),銅綠菌菌絲體逐漸聚集增多形成菌塘,從而形成子實(shí)體。4、通過(guò)觀察發(fā)現(xiàn)干巴菌在子實(shí)體的形成過(guò)程中,其菌絲侵入松樹等的根部,進(jìn)入根部細(xì)胞間隙,然后向根外延伸形成二叉分支結(jié)構(gòu)的菌根,而后菌根逐漸增多聚集,聚集到一定程度時(shí)形成子實(shí)體。在此過(guò)程中有少量菌絲體分散在土壤中,但不形成菌塘。根據(jù)這一特征,在干巴菌的人工栽培過(guò)程中,可以通過(guò)提高干巴菌侵染以及控制寄主松樹的生長(zhǎng)狀況來(lái)實(shí)現(xiàn),但還需進(jìn)一步探索。
【學(xué)位單位】:云南大學(xué)
【學(xué)位級(jí)別】:碩士
【學(xué)位年份】:2019
【中圖分類】:S646
【部分圖文】:

擔(dān)子菌,引物擴(kuò)增,測(cè)序,生物科技


2.1.3瓊脂糖凝膠電泳及測(cè)序??。玻蓿蹋校茫耶a(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠上電泳,GeneFinderTM染色,紫外透??射儀檢測(cè)見圖2。將有單一條帶的PCR產(chǎn)物送到昆明碩擎生物科技有限公司測(cè)??序,測(cè)序均未獲得有效序列,見圖2。??應(yīng)用上述物種的單拷貝基因引物,均未成功擴(kuò)增出干巴菌的相應(yīng)基因片段。??15??

引物擴(kuò)增,測(cè)序,腺嘌呤,生物科技


Figure?4?Sequencing?map?of?partial?primer?amplification?results?of?single?copy?gene?of??Thelephora?ganbajun?Zang??2.2.3干巴菌單拷貝基因的驗(yàn)證??割膠回收:準(zhǔn)備A6、A14、A28、A45、A50和A51這6對(duì)引物擴(kuò)增的PCR產(chǎn)??物,。玻颠玻校茫覕U(kuò)增產(chǎn)物和5卟Unloading?buffer混勻,2%的瓊脂糖凝膠電??泳,PCR產(chǎn)物回收時(shí)做割膠回收。具體回收具體步驟按照從云南晨綠生物科技??有限公司購(gòu)買的天根DNA純化回收試劑盒(貨號(hào)為:DP214)操作,把回收的??DNA放到-20°C保存?zhèn)溆谩??DNA片段兩端連接腺嘌呤:由于PCR試劑金牌MIX?cái)U(kuò)增的基因片段兩端沒有??連接腺嘌呤,回收的DNA片段兩端需要加入腺嘌呤。反應(yīng)體系為:回收產(chǎn)物??22??

序列,側(cè)序,引物


?云南大學(xué)碩士畢業(yè)論文???的甘油溶液(按照1:?5的比例加入),固定在搖床上180轉(zhuǎn)37°C培養(yǎng)1?h,然??后放置于-20"C的冰箱中保存。??測(cè)序結(jié)果用seqMan和BioEdit軟件進(jìn)行比對(duì),30個(gè)插入載體中單克隆的序??列進(jìn)行比對(duì)并與之前PCR擴(kuò)增序列及從基因組中挑選出來(lái)的原單拷貝基因序??列比對(duì),序列完全相同的有:引物A6、A28、A50和引物A51擴(kuò)增的基因片段,??分別見圖5、圖6、圖7和圖8。因此引物A6、A28、A50和引物A51均為干??巴菌單拷貝基因特異性引物。??*e-1?G:::.?:?:?:?rarC/^.--GrA?■?:GG^r3*CGA:?;?.?:?rTCC:C.?;?.?T?:?A?久;《〇〇:.二〇;:-.|1*。簭V----:s:?/GG:1:??A4-2?a.-.?C?.3.?;;G5-..-3;.t5C;.??-?.:?G?:.?:?.?::■:.?.?.-3;.?.?.?S33;.?ACC?.?J--?CA?;?:r〇.?.?C?.?3?.?.Ci.:??--***-'?■ ̄-'
【參考文獻(xiàn)】

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